Summary

哺乳類 Bestrophin イオン チャネルの発現と精製

Published: August 02, 2018
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Summary

イオン チャネルの浄化はしばしば困難、しかし、一度は、それが悪意のチャネルの構造と機能の生体外で調査。ここでは、式と哺乳類 bestrophin 蛋白質、Ca2 +の家族の浄化の段階的な手順を述べる-Clチャンネルを活性化します。

Abstract

人間のゲノムは、4 つの bestrophin paralogs、すなわち BEST1、BEST2、ベスト 3、ベスト 4 をエンコードします。BEST1の遺伝子によって符号化される BEST1 は、Ca2 +-アクティブに Clチャネル (CaCC) 主に網膜色素上皮 (RPE) で表されます。BEST1 の生理学的および病理学的意義がBEST1遺伝子の 200 以上の異なる変異が最高の卵黄など少なくとも 5 つの網膜変性疾患のスペクトルに遺伝的リンクされているという事実によって強調表示されます。黄斑ジストロフィー (疾患)。したがって、非常に大きな意義を保持 bestrophin チャネルを単一分子レベルでの生物物理を理解すること。ただし、精製された哺乳類のイオン チャネルを得ることはやりがいのある仕事ではしばしばです。ここで、哺乳類 bestrophin BacMam バキュロ ウイルスの遺伝子の転送システムと親和性とサイズ排除クロマトグラフィーの浄化蛋白質の表現のためのプロトコルを報告します。浄化された蛋白質脂質二重層と結晶の電気生理学的記録など、以降の機能・構造解析に活用される可能性があります。重要なは、このパイプラインは他のイオン チャネルの構造と機能を研究する合わせることができます。

Introduction

Bestrophins は、人間1細菌からさまざまな種を保存するイオン チャネルの家族です。ヒトでは、 BEST1の遺伝子、染色体 11q12.3 に位置するエンコード膜タンパク質 Bestrophin-1 (BEST1) 目2,3 の網膜色素上皮 (RPE) 細胞の基底膜で主に表される ,4。うち最初の 〜 350 種間保存性が高いと、膜貫通領域を含む、585 アミノ酸から成る BEST1 人間1,5,6に CaCC を果たします。さらに、鶏の BEST1 同族体および肺炎桿菌の両方として機能する homopentamers78、進化を通じて保全の高レベルを示唆しています。

ヒトでは、200 以上BEST1遺伝子変異を臨床的に bestrophinopathies1,9と呼ばれる網膜変性疾患のグループにリンクされています。ベスト病、成人発症卵黄状黄斑ジストロフィー、常染色体優性の支配的な vitreoretinochoroidopathy、常染色体優性劣性 bestrophinopathy、網膜色素変性症3,4 など 5 つの特定の bestrophinopathies が報告されています。 ,,1011,12,13,14。視力の低下、さらには失明につながるが、これらの病気、現在治療されます。治療上の処置および可能性のある個人化された薬を開発するために関数と BEST1 チャネル15の構造のこれらのBEST1病気を引き起こす突然変異の影響を理解するが重要です。これらの目的のための研究者の in vitro解析5,8を行い精製 bestrophin (野生型および変異) チャンネルを取得する必要があります。

最初の重要なステップは、哺乳類細胞における高い種から bestrophin チャンネルの式です。このプロトコルが堅牢な発現の最適化された BacMam ベクトル (BacMam pEG) を利用して F HEK293 細胞 (BacMam システム) のバキュロ ウイルス伝達はクローン膜タンパク質16,17を表現する強力な方法は、ターゲット蛋白質18, この場合 bestrophin 哺乳類ホモログであります。このベクターは、G タンパク質共役受容体、核内受容体、イオン チャンネル18など、各種の膜タンパク質の発現のために使用されています。また、作り出されたタンパク質が結晶18に適している証拠です。F HEK293 細胞における発現の高レベルの蛋白質できます、精製するクロマトグラフィー具体的には、bestrophins、場合親和性とサイズ排除クロマトグラフィーを使用することができます。

このプロトコルは bestrophin チャンネルの微調整が、浄化された蛋白質は関数と平面脂質二分子膜とそれぞれ5,8、x 線結晶構造解析による構造を分析できます。完全に、これらのテクニックは、bestrophins と他のイオン チャネルの構造と機能の調査のため強力なパイプラインを提供します。

