Method Article

Incorporation de ribonucléotide Experimentation : Strand spécifiques détection des ribonucléotides dans le génome de la levure et mutagénèse induite par la ribonucléotide de mesure

DOI:

10.3791/58020

July 26th, 2018

In This Article

Summary

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Ribonucléotides sont parmi les plus abondantes nucléotides non-canoniques incorporés dans le génome au cours de la réplication de l’ADN nucléaire eucaryote. Si pas correctement supprimé, ribonucléotides peuvent provoquer de mutagenèse et dommages à l’ADN. Nous présentons ici deux approches expérimentales qui sont utilisés pour évaluer l’abondance de l’incorporation de ribonucléotide dans l’ADN et de ses effets mutagènes.

Abstract

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La présence des ribonucléotides dans l’ADN nucléaire s’est avérée être une source d’instabilité génomique. La mesure de l’incorporation de ribonucléotide peut être évaluée par hydrolyse alcaline et électrophorèse sur gel que l’ARN est très sensible à l’hydrolyse en milieu basique. Ceci, en combinaison avec une analyse Southern peut servir à déterminer l’emplacement et le chapelet dans les ribonucléotides qui ont été incorporés. Toutefois, cette procédure est seulement semi-quantitative et peut-être pas assez sensible pour détecter de petits changements dans le contenu de ribonucléotide, bien que le volet spécifique Southern blot sonder améliore la sensibilité. Titre de l’un des plus frappants conséquences biologiques des ribonucléotides dans l’ADN, mutagenèse spontanée peut être analysée à l’aide d’un test de mutation vers l’avant. En utilisant les gènes appropriés, des mutations rares qui entraîne la perte de fonction peuvent être sélectionné et global et taux de mutation spécifique peuvent être mesurées en combinant les données des expériences de fluctuation avec le séquençage de l’ADN du gène rapporteur. L’essai de fluctuation est il y a lieu d’examiner un large éventail de processus mutagènes dans les antécédents génétiques spécifiques ou des conditions de croissance.

Introduction

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Au cours de la réplication de l’ADN nucléaire eucaryote, ribonucléotides sont incorporées dans le génome de tous les trois principaux replicases de l’ADN, ADN polymérases (PPS) α, ε et δ1,2. Réparation par excision de RNase H2-dépendante ribonucléotide (RER3) supprime la plupart de ces ribonucléotides incorporés.

Un ribonucléotide dans l’ADN est sensible à l’hydrolyse, le 2' groupe hydroxyle de la portion de sucre peut attaquer la liaison phosphodiester adjacente, libérant une extrémité avec un 2' - 3' phosphate cyclique et l’autre avec une 5'-OH

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Protocol

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1. alcaline hydrolyse et Strand spécifiques Southern Blot (Figure 1)

  1. La croissance cellulaire et l’isolement d’ADN génomique
    1. Isoler l’ADN génomique de levure à l’aide d’une levure kit de purification d’ADN suivant les instructions du fabricant. Utilisez les cultures qui se trouvent dans la phase exponentielle de croissance entre (densité optique de 0,5) et 1. Resuspendre le culot d’ADN final dans 35 mL de 1 x tampon TE (10 mM Tris-HCl, pH 7.5, l’acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA) de 1 mM).
    2. Ajouter 1 mL de 5 mg/mL RNase A dans l’ADN et incuber 30 min à 37 ° C.
    3. Précipiter l’ADN à l’aide de volu....

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Results

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Traitement d’ADN génomique à l’alcali, suivi par électrophorèse sur gel alcalin permet une détection semi-quantitative de la fragmentation de l’ADN en raison de l’abondance des ribonucléotides stablement incorporés. La figure 2 montre les images de gel de levure ADN génomique traité avec ou sans KOH5. La variante M644L de Pol2, la sous-unité catalytique de la Polε, a réduit la capacité d’incorporer des ribonucléotides tandis que le mut.......

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Discussion

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Nous décrivons ici les protocoles des deux séries d’expériences qui sont fréquemment utilisés pour analyser quantitativement semi ribonucléotides constituées au cours de la réplication de l’ADN et les effets mutagènes des ribonucléotides non réparés. Bien que ces approches impliquent l’eucaryote modèle S. cerevisiae, ces techniques peuvent être facilement adaptés à d’autres microbes et eucaryotes supérieurs même.

