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Article de méthode

FM colorant cyclisme au niveau de la Synapse : en comparant la dépolarisation élevés de Potassium, électrique et Stimulation de la Channelrhodopsin

8.3K vues

DOI :

10.3791/57765

24 mai 2018

Dans cet article

Résumé

Les vésicules synaptiques (SV) le vélo est le mécanisme central de la communication intercellulaire au niveau des synapses neuronales. Libération et l’absorption de teinture de FM sont les principaux moyens de dosage quantitatif SV endo - et l’exocytose. Nous comparons ici, toutes les méthodes de stimulation pour conduire FM1-43 cyclisme synaptique jonction neuromusculaire (NMJ) modèle drosophile .

Résumé

FM colorants sont utilisés pour étudier le cycle de la vésicule synaptique (SV). Ces sondes amphipathic ont une tête hydrophile et une queue hydrophobe, ce qui les rend solubles dans l’eau avec la capacité de façon réversible, entrer et sortir des bicouches lipidiques membranaires. Ces colorants styryl sont relativement non fluorescent en milieu aqueux, mais l’insertion dans le feuillet externe de la membrane plasmique provoque un > 40 X augmentation de fluorescence. Dans les synapses neuronales, FM colorants sont intériorisées au cours de l’endocytose SV, victimes de la traite au sein et entre les bassins de la SV et libérée par exocytose SV, fournissant un outil puissant pour visualiser les étapes présynaptiques de la neurotransmission. Un modèle génétique primaire de développement synapse glutamatergique et la fonction est la drosophile jonction neuromusculaire (NMJ), où FM teindre imagerie a été largement utilisée pour quantifier la dynamique de la SV dans un large éventail de conditions mutants. Le terminal synaptique NMJ est facilement accessible, avec une belle palette de grands boutons synaptiques idéales pour les applications d’imagerie. Ici, nous comparer et contraster les trois façons de stimuler la drosophile NMJ pour piloter l’activité dépendante FM1-43 colorant capture/release : demande 1) bain de haut [K+] à dépolariser tissus neuromusculaires, 2) aspiration des nerfs moteurs électrode stimulation à dépolariser le nerveuses présynaptiques terminal et 3) cible expression transgénique des variantes de channelrhodopsin pour le contrôle spatial, stimulée par la lumière de la dépolarisation. Chacune de ces méthodes a des avantages et des inconvénients pour l’étude des effets de la mutation génétique sur le cycle de la SV à la drosophile NMJ. Nous allons discuter de ces avantages et les inconvénients pour aider la sélection de l’approche de la stimulation, ainsi que les méthodologies spécifiques à chacune de ces stratégies. En plus de l’imagerie de fluorescence, FM colorants peuvent être photoconverted aux signaux dense aux électrons visualisés à l’aide de microscopie électronique à transmission (TEM) pour étudier les mécanismes cycle SV au niveau ultrastructural. Nous fournissons les comparaisons de confocale et microscopie imagerie de différentes méthodes de stimulation NMJ Drosophila , pour aider à guider la sélection des futurs paradigmes expérimentaux.

Introduction

Le modèle de synapse et de glutamatergique caractérise magnifiquement Drosophila larvaire de la jonction neuromusculaire (NMJ) a été utilisé pour étudier la formation des synapses et la fonction avec un vaste éventail de perturbations génétiques1. Le terminal de neurones moteurs se compose de plusieurs branches axon, chacun avec plusieurs boutons synaptiques élargies. Ces varicosités de grande capacitées (jusqu'à 5 µm de diamètre) contiennent toute la machinerie de la neurotransmission, y compris les vésicules synaptiques glutamatergique uniforme (SVs ; ~ 40 nm de diamètre) dans la réserve cytosolique et piscines facilement libérable p....

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Protocole

1. larves colle Dissection

  1. Bien mélanger 10 parties en élastomère de silicone base avec 1 partie en élastomère de silicone polymérisation agent du kit élastomère (Table des matières).
  2. Enrober les lamelles de verre de 22 x 22 mm avec l’élastomère et le remède sur une plaque chauffante à 75 ° c pendant plusieurs heures (jusqu'à ce que n’est plus collant au toucher).
  3. Placez une lamelle de verre élastomère unique dans la chambre de dissection de verre plexi sur mesure (Figure 1, en bas) en préparation pour la dissection larvaire.
  4. Préparer les pipettes de colle de capillaire de verre bor....

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Résultats

La figure 1 illustre le flux de travail pour la teinture de FM activité-dépendant du protocole d’imagerie. L’expérience commence toujours par la dissection de larves colle même, peu importe la méthode de stimulation utilisée par la suite. Figure 1 a est une représentation schématique d’une larve disséquée, montrant le cordon nerveux ventral (VNC), irradiant les nerfs et modèle muscle hemisegmental répétées. VNC est supprimé et la.......

