Summary

인쇄 Glycan 배열: 작은 동물에 반대로 탄수화물 항 체 순환의 레 퍼 토리의 분석에 대 한 민감한 기술

Published: February 14, 2019
doi:

Summary

이 작은 동물에 반대로 탄수화물 항 체 순환의 분석에 대 한 인쇄 glycan 배열 (PGA) 기술의 잠재력을 보여줍니다.

Abstract

주어진된 개인의 반대로 탄수화물 항 체 순환의 레 퍼 토리는 종종 면역 상태와 연결 됩니다. 뿐만 아니라 개별 면역 상태 결정 내부 및 외부 잠재적인 위협 신호를 퇴치에 성공 하지만 순환 안티 glycan 항 체 (및 그들의 혈 청 학적인 수준 변화)의 특정 패턴의 존재도 될 수는 발병과 병 적인 특정 조건의 진행의 중요 한 표식입니다. 여기, 우리는 매우 높은 감도; glycan 목표의 수백을 측정 하는 기회를 제공 하는 인쇄 Glycan 배열 PGA 기반 방법론 설명 샘플은 일반적인 제한 때 작은 동물의 최소 금액을 사용 하 여 (쥐, 쥐, 햄스터 ) 주소 측면 인간의 질병의 모델로 사용 됩니다. 이 방법의 대표적인 예를 들어, 우리는 자연 안티 glycan BALB/c 마우스에 항 체의 레 퍼 토리의 분석에서 얻은 결과 보여줍니다. 우리는 유전으로 동일 하 고 동일한 조건 하에서 유지 되 고에도 불구 하 고 연구에 참여 각 BALB/c 마우스 자연 안티 탄수화물 항 체의 특정 패턴을 개발 보여줍니다. 이 작품을 레 퍼 토리 (특이성) 조사 PGA 기술의 사용과 반대로 탄수화물 항 체, 건강에 어떤 병 적인 상태와 순환의 수준을 확장 하 주장 한다.

Introduction

항 체는 직접 보완 시스템4,5 를 활성화 하 여 바이러스1,2 , 박테리아2,3, 중화 하 여 병원 균 침입에 대 한 우리의 방어에 중심 역할을 담당 그리고 먹어서6의 향상입니다. 또한, 그들은 암 타겟팅 및 악성 세포7및 항상성 유지 보수8,9의 제거에 필수적인 요소입니다.

면역 시스템의 장애 자가 면역 및 염증 성 질환 및 암10 11발생할 수 있습니다. 이러한 병 적인 조건을 이상적으로 효율적인 치료에 대 한 신속한 진단 요구. 자가 면역 질환의 경우 대부분의 경우에는 신경의 혈 청 학적인 존재 면역10,12의 진단에 대 한 예측 이다. 이 항 체 세포 표면으로 반작용 하 고 extracellular autoantigens, 그들은 종종 면역 질환10,12의 프레 젠 테이 션을 하기 전에 몇 년 동안 존재. 면역 결핍증과 암은 또한으로 진단 혈액 검사도 항 체, 또는 그들의 기능 활동11같은 면역 요소의 수준을 측정.

순환 항 체 및 그들의 혈 청 학적인 레벨의 레 퍼 토리의 식별은 설정 하는 예 지 고 언급 한 병 적인 상황의 진행 평가 답해야 합니다. 우리는 이전 증명 하고있다 다른 동물 종1316, 항 체 순환의 분석을 위한 PGA 기술의 잠재력 문제를 피하고 serological 샘플의 큰 볼륨의 사용을 최소화 연관 된 항 체 분17 및 수 있도록 높은 처리량 항 체15의 광범위 한 레 퍼 토리의 프로 파일링.

