Summary

Luminofor är placerad delen Formation i olika konformationer av bovint Serum Albumin genom bindning av Gold(III)

Published: August 31, 2018
doi:

Summary

Protokollen för att studera bindningen av guld katjoner (Au(III)) till olika konformationer av bovint serumalbumin (BSA) som liksom för att karaktärisera den konfirmerande beroende unika BSA-Au fluorescensen presenteras.

Abstract

Syftet med protokoll som presenteras är att studera processen för Au(III) bindning till BSA, ger konformation förändring-inducerad röd fluorescens (λem = 640 nm) av BSA-Au(III) komplex. Metoden justerar pH för att visa att uppkomsten av den röda fluorescensen är korrelerad med de pH-inducerad jämvikt övergångarna av de BSA konformationer. Röd fluorescerande BSA-Au(III) komplex kan endast bildas med en justering av pH vid eller över 9.7, vilket motsvarar ”A-formulär” konformation av BSA. I protokollet att justera BSA att Au molar förhållandet och övervaka tid-processen för Au(III) bindande beskrivs. Det minsta antalet Au(III) per BSA, att producera den röd fluorescensen, är mindre än sju. Vi beskriver steg för att illustrera förekomsten av flera Au(III) bindningsställen i BSA protokoll. Första, genom att lägga till koppar (Cu(II)) eller nickel (Ni(II)) kationer följt av Au(III), denna metod avslöjar ett bindningsställe för Au(III) som inte är röda fluorophore. För det andra, genom att ändra BSA thiol tak agenter, en annan nonfluorophore-bildar Au(III) bindningsställe avslöjas. För det tredje, ändra BSA konformation genom klyva och tak av disulfide obligationer, möjliga Au(III) bindande industriområden är illustrerade. Protokollet beskrivs, för att kontrollera BSA konformationer och Au(III) bindande, kan tillämpas allmänt för att studera samspelet mellan andra proteiner och metall katjoner.

Introduction

En BSA-Au förening uppvisar en ultraviolett (UV)-retbara röd fluorescens, med anmärkningsvärd stokes Skift, ursprungligen har syntetiserats av Xie et al. 1. den unika och stabil röd fluorescensen kan hitta olika applikationer inom bland annat avkänning2,3,4, imaging5,6,7eller nanomedicin8 ,9,10,11,12,13. Denna förening har studerats ingående av många forskare inom nanovetenskap i senaste åren14,15,16. BSA-Au föreningen har tolkats som Au25 nanoclusters. Målet med denna metod är att undersöka denna förening i detalj och att förstå ursprunget till den röd fluorescensen. Genom att följa metoden presenteras, kan förekomsten av flera Au bindande platser, och ursprunget till fluorescens, alternativ till den enda plats kärnbildning av Au25 nanoclusters, illustreras. Samma tillvägagångssätt kan användas för att studera hur andra proteiner17,18,19 komplex med Au(III) kan ändra sina inneboende fluorescerande egenskaper.

Syntesen av röd fluorescerande BSA-Au föreningen kräver en smala kontroll av molar förhållandena av BSA att Au (BSA:Au) att maximera intensiteten av fluorescensen och placeringen av topparna i excitation-utsläpp karta (EEM)20. Det kan visas att det finns flera bindningsställen för Au(III) att binda, inklusive asparagin fragment (eller Asp fragment, de fyra första aminosyra resterna vid N-terminalen av BSA)21,22. De 34th aminosyran i BSA (Cys-34) visas också att samordna Au(III) och deltar i mekanismen av den röda fluorescence([Cys34-capped-BSA]-Au(III))20. Klyva alla Cys-Cys disulfide obligationer och tak alla tioler, röd fluorescens är inte producerade ([all-thiol-capped-BSA]-Au(III)). Detta indikerar behovet av Cys-Cys disulfide obligationer som webbplatsen Au(III) bindande för att producera den röd fluorescensen.

Protein kemi tekniker har inte använts att studera de BSA-Au(III) komplex i nano-science gemenskapen. Dock skulle det vara värdefullt att anställa dessa tekniker för att förstå vissa aspekter av dessa komplex, samt för att få detaljerad förståelse för de Au(III) bindningsställen i BSA. Denna artikel är avsedd att visa några av dessa tekniker.

