Summary

Svin som et uddannelsesmodul for hoved og hals mikrovaskulære genopbygning

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol til brug af gris overlegne epigastriske arterie perforator klap som en læring modul for hoved og hals mikrovaskulære genopbygning.

Abstract

Levende modeller, der ligner kirurgisk betingelser af mennesker er behov for uddannelse gratis-flap høst og anastomose. Dyremodeller til træningsformål har været tilgængelig i årevis i mange kirurgiske felter. Vi brugte kvindelige (fordi de er nemme at håndtere for proceduren) Yorkshire svin til hoved og hals genopbygningen af høsten dybt ringere epigastriske arterie perforator eller overlegne epigastriske arterie perforator flap. Webstedet anastomose (halsen hud defekt eller luftrør væg defekt) blev udarbejdet via dissektion af den fælles halspulsåren, og den interne halsfedt, i hvilke 3,5 × lup forstørrelse blev brugt til anastomose, som vi bruger på menneskelige tilfælde i det virkelige liv. Denne fremgangsmåde viser en ny uddannelsesmetode ved hjælp af en pålidelig læringsmodel og giver en detaljeret anatomi i en live scenarie. Vi fokuseret på tidspunktet, iskæmi, høst, fartøj anastomose, og designe klap til at passe defektstedets. Denne model forbedrer væv håndtering og med brugen af rigtige instrumenter kan blive gentaget mange gange så at kirurgen er fuldt ud overbevist om, før du starter operationen på mennesker.

Introduction

Genopbygning efter operation for maligne sygdomme, hoved og hals er en vanskelig procedure, der er forbundet med betydelig morbiditet. Mikrovaskulære gratis-flap genopbygning har været veletableret som standardmetoden til genopbygning for over 20 år1,2,3. Gratis-flap overførsel spiller en væsentlig rolle i forbedring af hoved og hals forvaltningen i kræftpatienter og post-traumatisk skader dermed skubbe grænserne for kirurgisk excision af sygdom ud over tidligere teknikker, hvilket resulterer i større patienten livskvalitet og længere overlevelse satser1,2,3. De forskellige klap for genopbygning omfatter roterende, pode og gratis flaps.

Rollen som gratis klapper i hoved og hals genopbygning har udvidet. Det er de mest vanskelige klap til at arbejde med, der kræver dygtige og delikat håndtering. Klap fiasko er en katastrofal begivenhed, med betydelig sygelighed4,5. Således er betydelige træningstid forpligtet til at udvikle den nødvendige for en vellykket kirurgisk resultater3,4,5,6,7,8, præcision 9. Stejl indlæringskurve forbundet med sådan en operation kan påvirke resultatet for patienter og behandling forvaltning3,4,5,6,7, 8,9. At reducere træningstid og indlæringskurve for nye kirurger, en uddannelsesmodel er nødvendig som efterligner menneskets biologi og giver lignende kirurgiske felt betingelser8.

Målet med denne undersøgelse er at vise Porcine synlighed som en god uddannelsesmodul for hoved og hals mikrovaskulære genopbygningen ligner den menneskelige tilfælde med forbedrede færdigheder i den aktive mode.

Denne undersøgelse undersøgte brugen af et svin model for uddannelse nye kolleger i hoved og hals mikrovaskulære genopbygningen for gratis-flap overførsel til at levere en omkostningseffektiv og mindre stressende supplement til den kliniske felt uddannelse med pålideligt lignende funktionerne for free-flappen procedurer. Svin er blevet brugt for mange studier og som undervisningssprog modeller for forskellige kirurgiske rekonstruktioner, fx brystrekonstruktion; 5 dog svin har aldrig været brugt til hoved og hals genopbygning undtagen i vores undersøgelse for trakeal genopbygning på grund af luftrør stenose10.

Ideen blev startet efter Frederic Bodin7, der beskriver lignende flappen for brystrekonstruktion. Den største fordel for studier over andet modulet af mikrovaskulære uddannelse er den aktive livening modul med en reel umiddelbare resultat af proceduren.

Protocol

Denne undersøgelse blev guidet og godkendt af Department of Laboratory Animal ressourcer, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, akkrediteret af Association for evaluering og akkreditering af Laboratory Animal Care International. Denne undersøgelse fulgt retningslinjerne for pleje og anvendelse af forsøgsdyr af instituttet af Laboratory Animal ressourcer Kommissionen om biovidenskab National Research Council. Alle svin blev akklimatiseret til én uge før operationen. <p class…

Representative Results

Vi udførte proceduren på seks svin: cervikal hud defekt genopbygning på to grise, luftrør genopbygning på to grise, og gratis klap til at teste vaskulære anastomose enhed i to grise. Svinene blev overvåget i 3 måneder og der var ingen kliniske tegn på neurologiske underskud. Den gennemsnitlige tid for iskæmi var 50 min (range, 35-80 min.); tiden faldt da proceduren blev gentaget. Den gennemsnitlige høst tid af seks sv…

Discussion

Betydelig sygelighed og mangler kan forekomme i hoved og hals malignitet patienter under kirurgisk forvaltning. Mikrovaskulære gratis væv overførsel er blevet afgørende for genopbygning i de fleste tilfælde. Flappen levedygtighed er et kritisk spørgsmål, som kræver fasthed, præcis håndtering af pedicle, taktile fornemmelse, visuospatial evne og fremragende udløsende flow fra kirurgen8. For at udvikle disse færdigheder, behov et for omfattende praksis med en uddannelse model<sup class="…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret og støttet af den grundlæggende videnskab forskningsprogram gennem National Research Foundation af Korea (NRF) finansieret af Ministeriet for videnskab, IKT og fremtidige planlægning (2015R1C1A1A01051907). Dette arbejde blev også støttet af den grundlæggende videnskab forskningsprogram gennem National Research Foundation af Korea (NRF) finansieret af Ministeriet for videnskab, IKT & fremtid planlægning (NRF-2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

References

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
check_url/fr/58104?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

View Video