Glycan 기반 immunoassays는 주로 단련, 다른 요인 중 기원과 탄수화물, 선호도 및 ligands15,,1819,20 의 바인딩 결정 하는의 생산에 의해 21. Glycan 기반 immunoassays 정지 (스피어)15,,2122 또는 평면 활성화 표면15,,2122, 개발 될 수 있다 23,24. 마지막 (가장 평범한 이러한 메서드의) ELISA 등 PGA. 데이터는 동일한 실험 설정15,25,,2627에 이러한 방법론을 비교 하지 않습니다. 우리는 이전 효능과 선택도 이러한 immunoassays 개별 인간의 플라즈마 샘플15프로필 안티 glycan 항 체의 비교 했습니다. 그 대상으로 안티-A/B 혈액 그룹 등 일부 항 체에 대 한 모든 immunoassays 통계적 의미와 그들을 감지할 수 있는 그리고 그들은 적극적으로 서로 서로15,,1821. 한편, 안티-P1 항 체 주로 구별 고성능 PGA에 의해 발견 했다 하 고 다른 glycan 기반 immunoassays15,18, 에 의해 만들어진 결정에 상관 관계가 없었다 21. 방법 사이의 이러한 차이 주로 항 체/항 원 비율 및 glycan 방향15관련이 있었다. ELISA 및 서 스 펜 션 배열을 이러한 방법을15항 체에 항 원의 과잉 때문에 PGA 보다 불특정 바인딩을 더 따르게 됩니다. 또한, 미국 PGA에서 glycans의 방향을 ELISA와 서 스 펜 션 배열15보다 더 제한 됩니다. ELISA는 연구 glycans의 제한 된 패널을 포함 하는 경우에 편리 합니다. 서 스 펜 션 배열 함께 ELISA 분석 결과 재구성에 관한 광범위 한 유연성을 제공합니다. PGA는 발견 접근15,18,,2128매우 편리 합니다. 이러한 명확한 장점과 단점에도 불구 하 고 3 개의 언급된 immunoassays glycan 항 체 상호 작용의 다양 한 측면을 연구 사용 수 있습니다. 연구의 최종 목표는 하나 더 적합 한 방법론의 선택을 안내할 것입니다.

현재 작동 작은 동물 항 체 안티 glycan 순환의 레 퍼 토리의 분석을 위한 PGA 기술을 사용 하 여 확장 하는 것을 목표로 합니다. 대표 결과적으로 선물이 여기 PGA에 의해 성인 BALB/c 마우스에서 자연 안티 탄수화물 항 체의 레 퍼 토리를 평가 하기 위해 상세한 프로토콜.

Protocol

1. Glycochips 생산 Microarray 준비 Glycans (50mm)를 인쇄 및 6에서 버퍼링 된 식 염 수 (PBS, pH 8.5)를 사용 하 여 N-hydroxysuccinimide-derivatized 유리 슬라이드에 복제 300 m m 인산에서 류 (10 µ g/mL) 비-접촉 로봇 arrayer (볼륨 ~ 900 드롭 pL). 각 슬라이드는 6 번 반복 하위 배열 (그림 1A, 색상에서)의 4 다른 블록을 포함 합니다. 모든 단일 하위 배열 컨트롤 (8 행 × 14 열)를…

Representative Results

여기, 우리는 20 BALB/c 마우스의 인구에 있는 자연 안티 glycan 항 체의 레 퍼 토리의 정량화에서 얻은 대표적인 결과의 요약을 제시. 이 연구에 사용 된 glycochips 419 다른 glycan 구조 포함. 대부분 glycans 채널으로 종합 되었다2CH2CH2NH2 스페이서 무장 O-배당 체,-CH2CH2NH2 또는-NHCOCH2NH2 배당 체로 여러 경…

Discussion

Glycan microarrays 단백질 glycan 상호 작용40공부에 대 한 필수적인 도구가 되고있다. 현재 일 PGA BALB/c 마우스 항 체 항 탄수화물의 순환의 레 퍼 토리를 연구 기술을 기반으로 하는 프로토콜을 설명 합니다. PGA 스크린 다 수 알 수 없는 생물학 glycans의 가능성을 제공 합니다, 이후 그것은 매우 편리한 검색 도구13,15,28</sup…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품 “Fondo 드 Investigaciones Sanitarias”에 의해 지원 되었다 (FIS) 카를로스 3 세 건강 연구소, 보건의 스페인에서 PI13/01098 부여. DB-G 했다 유럽 연합 일곱 번째 기구 프로그램 (FP7 2007-2013 년) 부여 계약 603049 (TRANSLINK) 아래에 의해 투자 하는 박사 후 연구 위치에서 혜택을. NK, NS, NB의 일 부여 #14-50-00131 러시아 과학 재단에 의해 지원 되었다. DB-G 마르타 Broto, J. 파블로 살바도르와 우수한 기술 지원, 애 나 Sanchis 및 알렉산더 Rakitko 통계 분석에 그의 감사를 표현 하 고 싶어. 지원으로는 “Pla 드 Doctorats 주 드 라 Secretaria d’Universitats 나 Recerca del Departament d’Empresa 나 Coneixement 드 라 Generalitat 드 Catalunya (부여 번호 2018 디 021). 우리는 검색 프로그램 감사 / Generalitat 드 Catalunya 제도적 지원에 대 한.

