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Article de méthode

Expression des protéines de Fusion Fluorescent en Murine dérivés de la moelle osseuse des cellules dendritiques et Macrophages

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DOI :

10.3791/58081

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30 octobre 2018

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Dans cet article

Résumé

Dans cet article, nous fournissons qu'un protocole détaillé pour l’expression des protéines de fusion fluorescent murin de moelle osseuse provenant des macrophages et les cellules dendritiques. La méthode est basée sur la transduction de la moelle osseuse progéniteurs avec constructions retroviral suivies de différenciation en macrophages et dendritiques des cellules in vitro.

Résumé

Les macrophages et les cellules dendritiques sont des cellules cruciales qui forment la première ligne de défense contre les agents pathogènes. Ils jouent également un rôle important dans le déclenchement d’une réponse immunitaire adaptative. Des travaux expérimentaux avec ces cellules sont plutôt difficile. Leur abondance dans les organes et les tissus est relativement faible. Ainsi, ils ne peuvent pas être isolés en grand nombre. Ils sont également difficiles à transfecter constructions d’ADNc. Dans le modèle murin, ces problèmes peuvent être partiellement résolus par in vitro la différenciation des progéniteurs de la moelle osseuse en présence de M-CSF pour les macrophages ou GM-CSF pour les cellules dendritiques. De cette façon, il est possible d’obtenir de grandes quantités de ces cellules de très peu d’animaux. En outre, les cellules souches de la moelle osseuse peuvent être transduites avec des vecteurs rétroviraux transportant des constructions de l’ARNC durant les premiers stades de la culture avant leur différenciation dans la moelle osseuse provenant de cellules dendritiques et macrophages. Ainsi, transduction rétrovirale, suivie par la différenciation in vitro peut être utilisée pour exprimer les diverses constructions de cDNA dans ces cellules. La capacité d’exprimer les protéines ectopiques considérablement élargit sa gamme d’expériences qui peuvent être effectuées sur ces cellules, y compris l’imagerie de cellules vivantes de protéines fluorescentes, des purifications en tandem pour les analyses de l’interactome, analyses de la structure-fonction, le contrôle des fonctions cellulaires avec biocapteurs et bien d’autres. Dans cet article, nous décrivons un protocole détaillé pour la transduction rétrovirale du murin de la moelle osseuse provenant de cellules dendritiques et macrophages avec vecteurs codant pour des protéines fluorescent-étiquetées. L’exemple de deux protéines d’adaptateur, OPAL1 et PSTPIP2, nous démontrons son application pratique en cytométrie en flux et en microscopie. Nous discuterons les avantages et les limites de cette approche.

Introduction

Cellules myéloïdes représentent un élément indispensable de nos mécanismes de défense contre les agents pathogènes. Ils sont capables d’éliminer rapidement les microbes, mais aussi les cellules mourantes. En outre, ils sont également impliqués dans la régulation de réparation et développement des tissus et dans le maintien de l’homéostasie du1,2,3. Toutes les cellules myéloïdes différencient des progéniteurs myéloïdes communs dans la moelle osseuse. Leur différenciation en plusieurs sous-ensembles distincts morphologiquement et fonctionnellement est largement contrôlée par le....

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Protocole

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvés par le Comité d’experts sur le bien-être des animaux d’expérimentation de l’Institut de génétique moléculaire et de l’Académie des Sciences de la République tchèque.

1. préparation du réactif

  1. Préparer le tampon chlorure d’ammonium-potassium (ACK). Ajouter 4,145 de NH4Cl et 0,5 g de KHCO3 à 500 mL de ddH2O, puis ajouter 100 µL de 0,5 M d’acide tétraacétique (EDTA) et filtre-stériliser.
  2. Préparer la solution polyéthylènimine (PEI). Ajouter 0,1 g de PEI à 90 mL de ddH2O. Tout en agitant, ajouter goutte à goutte 1 M HCl jusqu'à ce q....

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Résultats

Protéines de signalisation adaptateur sont habituellement petites protéines sans aucune activité enzymatique. Ils possèdent différents domaines d’interaction ou les motifs et qui médient liaison à d’autres protéines impliqués dans la transduction des signaux, y compris les tyrosines kinases, phosphatases, ubiquitine ligases et autres21. Pour la démonstration des fonctionnalités de ce protocole, adaptateurs de cellules myéloïdes PSTPIP2 et OPAL1 ont été sélectionnés.......

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Discussion

L’expression de la protéine d’intérêt dans les cellules cibles est une étape clé dans plusieurs types d’études biologiques. Différenciées des macrophages et les cellules dendritiques sont difficiles à transfecter par transfection standard et des techniques de transduction rétrovirale. Contournant la transfection des cellules différenciées avec retroviral transduction des ancêtres de moelle, suivie de différenciation lorsqu’ils portent déjà la construction désirée, est une étape cruciale permettant l’expression d’ADNc ect.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par Science de tchèque Foundation (GACR) (numéro de projet : 16-07425S), par Charles Université Grant Agence (GAUK) (numéro du projet 923116) et par un financement institutionnel de l’Institut de génétique moléculaire de l’Académie des Sciences de la République tchèque République (RVO 68378050).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DMEMThermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis15028
Sérum fœtal bovin (FBS)Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis10270Pour l’approvisionnement des milieux
KHCO3Lachema, Brno, République tchèqueN/A
NH4ClSigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, États-Unis)A9434
PenicillinBB Pharma AS, Prague, République tchèqueN/APENICILIN G 1,0 DRASELNÁ ; SOL' BIOTIKA
StreptomycineSigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA)S9137Sulfate de streptomycine en poudre
GentamicineDr. Kulich Pharma, Hradec Krá ; lové ;, République tchèqueN/A
Polyéthylénimine, linéaire, MW 25,000Polyscience, Warrington, PA, USA23966
PolybreneSigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA)H9268
EDTASigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA)E5134
PBSPréparé en interne par le service multimédia d’IMG ASCR, Prague, RépubliquetchèqueN/A
Anticorps anti-souris/humain CD11b, clone M1/70BioLegend (San Diego, CA, USA)101212analyse par cytométrie en flux
Anticorps PE anti-souris F4/80, clone BM8BioLegend (San Diego, CA, USA)123110analyse par cytométrie en flux
APC anti-souris CD11c Anticorps clone N418BioLegend (San Diego, CA, USA)117310analyse par cytométrie en flux
M-CSFPeproTech (Rocky Hill, NJ, États-Unis)315-02
GM-CSFPeproTech (Rocky Hill, NJ, États-Unis)315-03
Hoechst 33258Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-UnisH1398Utilisation de l’analyse par cytométrie en flux à 1-2 & micro ; g/mL

Références

  1. Moghaddam, A. S., et al. Macrophage plasticity, polarization and function in health and disease. Journal of Cellular Physiology. , (2018).
  2. Qian, C., Cao, X. Dendritic cells in the regulation of immunity and inflammation. Seminars in Immunology.

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Réimpressions et autorisations

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