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Discussion

Haute [K+] la stimulation dépolarisante saline est de loin le plus facile des trois options pour la teinture de FM activité-dépendant du cyclisme, mais probablement la moins physiologique29. Cette méthode simple dépolarise chaque cellule accessible chez l’animal entier et donc ne permet pas aux études dirigées. Il peut être possible d’appliquer localement élevés [K+] une solution saline avec une micropipette, mais cela sera toujours dépolariser les cellules pré/postsynaptique.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêts opposés.

Remerciements

Nous remercions les membres Broadie Lab pour contribution à cet article. Ce travail a été soutenu par les NIH R01s MH096832 et MH084989 à K.B. et NIH pré-doctoral fellowship F31 MH111144 à D.L.K.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
SylGard 184 Kit d’élastomère de siliconeFisher ScientificNC9644388À mettre en verre de protection pour dissections
Verre de protection de microscope 22x22-1Fisherbrand12-542-BPour mettre SylGard pour les dissections
Plaque chauffante supérieure en aluminium Type 2200ThermolyneHPA2235MPour durcir la chambre de dissection en verre Plexi SylGard
N/AN/AFait à la main
Capillaires en verre borosilicatéWPI1B100F-4Pour fabriquer des micropipettes d’aspiration et de colle
Extracteur de micropipettes à base laserSutter InstrumentP-2000Pour fabriquer des micropipettes d’aspiration et de colle
Tygon E-3603 Laboratory TubingComponent Supply Co.TET-031APour pipette à bouche et à aspiration
P2 Pointe de pipetteUSA Scientific1111-3700Pour pipette à bouche
0,6 mL Capuchon de tube EppendorfFisher Scientific05-408-120Utilisé pour mettre de la colle pour la dissection
Vetbond 3MWPIvetbondColle utilisée pour les dissections
Chlorure de potassiumFisher ScientificP-217Forsaline
Chlorure de sodiumMillipore SigmaS5886Pour
chlorure de magnésiumFisher ScientificM35-500
chlorure de calcium dihydratésalin Millipore SigmaC7902Pour
saccharoseFisher ScientificS5-3Pour
HEPESMillipore SigmaH3375Pour le sel
HRP : Alexa Fluor 647Jackson ImmunoResearch123-605-021Pour étiqueter les membranes neuronales
PinceauWinsor & Newton94376864793Pour manipuler les larves
Dumont Dumostar Pince à épiler #5WPI500233Utilisé lors
7 cm Microciseaux McPherson-Vannas (lames 3 mm)WPI14177Utilisé lors de la dissection  ;
FM1-43Fisher ScientificT35356Colorant styryle fluorescent
Minuterie numériqueVWR62344-641Pour le chronométrage du chargement/déchargement du colorant FM  ;
LSM 510 META Microscope confocal à balayage laserZeissPour l’imagerie des marqueurs fluorescents
Zen 2009 SP2 version 6.0ZeissLogiciel pour l’imagerie sur laser confocal
HeNe 633nmLasosPour exciter HRP :647 pendant l’imagerie
Laser Argon 488nmLasosPour exciter le colorant FM pendant l’imagerie
Micro-ForgeWPIMF200Pour polir le feu micropipettes en verre
20mL Seringue Slip TipBD301625Pour aspirer l’axone pour la stimulation électrique.
Micro manipulateur (base magnétique)NarishigeMMN-9Pour contrôler l’électrode d’aspiration pour la stimulation électrique
StimulateurGrassS48Pour contrôler la LED et la stimulation électrique
Zeiss Axioskop MicroscopeZeissstimulation électrique.
Objectif d’immersion dans l’eau 40X AchroplanZeissla stimulation électrique et de l’imagerie confocale
All-transRetinal Millipore SigmaR2500Cofacteur essentiel pour le microscope ChR2
Zeiss Stemi avec portde caméra Zeiss2000-CUtilisé lors de la stimulation par canalrhodopsine
LED 470nmThorLabsM470L2Utilisé pour l’activation de la ChR
T-Cube LED DriverThorLabsLEDD1BPour contrôler l’alimentation LED
Cincon Electronics Co.TR15RA150Pour alimenter la LED
Compteur optique de puissance et d’énergieThorLabsPM100DPour mesurer l’intensité des LED
le salin Pour le le salin le sel de la dissection Utilisé lors de la Utilisé lors de

Références

  1. Menon, K. P., Carrillo, R. A., Zinn, K. Development and plasticity of the Drosophila larval neuromuscular junction. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2 (5), 647-670 (2013).
  2. Rizzoli, S. O., Betz, W. J. Synaptic vesicle pools. Nat Rev Neurosci. 6 (1), 57-69 (2005).

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Cycle des v sicules synaptiquesjonction neuromusculaire de Drosophilastimulation lectriquemicroscopie confocalemicroscopie lectronique transmissioncaptation du colorant FM1 43lib ration du colorant FM1 43