Summary

从刺客臭虫和其他 Heteropteran 昆虫身上采集毒液毒素

Published: April 21, 2018
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Summary

虽然亚目翅 (昆虫纲: 半翅目) 中的许多昆虫是有毒的, 但它们的毒液成分和毒液毒素的作用大多是未知的。本议定书描述了利用刺激、骚扰和腺体解剖来收获 heteropteran 毒液以进一步表征的方法。

Abstract

Heteropteran 昆虫, 如刺客臭虫 (Reduviidae) 和巨大的水虫 (Belostomatidae) 从一个共同的捕食性天敌和恶毒的祖先后裔, 和大多数现存的 heteropterans 保留这一营养战略。一些 heteropterans 已经转变为喂养脊椎动物的血液 (如接吻臭虫, Triatominae; 和床虫, Cimicidae), 而另一些已经恢复到植物喂养 (大多数 Pentatomomorpha)。然而, 除了接吻虫子用来促进血液喂养的唾液之外, heteropteran 毒液与蜘蛛、蝎子和蛇的毒液相比, 很少被知晓。

heteropteran 毒液毒素特征的一个障碍是毒液/唇腺的结构和功能, 它们既形态复杂, 又具有多种生物作用 (防御、猎物捕获和超口服消化)。在本文中, 我们描述了三种方法, 我们已经成功地用于收集 heteropteran 毒液。首先, 我们提出刺激作为一种方便的方法收集毒液, 这往往是致命的, 当注射到猎物的动物, 并省却污染的腺组织。第二, 我们表明, 对动物的温柔骚扰足以产生毒液挤压从喙和/或毒液随地吐痰的一些群体的 heteropterans。第三, 我们描述的方法, 以收集毒液毒素的麻醉动物的解剖, 以获得毒液腺体。这种方法与其他方法相辅相成, 因为它可能允许从刺激和骚扰无效的分类群中收集毒素。这些协议将使研究人员能够从 heteropteran 昆虫身上获得毒素, 用于结构功能表征和在医药和农业中的可能应用。

Introduction

Heteropteran 毒液是完全生物活性物质1。例如, 血液喂养翅的毒液/唾液分泌物, 如接吻臭虫 (Triatominae) 和床虫 (Cimicidae) 通过扰乱止血2来促进喂养。这些毒液中的毒素靶向多个途径, 包括凝血、血小板聚集和血管收缩, 以及疼痛和瘙痒通路。大多数其他 heteropteran 物种的毒液都适于捕食, 而不是供血。他们的毒液导致瘫痪, 死亡和组织液化时, 注入无脊椎动物3,4。当注入脊椎动物时, 它们的毒液也可能产生剧烈的影响。例如, 从刺客 bug Holotrichius innesi中注入毒液会导致疼痛、肌肉麻痹和出血;由于呼吸麻痹5, envenomated 的老鼠很快就死了。

Transcriptomic 和蛋白质组学研究揭示了一些 heteropteran 毒液的蛋白质组成。捕食性天敌种类的毒液富含蛋白酶、其他酶, 以及未知结构和功能的多肽和蛋白质6, 7, 8.接吻臭虫毒液富含 triabin 蛋白家族, 其成员对凝血、血小板聚集和收缩29产生深刻影响。然而, 它不知道哪些毒素的基础上最具生物活性的毒液。例如, 接吻 bug Triatoma 疫病的毒液被报告为止痛药和抑制钠通道10, 但负责的组件仍有待阐明。同样, 还不知道刺客臭虫毒液的成分会导致麻痹或疼痛。确定对特定毒液生物活性负责的毒素, 以及表征新型毒液毒素的结构和功能的先决条件是获取毒液。

毒液已经从 heteropterans 获得了由刺激5,6,7,8,11,12,13, 挑衅防御响应4,8, 机械地压缩胸部12,14,15,16, 剖析毒液腺体8,17 1819202122和毒蕈乙酰胆碱受体的激动剂23的应用。判断任何方法的潜在优点和缺点是复杂的 heteropteran 毒液腺体的形态学, 它由一个主腺体与两个独立的流明, 前主腺体 (AMG) 和后主腺体 (普纳), 以及伴生的附属的腺体 (AG)。这些不同的腺体间隔产生不同的蛋白质分泌物, 这可能是专门用于不同的生物功能, 包括猎物捕获, 防御和额外口服消化8,17。在 peiratine 和 ectrichodiine 刺客臭虫, AMG 已经与猎物捕获和普纳的额外口服消化17。但是, 在 harpactorine bug Pristhesancus plagipennis中, 普纳专门用于捕获和消化, 而 AMG 则被假定为分泌防御毒液8。该 AG 已被描述为在刺客 bug8或作为一个主要的地方蛋白酶存储在巨型水臭虫23中的分泌功能很少。显然, 需要进一步的工作来澄清各个 heteropteran 子群之间各腺体间的功能, 并确定大多数毒液毒素的功能。在本报告中, 我们描述了从 heteropterans 到这个目标的收集毒液毒素的协议。