Materials

Antibodies
biotinylated goat anti-human Igs Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA Ref. #: 31782
biotinylated goat anti-mouse IgM + IgG Thermo Fisher Scientific Ref. #: 31807
Equipment
Robotic Arrayer sciFLEXARRAYER S5  Scienion AG, Berlin, Germany http://www.scienion.com/products/sciflexarrayer/
Stain Tray (slide incubation chamber) Simport, Beloeil, QC, Canada Ref. #: M920-2
Centrifuge Eppendorf, Hamburg, Germany  Ref. #: 5810 R
Pipettes Gilson, Middleton, WI, USA http://www.gilson.com/en/Pipette/
Slide Scanner  PerkinElmer, Waltham, MA, USA ScanArray GX Plus 
Shaking incubator Cole-Parmer, Staffordshire, UK Ref. #: SI50
Biological samples
BALB/c mice sera This paper N/ A
Complex Immunoglobulin Preparation (CIP) Immuno-Gem, Moscow, Russia http://www.biomedservice.ru/price/goods/1/17531
Chemicals, Reagents and Glycans 
Glycan library Institute of Bioorganic Chemistry (IBCh), Moscow, Russia N/ A
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO,  Ref. #: A9418
Ethanolamine Sigma-Aldrich Ref. #: 411000
Tween-20 Merck Chemicals & Life Science S.A., Madrid, Spain Ref. #: 655204
Phospahte buffered saline (PBS) VWR International Eurolab S.L, Barcelona, Spain Ref. #: E404
Sodium azide Sigma-Aldrich Ref. #: S2002
Streptavidin Alexa Fluor 555 conjugate  Thermo Fisher Scientific Ref. #: S21381
Streptavidin Cy5 conjugate GE Healthcare, Little Chalfont, Buckinghamshire, UK Ref. #: PA45001
Materials
N-hydroxysuccinimide-derivatized glass slides H  Schott-Nexterion, Jena, Germany Ref. #: 1070936
Whatman filter paper  Sigma-Aldrich Ref. #: WHA10347509
1.5 mL tubes Eppendorf  Ref. #: 0030120086
Software and algorithms
ScanArray Express Microarray Analysis System PerkinElmer http://www.per
kinelmer.com/microarray
Hierarchical Clustering Explorer application University of Maryland, MD, USA http://www.cs.umd.edu/hcil/hce/

