Summary

Computational analys av den Caenorhabditis elegans könsceller att studera fördelningen av atomkärnor, proteiner och cytoskelettet

Published: April 19, 2018
doi:

Summary

Vi presenterar en automatiserad metod för tredimensionell rekonstruktion av den Caenorhabditis elegans könsceller. Vår metod bestämmer antal och placering av varje kärnan inom könsceller och analyser könsceller protein distribution och cytoskeletal struktur.

Abstract

Den Caenorhabditis elegans (C. elegans) könsceller används för att studera flera biologiskt viktiga processer inklusive stamceller utveckling, apoptos och kromosom dynamics. Medan könsceller är en utmärkt modell, är analysen ofta två dimensioner på grund av tid och arbetskraft krävs för tredimensionell analys. Stora värden i sådana studier är nummer/position av kärnor och protein fördelningen inom könsceller. Här presenterar vi en metod för att utföra automatiserad analys av de könsceller med konfokalmikroskopi och beräkningsvetenskapliga metoder för att fastställa antal och placering av atomkärnor i varje region av könsceller. Vår metod analyserar också könsceller protein distribution som gör tredimensionella undersökning av proteinuttryck i olika genetiska bakgrunder. Vår studie visar vidare, variationer i cytoskeletal arkitektur i olika regioner av de könsceller som kan rymma rumsliga utvecklingsmässiga behov. Slutligen, vår metod möjliggör automatiserad inventering av spermier i spermatheca av varje könsceller. Sammantaget möjliggör vår metod snabba och reproducerbara fenotypiska analys av den C. elegans könsceller.

Introduction

Bevarande av signalering vägar med däggdjur gör C. elegans en utmärkt modell att studera flera biologiska processer1,2. I vårt labb använder vi den C. elegans könsceller att studera stamceller utveckling, apoptos och genuttryck. Medan könsceller är en tredimensionell struktur, är många studier två dimensionell på grund av hur tidskrävande och arbetsintensiva tredimensionell analys. Det är mycket troligt att tvådimensionell analys kan förvränga i vivo händelser i könsceller. I C. elegans vuxen hermafrodit har två könsceller armar, som inrymmer en somatisk distala spets cell (DTC) som upprätthåller distala könsceller i en odifferentierad staten3,4. Dessa könsceller börjar skilja när de flyttar bort från DTC, flyr sitt inflytande, och bli äggceller och spermier som de når proximala ände av könsceller. Under denna process genomgå bakteriecellen atomkärnor Mitos, innan de övergår till meios5,6. Spermieproduktionen kompletteras av larvstadium 4 (L4) av utvecklingen, varefter oocyter produceras under vuxenlivet. Sperman lagras i den spermatheca där de gödslar oocyter att generera embryon.

Det finns flera genetiska och miljömässiga faktorer som kan påverka könsceller utveckling i C. elegans som resulterar i förändringar i antalet kärnor, antal apoptotiska händelser, kromosom dynamik, och proteinuttryck eller lokalisering7 ,8,9,10,11. Analysen av dessa evenemang kräver identifiering av varje etapp av differentiering baserad på kärnkraft morfologi och distribution. För att korrekt analysera dessa parametrar manuellt med en stor urvalsstorlek är arbetskrävande och tidsödande. För att kringgå dessa nackdelar och aktivera konsekvens av analys, vi utvecklat en automatiserad metod för tredimensionella undersökning av den C. elegans könsceller för kärnor räkna, kärnor distribution, proteinuttryck, och cytoskeletal struktur. Genom att kombinera konfokalmikroskopi med tredimensionell rendering, genererade vi storlek och form parametrar för identifiering av varje etapp av bakteriecellen differentiering. Denna metod gör dessutom räkna av bakteriecellen kärnor och spermier plus poängsättning av kromosom nummer i varje äggcell.

En avgörande struktur i könsceller är cytoskelettet, som ger stabilitet till könsceller fack, aids cytoplasmiska streaming och skydd till könsceller kärnor12. Använda computational rendering, vi utfört tredimensionell rekonstruktion av könsceller cytoskelettet och identifierade distinkta cytoskeletal funktioner inom könsceller. Här beskriver vi ett stegvisa protokoll för att illustrera hur beräkningsinriktad analys i kombination med confocal imaging möjliggör omfattande analys av de C. elegans könsceller.

