Summary

एक Ultrafiltration केंद्रापसारक तकनीक का उपयोग Murine Bronchoalveolar लेवेज द्रव से Extracellular बुलबुले के अलगाव

Published: November 09, 2018
doi:

Summary

यहां, हम दो extracellular पुटिका अलगाव प्रोटोकॉल, ultrafiltration केंद्रापसारक और घनत्व ढाल केंद्रापसारक के साथ ultracentrifugation, extracellular murine bronchoalveolar द्रव के नमूनों से लेवेज बुलबुले अलग वर्णन । दोनों तरीकों से murine bronchoalveolar लेवेज द्रव से व्युत्पंन extracellular बुलबुले quantified और विशेषता हैं ।

Abstract

Extracellular बुलबुले (ईवीएस) नए शारीरिक और रोग राज्यों के दौरान कई जैविक संकेतन कार्यों में महत्वपूर्ण भूमिका निभा है कि सेलुलर घटकों की खोज कर रहे हैं । ईवीएस के अलगाव के लिए इस क्षेत्र में एक बड़ी चुनौती है, प्रत्येक तकनीक को आंतरिक सीमाओं के कारण जारी है । घनत्व ढाल केंद्रापसारक विधि के साथ अंतर ultracentrifugation एक सामांय रूप से इस्तेमाल किया दृष्टिकोण है और EV अलगाव के लिए सोने के मानक प्रक्रिया माना जाता है । हालांकि, इस प्रक्रिया को समय लेने वाली, श्रम गहन है, और आम तौर पर कम दरिद्रता में परिणाम है, जो bronchoalveolar लेवेज द्रव जैसे छोटे मात्रा के नमूनों के लिए उपयुक्त नहीं हो सकता है । हम प्रदर्शित करते है कि एक ultrafiltration केंद्रापसारक अलगाव विधि सरल और समय है और श्रम कुशल अभी तक एक उच्च वसूली उपज और पवित्रता प्रदान करता है । हम प्रस्ताव है कि इस अलगाव विधि एक वैकल्पिक दृष्टिकोण है कि EV अलगाव के लिए उपयुक्त है, विशेष रूप से छोटी मात्रा के जैविक नमूनों के लिए हो सकता है ।

Introduction

Exosomes व्यास में ईवीएस, 50-200 एनएम के सबसे छोटे सबसेट हैं, और प्रक्रियाओं1,2,3,4,5संकेतन की एक विविध सरणी भर में कई जैविक कार्य किया है । वे लिपिड, प्रोटीन, और न्यूक्लिक एसिड6,7,8,9 जैसे कार्गो अणुओं के माध्यम से सेलुलर संचार की सुविधा के द्वारा मुख्य रूप से सेलुलर और ऊतक homeostasis को नियंत्रित . एक EV अनुसंधान में महत्वपूर्ण कदम अलगाव की प्रक्रिया है । अंतर ultracentrifugation (यूसी), के साथ या बिना घनत्व ढाल केंद्रापसारक (क्लब), सोने के मानक दृष्टिकोण माना जाता है, लेकिन इस विधि अकुशल EV वसूली दरों और कम दरिद्रता सहित प्रमुख सीमाओं वहन करती है10 , 11 , 12, कि इस तरह के सेल संस्कृति supernatant या उच्च exosome उत्पादन नमूनों के रूप में बड़ी मात्रा के नमूनों के लिए अपने सबसे अच्छा उपयोग को प्रतिबंधित । ऐसे ultrafiltration या क्रोमैटोग्राफी द्वारा आकार अपवर्जन के रूप में अंय तरीकों के फायदे और नुकसान, मोतियों या स्तंभों द्वारा immunoaffinity अलगाव, और microfluidics, अच्छी तरह से वर्णित हैं, और आधुनिक पूरक प्रक्रियाओं को विकसित किया गया है पर काबू पाने और प्रत्येक दृष्टिकोण11,12,13,14,15में तकनीकी सीमाओं को कम । दूसरों को पता चला है कि फिल्टर इकाई में एक nanoporous झिल्ली के साथ एक ultrafiltration केंद्रापसारक (UFC) एक वैकल्पिक तकनीक है कि एक यूसी विधि16,17,18के लिए तुलनीय पवित्रता प्रदान करता है । इस तकनीक को वैकल्पिक आइसोलेशन विधियों में से एक माना जा सकता है ।