References

  1. Karlsson, G. B., Fouchier, R. A., Phogat, S., Burton, D. R., Sodroski, J., Wyatt, R. T. The challenges of eliciting neutralizing antibodies to HIV-1 and to influenza virus. Nat Rev Microbiol. 6 (2), 143-155 (2008).
  2. Lu, L. L., Suscovich, T. J., Fortune, S. M., Alter, G. Beyond binding: antibody effector functions in infectious diseases. Nat Rev Immunol. 18 (1), 46-61 (2017).
  3. Bebbington, C., Yarranton, G. Antibodies for the treatment of bacterial infections: current experience and future prospects. Curr Opin Biotech. 19 (6), 613-619 (2008).
  4. Murphy, K., Travers, P., Walport, M. The complement system and innate immunity. Janeway’s Immunobiology. , 61-80 (2008).
  5. Botto, M., Kirschfink, M., Macor, P., Pickering, M. C., Wurzner, R., Tedesco, F. Complement in human diseases: lessons from complement deficiencies. Mol Immunol. 46 (14), 2774-2783 (2009).
  6. Borrok, M. J., et al. Enhancement of antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity by endowing IgG with FcαRI (CD89) binding. MAbs. 7 (4), 743-751 (2015).
  7. Weiner, L. M., Murray, J. C., Shuptrine, C. W. Antibody-based immunotherapy of cancer. Cell. 148 (6), 1081-1084 (2012).
  8. Ricklin, D., Hajishengallis, G., Yang, K., Lambris, J. D. Complement: a key system for immune surveillance and homeostasis. Nat Immunol. 11 (9), 785-797 (2010).
  9. Prechl, J. A generalized quantitative antibody homeostasis model: antigen saturation, natural antibodies and a quantitative antibody network. Clin Transl Immunology. 6 (2), e131 (2017).
  10. Vojdani, A. Antibodies as predictors of complex autoimmune diseases. Int J Immunopath Ph. 21 (2), 267-278 (2008).
  11. Liu, W., Peng, B., Lu, Y., Xu, W., Qian, W., Zhang, J. Y. Autoantibodies to tumor-associated antigens as biomarkers in cancer immunodiagnosis. Autoimmun Rev. 10 (6), 331-335 (2011).
  12. Suurmond, J., Diamond, B. Autoantibodies in systemic autoimmune diseases: specificity and pathogenicity. J Clin Invest. 125 (6), 2194-2202 (2015).
  13. Bovin, N., et al. Repertoire of human natural anti-glycan immunoglobulins. Do we have auto-antibodies?. Biochim Biophys Acta. 1820 (9), 1373-1382 (2012).
  14. de los Rios, M., Criscitiello, M. F., Smider, V. V. Structural and genetic diversity in antibody repertoires from diverse species. Curr Opin Struc Biol. 33, 27-41 (2015).
  15. Pochechueva, T., et al. Comparison of printed glycan array, suspension array and ELISA in the detection of human anti-glycan antibodies. Glycoconjugate J. 28 (8-9), 507-517 (2011).
  16. Shilova, N., Navakouski, M., Khasbiullina, N., Blixt, O., Bovin, N. Printed glycan array: antibodies as probed in undiluted serum and effects of dilution. Glycoconjugate J. 29 (2-3), 87-91 (2012).
  17. Manimala, J. C., Roach, T. A., Li, Z., Gildersleeve, J. C. High-throughput carbohydrate microarray profiling of 27 antibodies demonstrates widespread specificity problems. Glycobiology. 17 (8), 17C-23C (2007).
  18. Jacob, F., et al. Serum anti-glycan antibody detection of non-mucinous ovarian cancers by using a printed glycan array. Int. J. Cancer. 130 (1), 138-146 (2012).
  19. Lewallen, D. M., Siler, D., Iyer, S. S. Factors affecting protein-glycan specificity: effect of spacers and incubation time. ChemBioChem. 10 (9), 1486-1489 (2009).
  20. Oyelaran, O., Li, Q., Farnsworth, D., Gildersleeve, J. C. Microarrays with varying carbohydrate density reveal distinct subpopulations of serum antibodies. J. Proteome Res. 8 (7), 3529-3538 (2009).
  21. Pochechueva, T. Multiplex suspension array for human anti-carbohydrate antibody profiling. Analyst. 136 (3), 560-569 (2011).
  22. Chinarev, A. A., Galanina, O. E., Bovin, N. V. Biotinylated multivalent glycoconjugates for surface coating. Methods Mol Biol. 600, 67-78 (2010).
  23. Huflejt, M. E. Anti-carbohydrate antibodies of normal sera: findings, surprises and challenges. Mol Immunol. 46 (15), 3037-3049 (2009).
  24. Buchs, J. P., Nydegger, U. E. Development of an ABO-ELISA for the quantitation of human blood group anti-A and anti-B IgM and IgG antibodies. J Immunol Methods. 118 (1), 37-46 (1989).
  25. de Jager, W., Rijkers, G. T. Solid-phase and bead-based cytokine immunoassay: a comparison. Methods. 38 (4), 294-303 (2006).
  26. Galanina, O. E., Mecklenburg, M., Nifantiev, N. E., Pazynina, G. V., Bovin, N. V. GlycoChip: multiarray for the study of carbohydrate binding proteins. Lab Chip. 3 (4), 260-265 (2003).
  27. Willats, W. G., Rasmussen, S. E., Kristensen, T., Mikkelsen, J. D., Knox, J. P. Sugar-coated microarrays: a novel slide surface for the high-throughput analysis of glycans. Proteomics. 2 (12), 1666-1671 (2002).