De détection des ribonucléotides non réparés dans l’ADN à l’aide d’alcal.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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Nous remercions tous les membres actuels et anciens Kunkel Lab pour leur travail et les discussions relatives au protocole et réutiliser les données présentées ici. Ce travail a été soutenu par projet Z01 ES065070 à T.A.K. de la Division de la recherche intra-muros des National Institutes of Health (NIH), National Institute of Environmental Health Sciences (NIEHS).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
YPD20 g de dextrose, 20 g de peptone, 10 g d’extrait de levure, en H2O désionisé jusqu’à 1 L, ajouter 20 g de gélose Bacto pour milieu solide, autoclave.
Plaques1,3 g de mélange de chute SC, 1,7 g de base azotée de levure sans acides aminés ou (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g de dextrose, 20 g de gélose Bacto désionisée H2O jusqu’à 1 L. Ajuster le pH à 5,8. Autoclave et 30 &ndash ; 35 ml par assiette.
Plaques1,3 g de poudre de chute SC-Ura, 1,7 g de base azotée de levure sans acides aminés ou (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g de dextrose, 20 g d’agar Bacto, 25 mg d’uracile et H2O jusqu’à 1 L. Autoclave pendant 15 min à 121 ° ; C et refroidir à 56 °C. Ajouter 6 mL de solution de sulfate de canavanine à 1 % stérilisée par filtre.
5-FOA en plaques1,3 g de poudre de chute SC-Ura, 1,7 g de base azotée de levure sans acides aminés ou (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g de dextrose, 20 g de gélose Bacto, 25 mg d’uracile et H2O jusqu’à 800 mL. Autoclave pendant 15 mins à 121 ° ; C et refroidir à 60 °C. Ajouter 200 mL de solution de 5-FOA stérilisée par filtre à 0,5 %.
L-Canavaninesulfate US BiologicalC1050
5-FOAUS BiologicalF5050
TubeN’importe quelle marque
Rotateur de culture en 30 ° ; IncubateurC L’incubateur Shaker peut être utilisé à la place
96 plaquesStérile, n’importe quelle marque
Perles de verre de 3 mmFisher Scientific11-312AAutoclave avant utilisation Pipettes
à 12 canauxN’importe quelle marque
Ex Taq DNA PolyméraseTaKaRaRR001
Epicentre MasterPure Yeast DNA Kit de purificationEpicenterMPY80200
3 M acétate de sodiumSigma-AldrichS7899
Fluorimètre 100 % éthanol
Qubit 2.0InvitrogenQ32866Modèle plus récent disponible
dsDNA BR Kit de dosageInvitrogenQ32850
KOHSigma-Aldrich221473
EDTASigma-AldrichE7889
Ficoll 400Dot Scientific Inc.
Vert bromocrésolEastman6356
Xylène cyanol FFInternational Technologies Inc.72120
NaOHSigma-AldrichS8045
1 M Tris-HCl (pH 8,0)TeknovaT5080
SYBR Gold Nucleic Acid Gel StainInvitrogenS11494
Transilluminateur
Amersham Membrane nylon Hybond-N+GE HealthcareRPN303B
3 MM CHR Papier de chromotographieWhatman3030-392
NaClCaledon7560-1
Stratalinker 1800Stratagene
QIAquick PCR Purification KitQiagen28106
G-25 spin columnGE Healthcare27-5325-01
1 M Tampon phosphate de sodium (pH 7,2)Sigma-AldrichNaH2PO4 (S9638) ;
Na2HPO4 (S9390)
SDSSigma-AldrichL4522
BSASigma-AldrichA3059
FormamideSigma-Aldrich47671
Compteur
Milieu COM CAN de culture en verre de 20 mL à fond rond DSF10400UV Geiger

References

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  1. Joyce, C. M. Choosing the right sugar: how polymerases select a nucleotide substrate. Proceedings of the National Acaddemy of Sciences U S A. 94 (5), 1619-1622 (1997).
  2. Nick McElhinny, S. A., et al.

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Ribonucleotide IncorporationAlkaline Gel ElectrophoresisStrand specific Southern BlotYeast Genome AnalysisForward Mutation AssayFluctuation ExperimentDNA Polymerase VariantsAlkaline HydrolysisRadioactive Probe HybridizationGenomic Instability

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