Protocol

该议定书符合昆士兰大学在教学和研究中负责照料和使用动物的政策 (4.20.11) 以及国家卫生和医学研究理事会的澳大利亚保护和使用动物为科学目的(8th编辑 2013)。 注意: 在处理刺客 bug 时, 注意不要被 envenomated。在处理毒液防御的物种时, 要注意保护眼睛。注意不要伤害实验动物。这包括监测压力的限制, 如橡胶带和确保喙没有打破。 …

Representative Results

某些 heteropteran 物种 (如 harpactorine P plagipennis和 reduviine Platymeris rhadamanthus) 可靠地产生大量 (5-20 µL) 的毒液, 以响应刺激 (表 1)。一般而言, 大多数 peiratine、reduviine 和 harpactorine bug 会产生毒液来响应这种方法。在 stenopodaine bug 中, 刺激从Oncocephalus sp 中引发毒液, 而不是Thodelmus sp。取样的 holoptiline 和 emesine bug 并没有产生显著的毒液 (?…

Discussion

捕获刺客臭虫毒液最关键的一步是根据研究的目的选择合适的方法。三种收集 heteropteran 毒液的方法中, 每种都有优缺点, 这取决于下游的应用。

诱导臭虫从喙中排出毒液 (1-3 协议) 避免了腺组织对毒液的污染。此外, 这些方法是非致命的, 可以重复多次在一个 bug 的生活过程中。刺激通常提供最大数量的毒液, 并产生毒液具有强大的毒性对猎物昆虫根据几个研究5</s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们承认澳大利亚研究理事会的财政支持 (赠款 DP130103813 和 LP140100832 G.F.K., DECRA 奖学金 DE160101142 EABU), 澳大利亚国家健康 & 医学研究理事会 (主要研究金APP1044414 到 G.F.K.) 和昆士兰大学 (博士后奖学金 A.A.W.)。

Materials

Electostimulator Grass Technologies S48 Square Pulse Stimulator Electrostimulator allowing pulsed electrostimulation
Featherlight tweezers Australian Entomological Supplies E122B For handling live venomous insects
Protease inhibitor cocktail Sigma 4693124001 For preventing autoproteolytic digestion of venom
Dissection equipment Australian Entomological Supplies E152Micro For fine dissections
Insect pins Australian Entomological Supplies E162 For fine dissections