Vi föreslår en snabb metod för tredimensionell analys av C. elegans könsceller (figur 1). Med hjälp av tredimensionell analys är det möjligt att studera tredimensionell distribution av könsceller atomkärnor (figur 2 och figur 3), automatiserad rösträkningen celler (figur 2), rekonstruktion av könsceller cellskelettet ( Figur 3), distribution av proteiner (figur 4) och scoring antalet spermier i spermatheca och kromosomer i oocyter (figur 5). Metoden inte bara möjliggör enkel och exakt kvantifiering av könsceller men identifierar fysiologiskt relevanta fenotyper.

Protocol

1. beredning och mask djurhållning Obs: Se Tabell av material för all produktinformation. OP50 Escherichia coli kultur: kultur OP50 bakterier i Lysogeny buljong (LB) (1% trypton, 0,5% jäst, 0,5% NaCl, pH 7,0) över natten vid 37 ° C utan antibiotika. Utsäde 400 µL av OP50 bakterier att nematoder tillväxtplattor media (NGM) (1,5 g NaCl, 8.5 g agar, 1,25 g pepton, 1 mL 1 M CaCl2, 1 mL av 5 mg/mL kolesterol i etanol, 1 mL 1 M MgSO<su…

Representative Results

Figur 1 visar den tid som krävs för tredimensionella könsceller analys. L4 hermafroditer inkuberas vid 20 ° C var dissekeras för att isolera germlines och färgas med DAPI, phalloidin och antikroppar mot könsceller proteiner. Germlines är avbildade med konfokalmikroskopi. Färgning och confocal microscopy kräver cirka 24 h. beräkningsinriktad analys för den komplett könsceller kräver 10-15 min att räkna antal och placering av atomkärnor, identif…

Discussion

Målet med detta protokoll är att förbättra noggrannheten och minska tiden som krävs för könsceller analys. Efter standardpreparatet av dissekerade germlines, är en tredimensionell modell av könsceller atomkärnor utarbetats av computational rendering. Samtidigt som observationen av könsceller atomkärnor fördelning i rymden, beräknar tredimensionell rendering antalet kärnor på specifika regioner i könsceller. Den kritiska faktorn i vår metod är exakt definition av storlek och form parametrar av atomkärn…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Monash Microimaging för deras tekniska support. Vissa stammar tillhandahölls av stadens Caenorhabditis genetik, som är finansierad av NIH Office infrastruktur forskningsprogram (P40 OD010440). Detta arbete stöddes av en Monash University biomedicin Discovery gemenskap, NHMRC projektbidrag (GNT1105374), NHMRC Senior Research Fellowship (GNT1137645) och veski innovation fellowship: VIF 23 till Roger Pocock.

Materials

C. elegans strains: wild type (N2, Bristol), rnp-8(tm2435) I/hT2[bli-4(e937) let-?(q782) qIs48] (I;III), cpb-3(bt17) I, glp-1 (e2141) III  Caenorhabditis Genetics Center (CGC)
OP50 Escherichia coli bacteria Homemade
Nematode Growth Media (NGM) plates Homemade
polyclonal rabbit anti-REC-8  SDIX 29470002
Alexa 488 conjugated antibody raised in goat Thermofisher Scientific A-21236
Cytoskeletal dye phalloidin  Thermofisher Scientific A-12380
DAPI  Thermofisher Scientific  62248
Poly-L-lysine  Sigma Aldrich P5899
Tetramisol  Sigma Aldrich P5899
MgSO4 Sigma Aldrich M7506
1M HEPES buffer, pH 7.4  Sigma Aldrich G0887
10X PBS pH 7.4  Thermofisher Scientific AM9625
Tween-20  Sigma Aldrich P1389
EGTA Sigma Aldrich E3889
37% Paraformaldehyde solution Merck Millipore 1040031000
Normal goat serum Sigma Aldrich G9023
Fluoroshield fixing reagent  Sigma Aldrich F6182
Ethanol  Millipore  1009832511
Methanol Sigma Aldrich 34860
20°C & 25°CIncubator  Any brand
Light microscope Any brand
Confocal microscope   Any brand (Leica, Zeiss)
Computer equipped with Imaris suit 8.4.1 or later version, full licence to use the software and Matlab software. Bitplane
Phospho buffered saline, pH 7.4 Homemade
Teflon microscope slides  Tekdon   941-322-8288