Bronchoalveolar लेवेज द्रव (BALF) ईवीएस है कि विभिंन श्वसन शर्तों19,20,21,22में कई जैविक कार्यों के अधिकारी शामिल हैं । BALF का अध्ययन-व्युत्पंन ईवीएस मनुष्यों में ब्रोंकोस्कोपी प्रक्रिया की इनवेसिव के कारण कुछ चुनौतियों पर जोर देता है, साथ ही लेवेज द्रव वसूली की एक सीमित मात्रा में । चूहों जैसे छोटे प्रयोगशाला पशुओं में, केवल कुछ मिलीलीटर सामान्य फेफड़ों की स्थितियों में बरामद किया जा सकता, सूजन या fibrotic फेफड़ों में भी कम23. नतीजतन, बहाव अनुप्रयोगों के लिए एक अंतर ultracentrifugation द्वारा EV अलगाव के लिए BALF की एक पर्याप्त राशि का संग्रह संभव नहीं हो सकता है । हालांकि, अलग सही ev आबादी ev जैविक कार्यों का अध्ययन करने के लिए एक महत्वपूर्ण कारक है । कार्यकुशलता और प्रभावकारिता के बीच नाजुक संतुलन अच्छी तरह से स्थापित EV आइसोलेशन तरीकों में एक चुनौती है ।

इस वर्तमान अध्ययन में, हम प्रदर्शित करते है कि एक केंद्रापसारक ultrafiltration दृष्टिकोण, एक १०० केडीए आणविक वजन कट ऑफ (MWCO) nanomembrane फिल्टर इकाई का उपयोग, छोटी मात्रा जैविक नमूना जैसे BALF के लिए उपयुक्त है । इस तकनीक को सरल, कुशल है, और उच्च शुद्धता और दरिद्रता प्रदान करता है BALF-व्युत्पंन ईवीएस के अध्ययन का समर्थन है ।

Protocol

देवदार-सिनाई मेडिकल सेंटर (CSMC) में संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समितियों (IACUC) द्वारा पशुओं और सभी पशु प्रक्रियाओं की उपयोगिता को मंजूरी दी गई । 1. Murine Bronchoalveolar लेवेज द्रव (BALF) संग्रह और तैयारी BALF सं?…

Representative Results

हम एक ही दिन पर UFC और UC-क्लब अलगाव तरीकों का उपयोग माउस BALF से EV अलगाव प्रदर्शन किया । UFC विधि लगभग 2.5-3 एच की आवश्यकता है, जबकि UC-क्लब तकनीक की आवश्यकता 8 प्रसंस्करण समय के एच । यह बफ़र्स और एजेंट तैया?…

Discussion

पिछले कुछ दशकों में, वैज्ञानिकों ने सेलुलर homeostasis में ईवीएस की महत्ता को सुलझा लिया है । इससे भी महत्वपूर्ण बात, ईवीएस अपने सक्रिय कार्गो अणुओं के माध्यम से पड़ोसी और दूर कोशिकाओं को मॉडुलन द्वारा कई रोग ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

काम NHLBI/NIH अनुदान HL103868 द्वारा समर्थित है (पीसी के लिए) और HL137076 (पीसी के लिए), अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन अनुदान में सहायता (पीसी के लिए), और शमूएल Oschin व्यापक कैंसर संस्थान (SOCCI) फेफड़ों के कैंसर अनुसंधान पुरस्कार (पीसी के लिए) । हम देवदारों-सिनाई मेडिकल सेंटर में Smidt हार्ट इंस्टीट्यूट के लिए हमारी महान सराहना व्यक्त करना चाहते है जो हमें EV nanoparticle ट्रैकिंग विश्लेषण के लिए एक Nanosight मशीन प्रदान करता है ।