Protocol

1. 生産 BacMam 式バキュロ BacMam ベクトル18 GFP 10 続くタバコ Etch ウイルス (TEV) プロテアーゼ認識シーケンス、ペグに必要な哺乳類 bestrophin 蛋白質のコーディング シーケンスを挿入、タンパク質の C 末端タグ x。 一過性発現プラスミドを接着剤 HEK293 細胞19,20,21,22,…

Representative Results

一過性トランスフェクション接着 HEK293 細胞 (図 1 a) の蛍光強度は、サスペンション F HEK293 細胞 (図 1 b) に投影されたタンパク質発現レベルの良い指標です。表現の構成要素を変更することを検討する場合はターゲット蛋白質が発現された、または、誤 HEK293 細胞にトランスフェクション後ローカライズされて、お勧め (e…

Discussion

このプロトコルでは、将来の in vitro解析に使用される哺乳類 bestrophin イオン チャネルの発現と精製に有用なパイプラインについて説明します。サイズ排除クロマトグラフィー用 FPLC デバイス、シリンジ ポンプはアフィニ ティー ・ クロマトグラフィーのバインド、洗濯、溶出性などのすべてのステップのために十分。列を (注射器) でプッシュ ソリューションにシリンジ ポンプを使?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

このプロジェクトは、立ち上げ資金のためのロチェスターの大学、GM127652、NIH 助成金 EY025290 で賄われていた。

Materials

HEPES Fisher Scientific AC327265000 
NaCl Fisher Scientific AC446212500
Glycerol Fisher Scientific G33-500
Imidazole Fisher Scientific AC301870010
MgCl2 Fisher Scientific AC197530010 
TCEP Fisher Scientific AA4058704 
Aprotinin Fisher Scientific AAJ63039MA
Leupeptin Fisher Scientific AAJ61188MB 
Pepstatin A Fisher Scientific AAJ20037MB
Phenylmethylsulfonyl fluoride Fisher Scientific AC215740050
DDM sol-grade Anatrace D310S
DDM anagrade Anatrace D310
Sf-900 II SFM ThermoFisher 10902179
FreeStyle medium ThermoFisher 12338018
NanoDrop spectrophotometer ThermoFisher ND-2000
High pressure homogenizer Avestin Emulsiflex-C5
HisTrap column GE 17-5248-01
Superdex-200 column GE 28990944
AKTA Pure GE 29018224
Ultra-15 centrifugal filter units Millipore UFC910024
Ultra-4 centrifugal filter units Millipore UFC810024
Ultra-0.5 centrifugal filter units Millipore UFC505024
Optima XE-90 Ultracentrifuge Beckman Coulter A94471
Mini-PROTEAN Tetra Cell Bio-Rad 1658004
Mini-PROTEAN precast gel Bio-Rad 4561084
T100 Thermal Cycler Bio-Rad 1861096
PolyJet transfection reagent SignaGen SL100688
pEG BacMam vector Obtained from the Gouaux lab at Vollum Institute