References

  1. Hubbard, E. J. Caenorhabditis elegans germ line: a model for stem cell biology. Dev Dyn. 236 (12), 3343-3357 (2007).
  2. Joshi, P. M., Riddle, M. R., Djabrayan, N. J., Rothman, J. H. Caenorhabditis elegans as a model for stem cell biology. Dev Dyn. 239 (5), 1539-1554 (2010).
  3. Kershner, A., et al. Germline stem cells and their regulation in the nematode Caenorhabditis elegans. Adv Exp Med Biol. 786, 29-46 (2013).
  4. Byrd, D. T., Knobel, K., Affeldt, K., Crittenden, S. L., Kimble, J. A DTC niche plexus surrounds the germline stem cell pool in Caenorhabditis elegans. PLoS One. 9 (2), 88372 (2014).
  5. Kimble, J., Crittenden, S. L. Controls of germline stem cells, entry into meiosis, and the sperm/oocyte decision in Caenorhabditis elegans. Annu Rev Cell Dev Biol. 23, 405-433 (2007).
  6. Hansen, D., Hubbard, E. J., Schedl, T. Multi-pathway control of the proliferation versus meiotic development decision in the Caenorhabditis elegans germline. Dev Biol. 268 (2), 342-357 (2004).
  7. Crittenden, S. L., et al. A conserved RNA-binding protein controls germline stem cells in Caenorhabditis elegans. Nature. 417 (6889), 660-663 (2002).
  8. Eckmann, C. R., Crittenden, S. L., Suh, N., Kimble, J. GLD-3 and control of the mitosis/meiosis decision in the germline of Caenorhabditis elegans. Génétique. 168 (1), 147-160 (2004).
  9. Schumacher, B., et al. Translational repression of C. elegans p53 by GLD-1 regulates DNA damage-induced apoptosis. Cell. 120 (3), 357-368 (2005).
  10. McMullen, P. D., et al. Macro-level modeling of the response of C. elegans reproduction to chronic heat stress. PLoS Comput Biol. 8 (1), 1002338 (2012).
  11. Hubbard, E. J., Korta, D. Z., Dalfo, D. Physiological control of germline development. Adv Exp Med Biol. 757, 101-131 (2013).
  12. Wolke, U., Jezuit, E. A., Priess, J. R. Actin-dependent cytoplasmic streaming in C. elegans oogenesis. Development. 134 (12), 2227-2236 (2007).
  13. Jones, A. R., Francis, R., Schedl, T. GLD-1, a cytoplasmic protein essential for oocyte differentiation, shows stage- and sex-specific expression during Caenorhabditis elegans germline development. Dev Biol. 180 (1), 165-183 (1996).
  14. Hasegawa, E., Karashima, T., Sumiyoshi, E., Yamamoto, M. C. elegans CPB-3 interacts with DAZ-1 and functions in multiple steps of germline development. Dev Biol. 295 (2), 689-699 (2006).
  15. Austin, J., Kimble, J. glp-1 is required in the germ line for regulation of the decision between mitosis and meiosis in C. elegans. Cell. 51 (4), 589-599 (1987).
  16. Berry, L. W., Westlund, B., Schedl, T. Germ-line tumor formation caused by activation of glp-1, a Caenorhabditis elegans member of the Notch family of receptors. Development. 124 (4), 925-936 (1997).
  17. Fox, P. M., Schedl, T. Analysis of Germline Stem Cell Differentiation Following Loss of GLP-1 Notch Activity in Caenorhabditis elegans. Génétique. 201 (1), 167-184 (2015).
  18. Pasierbek, P., et al. A Caenorhabditis elegans cohesion protein with functions in meiotic chromosome pairing and disjunction. Genes and Development. 15 (11), 1349-1360 (2001).
  19. Klass, M., Wolf, N., Hirsh, D. Development of the male reproductive system and sexual transformation in the nematode Caenorhabditis elegans. Dev Biol. 52 (1), 1-18 (1976).
  20. Korta, D. Z., Tuck, S., Hubbard, E. J. S6K links cell fate, cell cycle and nutrient response in C. elegans germline stem/progenitor cells. Development. 139 (5), 859-870 (2012).
  21. Laband, K., et al. Chromosome segregation occurs by microtubule pushing in oocytes. Nat Commun. 8 (1), 1499 (2017).
check_url/fr/57702?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Gopal, S., Pocock, R. Computational Analysis of the Caenorhabditis elegans Germline to Study the Distribution of Nuclei, Proteins, and the Cytoskeleton. J. Vis. Exp. (134), e57702, doi:10.3791/57702 (2018).

View Video