  28. Bello-Gil, D., Khasbiullina, N., Shilova, N., Bovin, N., Mañez, R. Repertoire of BALB/c mice natural anti-Carbohydrate antibodies: mice vs. humans difference, and otherness of individual animals. Front Immunol. 8, 1449 (2017).
  29. Pazynina, G., et al. Synthetic glyco-O-sulfatome for profiling of human natural antibodies. Carbohydr Res. 445, 23-31 (2017).
  30. Ryzhov, I. M., Korchagina, E. Y., Popova, I. S., Tyrtysh, T. V., Paramonov, A. S., Bovin, N. V. Block synthesis of A (type 2) and B (type 2) tetrasaccharides related to the human ABO blood group system. Carbohydr Res. 430, 59-71 (2016).
  31. Ryzhov, I. M., et al. Function-spacer-lipid constructs of Lewis and chimeric Lewis/ABH glycans. Synthesis and use in serological studies. Carbohyd Res. 435, 83-96 (2016).
  32. Pazynina, G. V., Tsygankova, S. V., Sablina, M. A., Paramonov, A. S., Tuzikov, A. B., Bovin, N. V. Stereo- and regio-selective synthesis of spacer armed α2-6 sialooligosaccharides. Mendeleev Commun. 26 (5), 380-382 (2016).
  33. Pazynina, G. V., Tsygankova, S. V., Sablina, M. A., Paramonov, A. S., Formanovsky, A. A., Bovin, N. V. Synthesis of blood group pentasaccharides ALey, BLey and related tri- and tetrasaccharides. Mendeleev Commun. 26 (2), 103-105 (2016).
  34. Severov, V. V., Pazynina, G. V., Ovchinnikova, T. V., Bovin, N. V. The synthesis of oligosaccharides containing internal and terminal Galβ1-3GlcNAcβ fragments. Russian J. Bioorgan. Chem. 41 (2), 147-160 (2015).
  35. Pazynina, G. V., Tsygankova, S. V., Bovin, N. V. Synthesis of glycoprotein N-chain core fragment GlcNAcβ1-4(Fucα1-6)GlcNAc. Mendeleev Commun. 25 (4), 250-251 (2015).
  36. Solís, D., et al. A guide into glycosciences: How chemistry, biochemistry and biology cooperate to crack the sugar code. Biochim Biophys Acta. 1850 (1), 186-235 (2015).
  37. Pazynina, G. V., et al. Divergent strategy for the synthesis of α2-3-Linked sialo-oligosaccharide libraries using a Neu5TFA-(α2-3)-Gal building block. Synlett. 24 (02), 226-230 (2013).
  38. Blixt, O., et al. Printed covalent glycan array for ligand profiling of diverse glycan binding proteins. P Natl Acad Sci USA. 101 (49), 17033-17038 (2004).
  39. Liu, Y., et al. The minimum information required for a glycomics experiment (MIRAGE) project: improving the standards for reporting glycan microarray-based data. Glycobiology. 27 (4), 280-284 (2017).
  40. Song, X., Heimburg-Molinaro, J., Cummings, R. D., Smith, D. F. Chemistry of natural glycan microarrays. Curr Opin Chem Biol. 18, 70-77 (2014).
  41. Hoy, Y. E., et al. Variation in taxonomic composition of the fecal microbiota in an inbred mouse strain across individuals and time. PLoS One. 10 (11), e0142825 (2015).
  42. D’Argenio, V., Salvatore, F. The role of the gut microbiome in the healthy adult status. Clin Chim Acta. 451 (Pt A), 97-102 (2015).
  43. Khasbiullina, N. R., Bovin, N. V. Hypotheses of the origin of natural antibodies: a glycobiologist’s opinion. Biochemistry (Mosc). 80 (7), 820-835 (2015).
  44. Butler, J. E., Sun, J., Weber, P., Navarro, P., Francis, D. Antibody repertoire development in fetal and newborn piglets, III. Colonization of the gastrointestinal tract selectively diversifies the preimmune repertoire in mucosal lymphoid tissues. Immunology. 100 (1), 119-130 (2000).
  45. Bos, N. A., et al. Serum immunoglobulin levels and naturally occurring antibodies against carbohydrate antigens in germ-free BALB/c mice fed chemically defined ultrafiltered diet. Eur J Immunol. 19 (12), 2335-2339 (1980).
  46. van der Heijden, P. J., Bianchi, A. T., Heidt, P. J., Stok, W., Bokhout, B. A. Background (spontaneous) immunoglobulin production in the murine small intestine before and after weaning. J Reprod Immunol. 15 (3), 217-227 (1989).
  47. Krasnova, L., Wong, C. H. Understanding the chemistry and biology of glycosylation with glycan synthesis. Annu Rev Biochem. 85, 599-630 (2016).
  48. Overkleeft, H. S., Seeberger, P. H., Varki, A. Chemoenzymatic synthesis of glycans and glycoconjugates. Essentials of Glycobiology [Internet]. , 2015-2017 (2017).
check_url/fr/57662?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Olivera-Ardid, S., Khasbiullina, N., Nokel, A., Formanovsky, A., Popova, I., Tyrtysh, T., Kunetskiy, R., Shilova, N., Bovin, N., Bello-Gil, D., Mañez, R. Printed Glycan Array: A Sensitive Technique for the Analysis of the Repertoire of Circulating Anti-carbohydrate Antibodies in Small Animals. J. Vis. Exp. (144), e57662, doi:10.3791/57662 (2019).

View Video