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Article de méthode

Mesure de la rigidité des substrats souples en Silicone pour mécanobiologie études utilisant un Microscope à Fluorescence Widefield

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DOI :

10.3791/57797

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3 juillet 2018

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Substrats avec raideur dans la gamme kilopascal sont utiles pour étudier la réponse des cellules à physiologiquement pertinente micro-environnement rigidité. À l’aide d’un microscope à fluorescence widefield juste, le module de Young des gels de silicone souple peut être déterminé en utilisant une mise en retrait avec une sphère adaptée.

Résumé

Des tissus mous dans le corps humain ont généralement des raideurs dans la gamme kilopascal (kPa). En conséquence, les substrats flexibles silicone et hydrogel sont est avérés pour être utiles substrats de culture de cellules dans un micro-environnement physique qui reproduit partiellement des conditions in vivo . Nous présentons ici un protocole simple pour la caractérisation des modules de Young des substrats d’élastiques linéaires isotropes, généralement utilisés pour les études de mécanobiologie. Le protocole consiste à préparer un substrat de silicone souple sur une boîte de Pétri ou silicone rigide, revêtement de la surface supérieure du substrat silicone avec perles fluorescentes, à l’aide d’une sphère à l’échelle du millimètre en retrait de la surface supérieure (par gravité), imagerie de la fluorescence Perles à la surface du silicone en retrait à l’aide d’un microscope à fluorescence et d’analyser les images qui en résultent pour calculer le module de Young du substrat silicone. Couplage de la surface supérieure du substrat avec une protéine de la matrice extracellulaire de modules (outre les perles fluorescentes) permet le substrat de silicone pour être facilement utilisables pour le placage de la cellule et les études ultérieures à l’aide d’expériences de microscopie de force de traction. L’utilisation du silicone rigide, au lieu d’une boîte de Pétri, comme la base de la silicone souple, permet l’utilisation de mécanobiologie études impliquant les tronçon externe. Un avantage spécifique de ce protocole est qu’un microscope widefield à fluorescence, qui est couramment disponible dans nombreux laboratoires, est l’équipement principal nécessaire pour cette procédure. Nous démontrons ce protocole en mesurant le module de Young des substrats souples en silicone de différents coefficients d’élasticité.

Introduction

Les cellules dans les tissus mous se trouvent dans un micro-environnement dont la raideur est dans le kilopascal rang1, à la différence de culture de tissus plats dont la raideur est de plusieurs ordres de grandeur plus élevés. Premières expérimentations avec des cellules sur des substrats mous enduit de protéine de matrice extracellulaire ont montré que la rigidité du substrat influence comment les cellules se déplacent ainsi qu’adhèrent à la matrice extracellulaire sous2,3. En effet, la rigidité du substrat influence fondamentalement la cellule fonction4 d’une ....

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Protocole

1. fabrication de substrats souples en Silicone

  1. Peser avec 1,75 g de la composante A et 1,75 g de la composante B (a : b = 1:1) de la trousse d’élastomère de silicone souple utilisant (polystyrène) pesant plateaux.
  2. Ajouter le composant A pour la composante B dans le plateau de pesage et mélangez-les ensemble pendant 5 min à l’aide d’un bâtonnet applicateur approprié.
  3. Ajouter le mélange ci-dessus à un 35 mm boîte de Pétri. Laissez le mélange de se répandre uniformément dans l’ensemble de la boîte de Pétri pour quelques minutes.
    Remarque : Le choix du diamètre de la boîte de Pétri et la quantité de silicone souple permettra de déterminer....

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Résultats

En utilisant le protocole détaillé ci-dessus, nous préparé silicone souple dans une boîte de Pétri de 35 mm, il guéri à 70 ° C pendant 30 min et couplé microsphères fluorescentes (collagène et j’ai) sur l’extrados comme schématiquement représenté dans la Figure 1. UV profond a été utilisé précédemment pour la protéine éventuelle couplage aux substrats13. Notez que (I) les conditions de polymérisation utilisées ici sont spécifiques.......

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Discussion

Alors que la méthode de mise en retrait de sphère est facile à mettre en œuvre, une attention particulière est versée pour le choix du pénétrateur et l’épaisseur de l’échantillon de silicone souple. L’équation utilisée pour calculer le module de Young est valide en vertu d’un ensemble de conditions11et ceux-ci sont généralement remplies lorsque l’épaisseur de l’échantillon de silicone est > 10 % du rayon indenteur et < ~ 13 x le rayon indenteur. Nous avons constaté qu’une épaisseur de silicone de .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Margaret Gardel généreusement permettant l’utilisation du rhéomètre. Nous reconnaissons l’appui du NIH (1R15GM116082) qui ont permis ce travail.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
CY 52-276 A/B Kit d’élastomère de silicone  ; Dow CorningCY 52-276Conserver à température ambiante
Thermo Scientific Pierce EDCFisher ScientificPI22980Conserver à -20° ; C
Thermo Scientific  ; Pierce Sulfo-NHS réticulantFisher ScientificPI-24510Magasin à 4° ; C
Particules roses fluorescentes carboxyles, 0,4-0,6 & micro ; m, 2 mLSpherotech, Inc.CFP-0558-2Magasin à 4° ; C, ne pas congeler
1,0 mm Perles de zirconium lavées à l’acideOPS Diagnostics LLCBAWZ 1000-250-33
Chambre UV profonde avec évacuateur d’ozoneNovascan Technologies, Inc.PSD-UV4, OES-1000D
Microscope à fluorescence grand champLeica MicrosystemsDMi8
Collagène I, à partir de la queue de ratCorning354236Concentration du stock = 4 mg/ml ; stocker à 4° ; C
ImageJ-NIHN/AN/Alogiciel du domaine public

Références

  1. Handorf, A. M., Zhou, Y., Halanski, M. A., Li, W. J. Tissue stiffness dictates development, homeostasis, and disease progression. Organogenesis. 11 (1), 1-15 (2015).
  2. Pelham, R. J., Wang, Y. -L. Cell locomotion and focal adhesion....

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Réimpressions et autorisations

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