Protocol

1. Sammanfattning av BSA-Au(III) komplex Lös upp 25 mg av BSA i 1 mL högpresterande vätskekromatografi (HPLC) grade vatten i en 5 mL injektionsflaska av reaktion.Obs: Lösningen ska visas tydligt. Lös upp guld (III) klorid trihydrate (chloroauric syra) till en koncentration av 5 mM i vatten av HPLC-kvalitet.Obs: Lösningen bör visas gula. Chloroauric syra lösning som beretts vid denna koncentration kommer att resultera i en BSA Au-förhållandet 1:13. Alternativt kan bereda en l?…

Representative Results

Från fluorescensen av BSA-Au(III) komplex, har det observerats att omvandlingen av den inneboende blå fluorescensen av BSA (λem = 400 nm) till röd fluorescens (λem = 640 nm) inträffar vid ungefär pH 9,7 genom en equilibrium övergång (figur 1). EEM av BSA-Au(III) på olika BSA till Au molar nyckeltal visas i figur 2, och dessa data visar hur förändra molar förhållandet ger samma…

Discussion

De BSA-Au(III) föreningarna beredd vid pH 12 uppvisar röd fluorescens på emissionsvåglängden λem= 640 nm när glada med ultraviolett (UV) ljus λex= 365 nm (figur 1A). Uppkomsten av röd fluorescens är en långsam process och tar ett par dagar i rumstemperatur att öka till en maximal intensitet. Kör reaktionen vid 37 ° C kommer att ge de optimala resultat, även om högre temperatur kan användas för att producera den röd fluorescensen snabbare. Irr…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.E. erkänner stöd från hertig kapitalförsäkring särskilda initiativ fonden, Wells Fargo fonden, PhRMA Foundation, samt start medel från University of North Carolina, Charlotte.

Materials

Bovine Serum Albumin (BSA), 96% Sigma-Aldrich A5611
gold (III) chloride trihydrate, 99.9% Sigma-Aldrich 520918
Copper (II) chloride dihydrate, 99.999% Sigma-Aldrich 459097
Nickel (II) chloride hexahydrate, 99.9% Sigma-Aldrich 654507
N-Ethylmaleimide (NEM), >99.0% Sigma-Aldrich 4259
Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP), >98.0% Sigma-Aldrich C4706
Sodium hydroxide, >98.0% Sigma-Aldrich S8045
Urea, 99.5% Chem-Implex Int'l 30142
Phospate buffered saline (PBS) Corning MT21040CV
Ammonium bicarbonate, 99.5% Sigma-Aldrich 9830

