Summary

Svin som en opplæringsmodul hodet og nakken mikrovaskulær gjenoppbygging

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for bruk av gris overlegen epigastric arterien perforator klaff som læring modul hodet og nakken mikrovaskulær gjenoppbygging.

Abstract

Live modeller som ligner kirurgisk forhold av mennesker er nødvendig for opplæring gratis-klaff høsting og anastomose. Dyremodeller for opplæring har vært tilgjengelig i år på mange kirurgiske felt. Vi brukte kvinnelige (fordi de er enkle å håndtere for prosedyren) Yorkshire griser for hodet og nakken gjenoppbyggingen av høsting dypt dårligere epigastric arterien perforator eller overlegen epigastric arterien perforator klaffen. Webområdet anastomose (halsen huden defekt eller tracheal wall defekt) var forberedt via dissection carotis og vena jugularis, hvilke 3,5 × forstørrelsen forstørrelsesglass ble brukt for anastomose som vi bruker på menneskelig tilfeller i det virkelige liv. Denne fremgangsmåten viser en ny treningsmetode ved hjelp av en pålitelig læring modell og gir en detaljert anatomi i live scenario. Vi fokusert på iskemi tiden, høsting, fartøy anastomose, og utforme klaffen å passe webområdet defekt. Denne modellen forbedrer håndtering med vev og med bruk av riktig instrumenter kan gjentas mange ganger slik at kirurgen er helt trygg før du starter operasjonen på mennesker.

Introduction

Gjenoppbygging etter operasjonen for at hodet og halsen maligne sykdommer er en vanskelig prosedyre forbundet med betydelig sykelighet. Mikrovaskulær gratis-klaff gjenoppbygging er godt etablert som standard tilnærming til gjenoppbygging for over 20 år1,2,3. Gratis-klaff overføring spiller en viktig rolle i å forbedre hodet og nakken ledelsen i kreftpasienter og posttraumatisk skader og dermed skyve grensene for inngrep forbrukeravgift av sykdom utover tidligere teknikker, som resulterer i større pasient livskvalitet og lengre overlevelse priser1,2,3. Ulike flaps gjenoppbygging inkluderer roterende pode og gratis klaffer.

Rollen som gratis klaffene i hodet og nakken gjenoppbyggingen har utvidet. Det er den vanskeligste klaffen å jobbe med, som krever dyktige og delikat håndtering. Klaff svikt er en katastrofal hendelse med betydelig sykelighet4,5. Dermed er betydelig tid nødvendig for å utvikle presisjonen nødvendig for vellykket kirurgisk resultatene3,4,5,6,7,8, 9. Bratt læringskurve forbundet med slik en operasjon kan påvirke utfallet for pasienter og påvirker behandling management3,4,5,6,7, 8,9. Å redusere treningstiden og læringskurven for nye kirurger, en trening modell er nødvendig som etterligner menneskets biologi og gir lignende kirurgiske feltet forhold8.

Målet med denne studien er å vise synligheten av Porcine som god opplæringsmodul for hodet og nakken mikrovaskulær gjenoppbyggingen ligner menneskelige tilfelle med forbedrede ferdigheter i aktive mote.

Denne studien undersøkt bruken av en porcine modell for opplæring nye kolleger i hodet og nakken mikrovaskulær gjenoppbyggingen for gratis-klaff overføring til gi en kostnadseffektiv og mindre stressende supplement til den kliniske feltet treningen med pålitelig lignende funksjoner for gratis-klaff prosedyrer. Griser har blitt brukt i mange studier og som lærer modeller for ulike kirurgisk rekonstruksjoner, f.eks bryst rekonstruksjon; 5 men griser aldri brukt hodet og nakken gjenoppbygging unntatt i vår undersøkelse tracheal gjenoppbygging på grunn av tracheal stenose10.

Ideen ble startet etter Frederic Bodin7, som lignende klaffen bryst gjenoppbygging. Den største fordelen for studier over andre modulen mikrovaskulær trening er aktive livening modulen med en ekte umiddelbare resultatet av prosedyren.

Protocol

Denne studien ble guidet og godkjent av Department of laboratorium dyr ressurser, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, akkreditert av foreningen for vurdering og akkreditering av laboratoriet Animal Care International. Denne studien fulgt retningslinjene og bruk av forsøksdyr av Institutt for laboratoriet dyr ressurser kommisjonen biovitenskap National Research Council. Alle griser ble acclimated for en uke før operasjonen. 1. forberedelse Ho…

Representative Results

Vi utførte prosedyren på seks griser: cervical huden defekt rekonstruksjon på grisene, tracheal rekonstruksjonen på to griser og gratis klaff teste vaskulær anastomose enhet i to griser. Griser ble overvåket for 3 måneder og det var ingen kliniske tegn av nevrologiske underskudd. Mellomtiden for iskemi var 50 min (range, 35-80 minutter); tiden redusert som prosedyren ble gjentatt. Det betyr innhøstingen av seks griser va…

Discussion

Betydelig sykelighet og feil kan oppstå i hodet og nakke kreft pasienter under kirurgisk behandling. Mikrovaskulær gratis vev overføring blitt avgjørende for gjenoppbygging i de fleste tilfeller. Levedyktigheten til klaffen er viktig, krever − presis håndtering av pedicle, taktil følelse, visuospatial evne og utmerket operative flyt kirurg8. For å utvikle disse ferdighetene, må omfattende praksis med trening modell3,4,

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet var finansiert og støttet av grunnleggende vitenskap forskningsprogrammet gjennom National Research Foundation av Korea (NRF) finansiert av departementet for vitenskap, IKT og fremtiden planlegging (2015R1C1A1A01051907). Dette arbeidet ble også støttet av grunnleggende vitenskap forskningsprogrammet gjennom National Research Foundation av Korea (NRF) finansiert av departementet for vitenskap, IKT og fremtiden planlegging (NRF-2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

References

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
check_url/fr/58104?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

View Video