Summary

Cultivo e manipulação das células da crista Neural de O9-1

Published: October 09, 2018
doi:

Summary

O9-1 é uma linhagem de células multipotentes rato crista neural. Aqui descrevemos protocolos passo a passo detalhados para cultivo de células O9-1, diferenciar células O9-1 em tipos de células específicas e manipulando geneticamente células O9-1 usando mediada por siRNA nocaute ou CRISPR-Cas9 edição do genoma.

Abstract

Células da crista neural (CNCC) estão migrando de células tronco que podem se diferenciar em diferentes tipos de células e dar origem a vários tecidos e órgãos. A linha de celular O9-1 é derivada o endógeno CNCC embrionárias de rato e mantém a sua multipotency. No entanto, em condições de cultura específica, O9-1 células podem se diferenciar em diferentes tipos de células e ser utilizadas em uma ampla gama de aplicações de pesquisa. Recentemente, com a combinação de estudos de rato e de células O9-1, mostramos que o hipopótamo efetores da via de sinalização Yap e Taz desempenham importantes funções no desenvolvimento craniofacial crista neural-derivado. Embora o processo de cultivo de células O9-1 é mais complicado do que o utilizado para outras linhas de célula, a linha de celular O9-1 é um poderoso modelo para investigar a CNCC em vitro. Aqui, apresentamos um protocolo para a linha de celular O9-1 para manter a sua stemness, bem como protocolos para diferenciar células O9-1 em diferentes tipos de células, como células de músculo liso e osteoblastos de cultivo. Além disso, os protocolos são descritos para a realização de estudos de perda-de-função do gene em células O9-1 usando CRISPR-Cas9 exclusão e pequena interferência mediada por RNA “knockdown”.

Introduction

Crista neural (CNCC) são células estaminais, como com uma notável capacidade migratória e transitória existência durante o desenvolvimento embrionário. CNCC originam entre o ectoderma superficial e o tubo neural e migra para outras partes do embrião durante o desenvolvimento embrionário1. Com base em seus domínios funcionais, CNCC pode ser classificados em vários tipos diferentes, incluindo crânio, tronco, vagal, sacral e cardíaca CNCC. Além disso, a CNCC pode se diferenciar em várias linhagens de células, como células musculares lisas, células ósseas e neurônios e dar origem a vários tecidos2,3. O desenvolvimento da CNCC caracteriza-se por uma série complexa de eventos morfogenéticas que são ajustados por vários sinais moleculares. Tendo em conta o Regulamento complexo do CNCC e suas importantes contribuições para numerosas estruturas, o dysregulation do desenvolvimento do NCC comumente pode originar defeitos congênitos do nascimento, que respondem por cerca de 30% de todos os defeitos congênitos humanos do nascimento. Anomalias durante o desenvolvimento da crista neural podem levar a fissura lábio/palato, defeito defeitos de formação do nariz, síndromes, tais como um tracto de saída cardíaca defeituosa do, ou até mesmo mortalidade1,4,5, 6 , 7. compreender os mecanismos moleculares do desenvolvimento do NCC é importante para o desenvolvimento de tratamentos para doenças causadas por defeitos no desenvolvimento do NCC. Com o uso de vários in vitro e in vivo se aproxima de8,9,10,11,12,13,14 ,15, consideráveis progressos na investigação do NCC. In vivo, modelos animais, incluindo galinhas, anfíbios, peixe-zebra e ratos, têm sido utilizados para investigar a CNCC1. Além disso, os embriões humanos têm sido utilizados para estudar o processo de migração do NCC em início de desenvolvimento de embrião humano16. In vitro, modelos de celular para CNCC, tais como CNCC humana que originou-se paciente da gordura subcutânea, têm sido utilizados para investigar a doença de Parkinson17. Linha O9-1 NCC, que foi originalmente derivada de culturas em massa da CNCC endógenas isoladas de 8.5 de embriões de rato18, é um modelo de célula poderoso para estudar CNCC. importante, em condições não-diferenciação de cultura, são células O9-1 multipotentes haste-como CNCC. No entanto, sob condições variáveis de cultura, células O9-1 podem ser diferenciadas em tipos celulares distintos, tais como células musculares lisas, osteoblastos, condrócitos e células gliais18. Devido a essas propriedades, O9-1 células têm sido amplamente utilizadas para estudos relacionados ao NCC, como investigar o mecanismo molecular de defeitos crânio-facial19,20.

