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Article de méthode

Toluidine bleu coloration des Sections enrobées dans la résine pour l’évaluation de la morphologie des nerfs périphériques

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DOI :

10.3791/58031

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3 juillet 2018

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole afin de visualiser les structures fines des nerfs périphériques en obtenant et en coloration de 1 à 2 µm sections avec toluidine bleu

Résumé

Nerfs périphériques s’étendent dans tout le corps, qui innervent les tissus cibles avec les axones moteurs ou sensoriels. En raison de la généralisation, les nerfs périphériques sont souvent endommagés en raison d’un traumatisme ou d’une maladie. Méthodes et stratégies ont été développées pour évaluer les lésions des nerfs périphériques dans des modèles animaux, fonction et régénération, analysant la morphométrie des nerfs périphériques est devenue une mesure essentielle issue terminale. Points de coloration du nerf croix bleu de toluidine obtenues des sections nerveuses résine intégrée est une méthode reproductible pour les évaluations qualitatives et quantitatives des nerfs périphériques, permettant la visualisation de morphologie nombre d’axones et le degré de myélinisation. Cette technique, comme pour beaucoup d’autres méthodes histologiques, peut être difficile à apprendre et à maîtriser à l’aide de protocoles standard de l’écrits. Cette publication vise donc à accentuer des protocoles écrits pour la coloration des nerfs périphériques à la vidéographie de la méthode, à l’aide de nerfs sciatiques récoltés des rats bleu de toluidine. Dans ce protocole, nous décrivons la fixation in vivo des nerfs périphériques et collection du tissu et après fixation avec 2 % le tétroxyde d’osmium, incorporant des nerfs dans la résine époxyde et ultramicrotome sectionnement des nerfs à 2μm-1 épaisseur. Les sections nerveuses puis transféré à une lame de verre et colorées au bleu de toluidine, après quoi ils sont quantitativement et qualitativement évalués. Exemples de problèmes les plus courants sont indiqués, ainsi que des mesures pour atténuer ces problèmes.

Introduction

Nerfs périphériques s’étendent dans tout le corps, qui innervent les tissus cibles avec des axones moteurs ou sensoriels1. Nerfs périphériques congénitales causées par des troubles médicaux et les traumatismes représentent un problème majeur de santé publique et ont de grandes incidences économiques2,3. Malgré les progrès dans l’évaluation des résultats des lésions des nerfs périphériques et comprendre la régénération nerveuse, les méthodes traditionnelles comme l’histologie nerveuse et des techniques de coloration sont des outils indispensables pour évaluer qualitativement et quantitat....

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Protocole

Rats Sprague Dawley adultes ont été utilisées dans ce projet et toutes les procédures ont été approuvées par le Comité de l’utilisation et le soin des animaux institutionnels Université du Wyoming.

1. chirurgie et dans la Fixation du nerf Vivo

Remarque : Les informations sur le fournisseur pour tous les matériaux et équipements utilisés dans le présent protocole sont répertoriés dans la Table des matières.

NOTE : In vivo le fixation de nerf sert à préserver les tissus et réduire la dégradation structurelle qui peut survenir entre le moment de la mort et....

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Résultats

Résine intégrée des nerfs périphériques sections colorées au toluidine bleues permettent des analyses quantitatives précises données histologiques. Un aperçu de la procédure apparaît (Figure 2). Sections de nerfs sciatiques incorporé dans le milieu de la résine et colorées au bleu de toluidine a montré clairement des images avec une résolution optimale (3 chiffres). Lésions nerveuses peuvent causer beaucoup de changements dans le nerf les str.......

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Discussion

Examens des structures morphologiques des lésions du nerf périphérique et la régénération sont fréquents sujets d’étude13. Dans ce protocole, nous décrivons les étapes pour obtenir des images de haute qualité pour les analyses quantitatives de données histologiques à l’aide de tissu de nerf sciatique du rat incorporés dans des blocs de résine et colorées au bleu de toluidine. Cette technique fournit une image de la morphologie de nerf dans laquelle la régénération nerveuse peut être quantifiée en .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun conflit d’intérêt.

Remerciements

Les auteurs désirent thankthe Jenkins Microscopy Facility à l’Université du Wyoming pour leur aide et les membres du laboratoire Bushman, Kelly Roballo, Hayden vrai, Wupu Osimanjiang et Philippe Dhunghana, pour l’assistance au soin des animaux. Cette publication a été rendue possible par une sentence de développement institutionnel (IDeA) de la National Institute of General Medical Sciences, de la National Institutes of Health sous Grant # 2P20GM103432.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tampon phosphate salin Dulbecco’s Gibco14200-075
Solution de glutaraldéhydeSigma-AldrichG6257
ParaformaldéhydeSigma-AldrichP6148
Phosphate de sodium monobasique monohydratéSigma-AldrichS9638
Bleu de toluidine OSigma-AldrichT3260
Tétraborate de sodium décahydratéAcros Organics205950010
IsofluranePiramalNDC 66794-013-25
Kit de milieu d’enrobage d’époxySigma-Aldrich45359
Solution d’hydroxyde de sodiumSigma-Aldrich72068Pour ajuster le pH fixateur de Trump
AcétoneFisher Chemical170942
Solution de tétroxyde d’osmiumSigma-Aldrich75632
VWR Micro Slides, Superfrost PlusVWR48311-703
Couvercle de microscope VerreFisher Scientific12545102
Pelco Embedding CastFisher ScientificNC9671811
Fabricant de couteaux en verreRMC ProductsGKM-2
UltramicrotomeRMC ProductsMT-XL
15 mL Tube coniqueFalconISO 9001
Eppendorf 1,5 mL MicrocentrifugeusesSigma-AldrichT9661
4 mL Flacon en verreSigma-Aldrich854190
Lames de rasoirVWR55411-050Pour le rognage de blocs de résine
Perfect LoopMicroscopie électronique Sciences70944Pour ramasser de fines sections de résine
Bandes de couteau en verre Ultra 6,4 mm x 25 mm x 400 mmMicroscopie électronique Sciences71012
100 WattMillipore  ;
Papier filtre WhatmanPipette en plastique Sigma-AldrichWHA10010155
3 mLSigma-AldrichZ331740
Instruments de précision mondiaux Microscope
fluorescence OlympusCaméra couleur et monochrome CCD, DP80
, , Four 6350115 Kit micro-chirurgical à

Références

  1. Zacchigna, S., Ruiz de Almodovar, C., Carmeliet, P. Similarities between angiogenesis and neural development: What small animal models can tell us. Current Topics in Developmental Biology. 80, 1-55 (2008).
  2. Grinsell, D., Keating, C. P.

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Réimpressions et autorisations

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