Materials

Material
Amicon Ultra-15 centrifugal filters Ultracel-100K Sigma-Millipore, St. Louis, MO UFC910024
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS) Corning Cellgro, Manassas, VA 21-031-CV
Sucrose Sigma-Millipore, St. Louis, MO EMD8550
HEPES Research Products International, Prospect, IL 75277-39-3
EDTA Corning Cellgro, Manassas, VA 46-034-CI
Sodium Chloride Sigma-Millipore, St. Louis, MO S3014-1KG
OptiPrep Sigma-Millipore, St. Louis, MO MKCD9753 Density Gradient Medium
Ketamine VetOne, Boise, ID 13985-702-10
Xylazine Akorn Animal Health, Lake Forest, IL 59399-110-20
Syringe 1 mL BD Syringe, Franklin Lakes, NJ 309656
Angiocatheter 20G BD Syringe, Franklin Lakes, NJ 381703
Centrifuge tubes 15 mL VWR, Radnor, PA 89039-666
Centrifuge tubes 50 mL Corning Cellgro, Manassas, VA 430828
Bicinchonic acid (BCA) protein assay Pierce, Thermo Fischer Scientific, Rockford, IL 23235
Rabbit anti-mouse TSG101 Antibody AbCam, Cambridge, MA AB125011
Rat anti-mouse PE-CD63 Antibody Biolegend, San Diego, CA 143904
CD81
CD9
Anti-rabbit IgG, HRP-linked antibody Cell Signaling Technology, Danvers, MA 7074S
4x LDS
10x Reducing agent (Bolt)
10x Lysis buffer (Bolt) Cell Signaling Technology, Danvers, MA
Bolt 4-12% Bis-Tris Plus acrylamide gel Invitrogen, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA NW04120
iBlot 2 Nitrocellulose mini stacks Invitrogen, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA IB23002
Chemiluminescent HRP antibody detection reagent HyGLO Denville Scientific, Holliston, MA E2400
Ultracentrifuge tubes 17 mL Beckman Coulter, Pasadena, CA 337986
Ultracentrifuge tubes 38.5 mL Beckman Coulter, Pasadena, CA 326823
Corning SFCA Syringe Filters 0.2 µm pore Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 09-754-13
Equipment
Centrifuge Eppendorf, Hamburg, Germany
Ultracentrifuge Beckman Coulter, Pasadena, CA
Nanosight (NS300) Malvern, Worcestershire, UK To measure particle size distribution and particle concentration
MACSQuant Analyzer 10 flow cytometer Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany
iBlot Transfer Apparatus Thermo Fischer Scientific, Waltham, MA
Bio-Rad ChemiDoc MP Imaging System Bio-Rad, Hercules, CA
FlowJo v. 10 Analysis software