References

  1. Xie, J., Zheng, Y., Ying, J. Y. Protein-Directed Synthesis of Highly Fluorescent Gold Nanoparticles. Journal of the American Chemical Society. 131, 888-889 (2009).
  2. Saha, K., Agasti, S. S., Kim, C., Li, X., Rotello, V. M. Gold Nanoparticles in Chemical and Biological Sensing. Chemical Reviews. 112, 2739-2779 (2012).
  3. Zhang, Y., et al. New Gold Nanostructures for Sensor Applications: A Review. Materials. 7, 5169-5201 (2014).
  4. Chen, L. -. Y., Wang, C. -. W., Yuan, Z., Chang, H. -. T. Fluorescent Gold Nanoclusters: Recent Advances in Sensing and Imaging. Analytical Chemistry. 87 (1), 216-229 (2015).
  5. Cai, W., Gao, T., Hong, H., Sun, J. Applications of Gold Nanoparticles in Cancer Nanotechnology. Nanotechnology, Science and Applications. 1, 17-32 (2008).
  6. Nune, S. K., et al. Nanoparticles for Biomedical Imaging. Expert Opinion on Drug Delivery. 6, 1175-1194 (2009).
  7. Dorsey, J. F., et al. Gold Nanoparticles in Radiation Research: Potential Applications for Imaging and Radiosensitization. Translational Cancer Research. 2, 280-291 (2013).
  8. Daniel, M. -. C., Astruc, D. Gold Nanoparticles: Assembly, Supramolecular Chemistry, Quantum-Size-Related Properties, and Applications toward Biology, Catalysis, and Nanotechnology. Chemical Reviews. 104 (1), 293-346 (2004).
  9. Ferrari, M. Cancer Nanotechnology: Opportunities and Challenges. Nature Reviews Cancer. 5, 161-171 (2005).
  10. Huang, X., Jain, P. K., El-Sayed, I. H., El-Sayed, M. A. Gold Nanoparticles: Interesting Optical Properties and Recent Applications in Cancer Diagnostics and Therapy. Nanomedicine. 2, 681 (2007).
  11. Arvizo, R., Bhattacharya, R., Mukherjee, P. Gold Nanoparticles: Opportunities and Challenges in Nanomedicine. Expert Opinion on Drug Delivery. 7, 753-763 (2010).
  12. Doane, T. L., Burda, C. The Unique Role of Nanoparticles in Nanomedicine: Imaging, Drug Delivery and Therapy. Chemical Society Reviews. 41, 2885 (2012).
  13. Egusa, S., Ebrahem, Q., Mahfouz, R. Z., Saunthararajah, Y. Ligand Exchange on Gold Nanoparticles for Drug Delivery and Enhanced Therapeutic Index Evaluated in Acute Myeloid Leukemia Models. Experimental Biology and Medicine. 239, 853 (2014).
  14. Qu, X., et al. Fluorescent Gold Nanoclusters: Synthesis and Recent Biological Application. Journal of Nanomaterials. (784097), (2015).
  15. Chakraborty, I., Pradeep, T. Atomically Precise Clusters of Noble Metals: Emerging Link between Atoms and Nanoparticles. Chemical Reviews. 117, 8208-8271 (2017).
  16. Raut, S., et al. Evidence of energy transfer from tryptophan to BSA/HSA protected gold nanoclusters. Methods and Applications in Fluorescence. 2, (2014).
  17. Le Guével, X., Daum, N., Schneider, M. Synthesis and Characterization of Human Transferrin-Stabilized Gold Nanoclusters. Nanotechnology. 22 (27), (2011).
  18. Kawasaki, H., Yoshimura, K., Hamaguchi, K., Arakawa, R. Trypsin-Stabilized Fluorescent Gold Nanocluster for Sensitive and Selective Hg2+ Detection. Analytical Sciences. 27 (6), 591 (2011).
  19. Lu, D., et al. Lysozyme-Stabilized Gold Nanoclusters as a Novel Fluorescence Probe for Cyanide Recognition. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 121, 77-80 (2014).
  20. Dixon, J. M., Egusa, S. Conformational Change-Induced Fluorescence of Bovine Serum Albumin-Gold Complexes. Journal of the American Chemical Society. 140, 2265-2271 (2018).
  21. Peters, T. . All About Albumin. , (1996).
  22. Masuoka, J., Saltman, P. Zinc(II) and Copper(II) Binding to Serum Albumin. A Comparative Study of Dog, Bovine, and Human Albumin. Journal of Biological Chemistry. 269, 25557-25561 (1994).
  23. Takeda, K., Wada, A., Yamamoto, K., Moriyama, Y., Aoki, K. Conformational Change of Bovine Serum Albumin by Heat Treatment. Journal of Protein Chemistry. 8 (5), 653-659 (1989).
  24. Klotz, I. M., Curme, H. G. The Thermodynamics of Metallo-protein Combinations. Copper with Bovine Serum Albumin. Journal of the American Chemical Society. 70, 939-943 (1948).
  25. Fiess, H. A., Klotz, I. M. The Thermodynamics of Metallo-Protein Combinations. Comparison of Copper Complexes with Natural Proteins. J. Am. Chem. Soc. 74, 887-891 (1952).
  26. Rao, M. S. N. A Study of the Interaction of Nickel(II) with Bovine Serum Albumin. Journal of the American Chemical Society. 84, 1788-1790 (1962).
  27. Peters, T., Blumenstock, F. A. Copper-Binding Properties of Bovine Serum Albumin and Its Amino-terminal Peptide Fragment. Journal of Biological Chemistry. 242, 1574-1578 (1967).
  28. Xue, Y., Li, X., Li, H., Zhang, W. Quantifying Thiol-Gold Interactions towards the Efficient Strength Control. Nature Communications. 5, 4348 (2014).
  29. Xu, Y., et al. The Role of Protein Characteristics in the Formation and Fluorescence of Au Nanoclusters. Nanoscale. 6 (3), 1515-1524 (2014).
check_url/fr/58141?article_type=t&slug=luminophore-formation-various-conformations-bovine-serum-albumin

Play Video

Citer Cet Article
Dixon, J. M., Egusa, S. Luminophore Formation in Various Conformations of Bovine Serum Albumin by Binding of Gold(III). J. Vis. Exp. (138), e58141, doi:10.3791/58141 (2018).

View Video