References

  1. Walker, A. A., Weirauch, C., Fry, B. G., King, G. F. Venoms of heteropteran insects: A treasure trove of diverse pharmacological toolkits. Toxins. 8 (2), 43 (2016).
  2. Ribeiro, J. M. C., Assumpção, T. C., Francischetti, I. M. B. An insight into the sialomes of bloodsucking Heteroptera. Psyche (Stuttg). 2012, 1-16 (2012).
  3. Ambrose, D. P., Maran, S. P. M. Quantification protein content and paralytic potential of saliva of fed and prey deprived reduviid Acanthaspis pedestris Stål (Heteroptera: Reduviidae: Reduviinae). Indian Journal of Environmental Science. 3 (1), 11-16 (1999).
  4. Edwards, J. S. The action and compostion of the saliva of an assassin bug Platymeris rhadamanthus Gaerst. (Hemiptera, Reduviidae). Journal of Experimental Biology. 38, 61-77 (1961).
  5. Zerachia, T., Bergmann, F., Shulov, A., Kaiser, E. . Animal and Plant Toxins. , 143-146 (1973).
  6. Walker, A. A., Hernández-Vargas, M. J., Corzo, G., Fry, B. G., King, G. F. Giant fish-killing water bug reveals ancient and dynamic venom evolution in Heteroptera. Cellular and Molecular Life Sciences. , (2018).
  7. Walker, A. A., et al. Giant fish-killing water bug reveals ancient and dynamic venom evolution in Heteroptera. Cell. Mol. Life Sci. , (2018).
  8. Walker, A. A., et al. The assassin bug Pristhesancus plagipennis produces two distinct venoms in separate gland lumens. Nature Communications. 9 (1), 755 (2018).
  9. Hernández-Vargas, M. J., Santibáñez-López, C. E., Corzo, G. An insight into the triabin protein family of American hematophagous reduviids: Functional, structural and phylogenetic analysis. Toxins. 8 (2), 44 (2016).
  10. Dan, A., Pereira, M. H., Pesquero, J. L., Diotaiuti, L., Beirao, P. S. Action of the saliva of Triatoma infestans (Heteroptera: Reduviidae) on sodium channels. Journal of Medical Entomology. 36 (6), 875-879 (1999).
  11. Corzo, G., Adachi-Akahane, S., Nagao, T., Kusui, Y., Nakajima, T. Novel peptides from assassin bugs (Hemiptera: Reduviidae): isolation, chemical and biological characterization. FEBS Letters. 499 (3), 256-261 (2001).
  12. Sahayaraj, K., Kumar, S. M., Anandh, G. P. Evaluation of milking and electric shocks for venom collection from hunter reduviids. Entomon. 31 (1), 65-68 (2006).
  13. Silva-Cardoso, L., et al. Paralytic activity of lysophosphatidylcholine from saliva of the waterbug Belostoma anurum. Journal of Experimental Biology. 213 (19), 3305-3310 (2010).
  14. Noeske-Jungblut, C., et al. Triabin, a highly potent exosite inhibitor of Thrombin. Journal of Biological Chemistry. 270 (48), 28629-28634 (1995).
  15. Noeske-Jungblut, C., et al. An inhibitor of collagen-induced platelet aggregation from the saliva of Triatoma pallidipennis. Journal of Biological Chemistry. 269 (7), 5050-5053 (1994).
  16. Sahayaraj, K., Borgio, J. F., Muthukumar, S., Anandh, G. P. Antibacterial activity of Rhynocoris marginatus (Fab.) and Catamirus brevipennis (Servile) (Hemiptera: Reduviidae) venoms against human pathogens. Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. 12 (3), 487-496 (2006).
  17. Haridass, E. T., Ananthakrishnan, T. N. Functional morphology of the salivary system in some reduviids (Insecta-Heteroptera-Reduviidae). Proceedings of the Indian Academy of Sciences. Animal Sciences. 90 (2), 145-160 (1981).
  18. Maran, S. P. M., Ambrose, D. P., Ignacimuth, A., Sen, A., Janarthanan, S. . Biotechnological Applications for Integrated Pest Management. , 125-131 (2000).
  19. Maran, S. P. M., Selvamuthu, K., Rajan, K., Kiruba, D. A., Ambrose, D. P., Ambrose, D. P. . Insect Pest Management, A Current Scenario. , 346-361 (2011).
  20. Pereira, M. H., et al. Anticoagulant activity of Triatoma infestans and Panstrongylus megistus saliva (Hemiptera/Triatominae). Acta Tropica. 61, 255-261 (1996).
  21. Ribeiro, J. M., Marinotti, O., Gonzales, R. A salivary vasodilator in the blood-sucking bug, Rhodnius prolixus. British Journal of Pharmacology. 101 (4), 932-936 (1990).
  22. Ribeiro, J. M., Schneider, M., Guimarães, J. A. Purification and characterization of prolixin-S (nitrophorin 2), the salivary anticoagulant of the blood-sucking bug Rhodnius prolixus. Biochem Journal. 308 (1), 243-249 (1995).
  23. Swart, C. C., Deaton, L. E., Felgenhauer, B. E. The salivary gland and salivary enzymes of the giant waterbugs (Heteroptera; Belostomatidae). Comparative Biochemistry and Physiology A Molecular & Integrative Physiology. 145 (1), 114-122 (2006).
  24. Rasmussen, S., Young, B., Krimm, H. On the ‘spitting’ behaviour in cobras (Serpentes: Elapidae). Journal of Zoology. 237 (1), 27-35 (1995).
  25. Fink, L. S. Venom spitting by the green lynx spider, Peucetia viridans (Araneae, Oxyopidae). Journal of Arachnology. 12, 372-373 (1984).
  26. Herzig, V. Ontogenesis, gender, molting influence the venom yield in the spider Coremiocnemis tropix (Araneae, Theraphosidae). Journal of Venomous Research. 1, 76-83 (2010).
  27. Sahayaraj, K., Subramanium, M., Rivers, D. Biochemical and electrophoretic analyses of saliva from the predatory reduviid species Rhynocoris marginatus (Fab). Acta Biochimica Polonica. 60 (1), 91-97 (2013).
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Citer Cet Article
Walker, A. A., Rosenthal, M., Undheim, E. E. A., King, G. F. Harvesting Venom Toxins from Assassin Bugs and Other Heteropteran Insects. J. Vis. Exp. (134), e57729, doi:10.3791/57729 (2018).

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