References

  1. Hartzell, H. C., Qu, Z., Yu, K., Xiao, Q., Chien, L. T. Molecular physiology of bestrophins: multifunctional membrane proteins linked to best disease and other retinopathies. Physiological Review. 88 (2), 639-672 (2008).
  2. Marmorstein, A. D., et al. Bestrophin, the product of the Best vitelliform macular dystrophy gene (VMD2), localizes to the basolateral plasma membrane of the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 97 (23), 12758-12763 (2000).
  3. Marquardt, A., et al. Mutations in a novel gene, VMD2, encoding a protein of unknown properties cause juvenile-onset vitelliform macular dystrophy (Best’s disease). Human Molecular Genetics. 7 (9), 1517-1525 (1998).
  4. Petrukhin, K., et al. Identification of the gene responsible for Best macular dystrophy. Nature Genetics. 19 (3), 241-247 (1998).
  5. Li, Y., et al. Patient-specific mutations impair BESTROPHIN1’s essential role in mediating Ca2+-dependent Cl- currents in human RPE. eLife. 6, (2017).
  6. Tsunenari, T., et al. Structure-function analysis of the bestrophin family of anion channels. Journal of Biological Chemistry. 278 (42), 41114-41125 (2003).
  7. Kane Dickson, V., Pedi, L., Long, S. B. Structure and insights into the function of a Ca(2+)-activated Cl(-) channel. Nature. 516 (7530), 213-218 (2014).
  8. Yang, T., et al. Structure and selectivity in bestrophin ion channels. Science. 346 (6207), 355-359 (2014).
  9. Johnson, A. A., et al. Bestrophin 1 and retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. , (2017).
  10. Allikmets, R., et al. Evaluation of the Best disease gene in patients with age-related macular degeneration and other maculopathies. Human Genetics. 104 (6), 449-453 (1999).
  11. Burgess, R., et al. Biallelic mutation of BEST1 causes a distinct retinopathy in humans. American Journal of Human Genetics. 82 (1), 19-31 (2008).
  12. Davidson, A. E., et al. Missense mutations in a retinal pigment epithelium protein, bestrophin-1, cause retinitis pigmentosa. American Journal of Human Genetics. 85 (5), 581-592 (2009).
  13. Kramer, F., et al. Mutations in the VMD2 gene are associated with juvenile-onset vitelliform macular dystrophy (Best disease) and adult vitelliform macular dystrophy but not age-related macular degeneration. European Journal of Human Genetics. 8 (4), 286-292 (2000).
  14. Yardley, J., et al. Mutations of VMD2 splicing regulators cause nanophthalmos and autosomal dominant vitreoretinochoroidopathy (ADVIRC). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (10), 3683-3689 (2004).
  15. Yang, T., Justus, S., Li, Y., Tsang, S. H. BEST1: the Best Target for Gene and Cell Therapies. Molecular Therapy. 23 (12), 1805-1809 (2015).
  16. Boyce, F. M., Bucher, N. L. Baculovirus-mediated gene transfer into mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 93 (6), 2348-2352 (1996).
  17. Kost, T. A., Condreay, J. P., Jarvis, D. L. Baculovirus as versatile vectors for protein expression in insect and mammalian cells. Nature Biotechnology. 23 (5), 567-575 (2005).
  18. Goehring, A., et al. Screening and large-scale expression of membrane proteins in mammalian cells for structural studies. Nature Protocols. 9 (11), 2574-2585 (2014).
  19. Yang, T., He, L. L., Chen, M., Fang, K., Colecraft, H. M. Bio-inspired voltage-dependent calcium channel blockers. Nature Communications. 4, 2540 (2013).
  20. Yang, T., Hendrickson, W. A., Colecraft, H. M. Preassociated apocalmodulin mediates Ca2+-dependent sensitization of activation and inactivation of TMEM16A/16B Ca2+-gated Cl- channels. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 111 (51), 18213-18218 (2014).
  21. Yang, T., Puckerin, A., Colecraft, H. M. Distinct RGK GTPases differentially use alpha1- and auxiliary beta-binding-dependent mechanisms to inhibit CaV1.2/CaV2.2 channels. Public Library of Science One. 7 (5), e37079 (2012).
  22. Yang, T., Suhail, Y., Dalton, S., Kernan, T. Genetically encoded molecules for inducibly inactivating CaV channels. Nature Chemical Biology. 3 (12), 795-804 (2007).
  23. Yang, T., Xu, X., Kernan, T., Wu, V. Rem, a member of the RGK GTPases, inhibits recombinant CaV1.2 channels using multiple mechanisms that require distinct conformations of the GTPase. Journal of Physiology. 588 (Pt 10), 1665-1681 (2010).
  24. Kawate, T., Gouaux, E. Fluorescence-detection size-exclusion chromatography for precrystallization screening of integral membrane proteins. Structure. 14 (4), 673-681 (2006).
  25. Schmidt, C., Urlaub, H. Combining cryo-electron microscopy (cryo-EM) and cross-linking mass spectrometry (CX-MS) for structural elucidation of large protein assemblies. Currents Opinions in Structural Biology. 46, 157-168 (2017).
  26. Sun, W., Zheng, W., Simeonov, A. Drug discovery and development for rare genetic disorders. American Journal of Medical Genetics Part A. 173 (9), 2307-2322 (2017).

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Citer Cet Article
Kittredge, A., Ward, N., Hopiavuori, A., Zhang , Y., Yang, T. Expression and Purification of Mammalian Bestrophin Ion Channels. J. Vis. Exp. (138), e57832, doi:10.3791/57832 (2018).

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