References

  1. Thery, C., Zitvogel, L., Amigorena, S. Exosomes: composition, biogenesis and function. Nature Reviews Immunology. 2, 569-579 (2002).
  2. Kosaka, N., et al. Secretory Mechanisms and Intercellular Transfer of MicroRNAs in Living Cells. Journal of Biological Chemistry. 285 (23), 17442-17452 (2010).
  3. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: Exosomes, microvesicles, and friends. The Journal of Cell Biology. 200 (4), 373-383 (2013).
  4. Fujita, Y., Kosaka, N., Araya, J., Kuwano, K., Ochiya, T. Extracellular vesicles in lung microenvironment and pathogenesis. Trends in Molecular Medicine. 21 (9), 533-542 (2015).
  5. Kalluri, R. The biology and function of exosomes in cancer. Journal of Clinical Investigation. 126 (4), 1208-1215 (2016).
  6. Janowska-Wieczorek, A., et al. Microvesicles derived from activated platelets induce metastasis and angiogenesis in lung cancer. International Journal of Cancer. 113 (5), 752-760 (2005).
  7. Valadi, H., et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nature Cell Biology. 9 (6), 654-659 (2007).
  8. Colombo, M., Raposo, G., Théry, C. Biogenesis, Secretion, and Intercellular Interactions of Exosomes and Other Extracellular Vesicles. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 30 (1), 255-289 (2014).
  9. Rocco, G. D., Baldari, S., Toietta, G. Exosomes and other extracellular vesicles-mediated microRNA delivery for cancer therapy. Translational Cancer Research. 6 (Supplement 8), S1321-S1330 (2017).
  10. Peterson, M. F., Otoc, N., Sethi, J. K., Gupta, A., Antes, T. J. Integrated systems for exosome investigation. Methods. 87 (1), 31-45 (2015).
  11. Xu, R., Greening, D. W., Zhu, H. J., Takahashi, N., Simpson, R. J. Extracellular vesicle isolation and characterization: toward clinical application. Journal of Clinical Investigation. 126, 1152-1162 (2016).
  12. Gardiner, C., et al. Techniques used for the isolation and characterization of extracellular vesicles: results of a worldwide survey. Journal of Extracellular Vesicles. 5 (1), 32945 (2016).
  13. Inglis, H. C., et al. Techniques to improve detection and analysis of extracellular vesicles using flow cytometry. Cytometry Part A. 87 (11), 1052-1063 (2015).
  14. Li, P., Kaslan, M., Lee, S. H., Yao, J., Gao, Z. Progress in Exosome Isolation Techniques. Theranostics. 7 (3), 789-804 (2017).
  15. Willis, G. R., Kourembanas, S., Mitsialis, S. A. Toward Exosome-Based Therapeutics: Isolation, Heterogeneity, and Fit-for-Purpose Potency. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 20389 (2017).
  16. Lobb, R. J., et al. Optimized exosome isolation protocol for cell culture supernatant and human plasma. Journal of Extracellular Vesicles. 4 (1), 27031 (2015).
  17. Benedikter, B. J., et al. Ultrafiltration combined with size exclusion chromatography efficiently isolates extracellular vesicles from cell culture media for compositional and functional studies. Scientific Reports. 7 (1), 15297 (2017).
  18. Vergauwen, G., et al. Confounding factors of ultrafiltration and protein analysis in extracellular vesicle research. Scientific Reports. 7 (1), 2704 (2017).
  19. Kesimer, M., et al. Characterization of exosome-like vesicles released from human tracheobronchial ciliated epithelium: a possible role in innate defense. The FASEB Journal. 23 (6), 1858-1868 (2009).
  20. Torregrosa Paredes, P., et al. Bronchoalveolar lavage fluid exosomes contribute to cytokine and leukotriene production in allergic asthma. Allergy. 67 (7), 911-919 (2012).
  21. Alipoor, S. D., et al. Exosomes and Exosomal miRNA in Respiratory Diseases. Mediators of Inflammation. 2016, 5628404 (2016).
  22. Hough, K. P., Chanda, D., Duncan, S. R., Thannickal, V. J., Deshane, J. S. Exosomes in Immunoregulation of Chronic Lung Diseases. Allergy. 72 (4), 534-544 (2017).
  23. Van Hoecke, L., Job, E. R., Saelens, X., Roose, K. Bronchoalveolar Lavage of Murine Lungs to Analyze Inflammatory Cell Infiltration. Journal of Visualized Experiments. (123), e55398 (2017).
  24. Minciacchi, V. R., et al. MYC Mediates Large Oncosome-Induced Fibroblast Reprogramming in Prostate Cancer. Recherche en cancérologie. 77 (9), 2306-2317 (2017).
  25. Koliha, N., et al. Melanoma Affects the Composition of Blood Cell-Derived Extracellular Vesicles. Frontiers in Immunology. 7, 581 (2016).
  26. Thery, C., Ostrowski, M., Segura, E. Membrane vesicles as conveyors of immune responses. Nature Reviews Immunology. 9, 581-593 (2009).
  27. Camussi, G., Deregibus, M. C., Bruno, S., Cantaluppi, V., Biancone, L. Exosomes/microvesicles as a mechanism of cell-to-cell communication. Kidney International. 78 (9), 838-848 (2010).
  28. Lee, Y., El Andaloussi, S., Wood, M. J. Exosomes and microvesicles: extracellular vesicles for genetic information transfer and gene therapy. Human Molecular Genetics. 21, R125-R134 (2012).
  29. Villarroya-Beltri, C., Baixauli, F., Gutiérrez-Vázquez, C., Sánchez-Madrid, F., Mittelbrunn, M. Sorting it out: Regulation of exosome loading. Seminars in Cancer Biology. 28, 3-13 (2014).
  30. Hoshino, A. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527, 329-335 (2015).
  31. Liu, F., et al. The Exosome Total Isolation Chip. ACS Nano. 11 (11), 10712-10723 (2017).
  32. Cheruvanky, A., et al. Rapid isolation of urinary exosomal biomarkers using a nanomembrane ultrafiltration concentrator. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 292 (5), F1657-F1661 (2007).
  33. Zhao, Z., Yang, Y., Zeng, Y., He, M. A Microfluidic ExoSearch Chip for Multiplexed Exosome Detection Towards Blood-based Ovarian Cancer Diagnosis. Lab on a Chip. 16 (3), 489-496 (2016).
  34. Fang, S., et al. Clinical application of a microfluidic chip for immunocapture and quantification of circulating exosomes to assist breast cancer diagnosis and molecular classification. PloS ONE. 12 (4), e0175050 (2017).
  35. Cheruvanky, A., et al. Rapid isolation of urinary exosomal biomarkers using a nanomembrane ultrafiltration concentrator. American Journal Physiology-Renal Physiology. 292 (5), F1657-F1661 (2007).
  36. Kornilov, R., et al. Efficient ultrafiltration-based protocol to deplete extracellular vesicles from fetal bovine serum. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1422674 (2018).
  37. Alvarez, M. L., Khosroheidari, M., Kanchi Ravi, R., DiStefano, J. K. Comparison of protein, microRNA, and mRNA yields using different methods of urinary exosome isolation for the discovery of kidney disease biomarkers. Kidney International. 82 (9), 1024-1032 (2012).
  38. Bosch, S., et al. Trehalose prevents aggregation of exosomes and cryodamage. Scientific Reports. 6 (1), 329 (2016).
  39. Xiao, J., et al. Cardiac progenitor cell-derived exosomes prevent cardiomyocytes apoptosis through exosomal miR-21 by targeting PDCD4. Cell Death & Disease. 7 (6), e2277 (2016).
  40. Agarwal, U., et al. Experimental, Systems and Computational Approaches to Understanding the MicroRNA-Mediated Reparative Potential of Cardiac Progenitor Cell-Derived Exosomes From Pediatric Patients. Circulation Research. 120 (4), 701-712 (2017).
  41. Merchant, M. L., et al. Microfiltration isolation of human urinary exosomes for characterization by MS. PROTEOMICS – Clinical Applications. 4 (1), 84-96 (2010).
  42. Gouin, K., et al. A comprehensive method for identification of suitable reference genes in extracellular vesicles. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1347019 (2017).
  43. Betsuyaku, T., et al. Neutrophil Granule Proteins in Bronchoalveolar Lavage Fluid from Subjects with Subclinical Emphysema. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159 (6), 1985-1991 (1999).
check_url/fr/58310?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Parimon, T., Garrett III, N. E., Chen, P., Antes, T. J. Isolation of Extracellular Vesicles from Murine Bronchoalveolar Lavage Fluid Using an Ultrafiltration Centrifugation Technique. J. Vis. Exp. (141), e58310, doi:10.3791/58310 (2018).

View Video