Aqui, protocolos detalhados são fornecidos para manter células O9-1, diferenciar células O9-1 em diferentes tipos de células e manipulando células O9-1 através da realização de estudos de perda–função do gene com edição de genoma CRISPR-Cas9 e RNA de interferência pequeno (siRNA)- mediada por tecnologias “knockdown”. Como um exemplo representativo, é descrito o uso de células-O9-1 para estudar Yap e Taz perda de função. Yap e Taz são os efetores a jusante do hipopótamo sinalizando a via, que desempenha um papel crítico na proliferação celular, diferenciação e apoptose. O caminho de Hippo também foi mostrado para ser importante no desenvolvimento e na homeostase de diversos diferentes tecidos e órgãos, bem como na patogênese de doenças diferentes20,21,22,23 ,24,25,26,,27,28. Os principais componentes de hipopótamo sinalização incluem os tumor supressor estéril 20-como quinases Mst1/2, proteína que contém o domínio WW do andaime Salvador e as quinases de homólogo (Lats1/2) de supressor de tumor grande. Sinalização de hipopótamo inibe a atividade de Yap e Taz e promove sua degradação no citoplasma. Sem repressão do hipopótamo, Yap e Taz podem translocar em núcleos e funcionar como co-ativadores transcricionais. Recentemente mostramos que especificamente inactivar o hipopótamo sinalização efetores Yap e Taz no mouse CNCC usando o Wnt1cre e Wnt1Cre2SOR motoristas resultaram na letalidade embrionária em E10.5 com graves defeitos craniofaciais20. Também Efetuamos estudos utilizando células O9-1 para investigar o papel de Yap e Taz em CNCC. Para estudar a função Yap e Taz no NCC proliferação e diferenciação, Yap e o Taz knockdown células foram geradas nas células O9-1 usando siRNA, e células de nocaute de Yap foram geradas usando CRISPR-Cas9 edição do genoma. As mesmas estratégias de perda de função do gene podem ser aplicadas a genes-alvo diferente em outras vias. Além disso, ganho-de-função estudos e ensaios de transfeccao também podem ser aplicados às células de O9-1 para estudar a regulação e a função dos genes. Os protocolos descritos aqui destinam-se a ser utilizado por investigadores como guias para cultivo de células O9-1 para manter stemness multipotentes, para diferenciar O9-1 células em outros tipos de células sob condições de cultura diferente e para estudar a função dos genes e os mecanismos moleculares da CNCC.

Protocol

1. preparação antes da cultura de pilha O9-1 Nota: Mídia Basal usada para cultura de células O9-1 deve fomos condicionadas por Sandos pura ratos tioguanina/Ouabaína-resistente (STO) pilhas do rato dos fibroblastos; Portanto, as células STO precisam ser obtidos e preparados conforme descrito abaixo, antes de iniciar a cultura de pilha O9-1. Cultura de célula activa STO Preparar a mídia para cultivo de células ativas de STO, fazendo de Dulbecco comp…

Representative Results

O objetivo das nossas experiências knockdown e nocaute foi estudar os efeitos de Yap e Taz perda-de-função nas células O9-1. Antes os experimentos knockdown e nocaute, temos que certificar-se que preparam para mídia basal e células de cultura O9-1 como descrito acima (por exemplo, necessidades de matriz membrana basal para cobrir a placa inteira como mostrado na Figura 1e O9-1 células recuperadas de nitrogênio líquido como mostrado …

Discussion

O NCC é um contribuinte versátil e chave para diferentes tecidos e órgãos durante a morfogênese embrionária. A linha de celular O9-1 mantém seu potencial para se diferenciar em muitos tipos de células diferentes e imita as características na vivo do CNCC, tornando-o uma ferramenta útil em vitro para estudar a função dos genes e Regulamento molecular em CNCC. O status diferente de células O9-1 pode corresponder a diferentes crista neural progênie na vivo, dependendo das condições…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nicole Stancel, pH.d., ELS, de publicações científicas do Instituto do coração do Texas, prestou apoio editorial. Agradecemos também as seguintes fontes de financiamento: nacional Center cientista desenvolvimento Grant a associação americana do coração (14SDG19840000 de J. Wang), o prêmio de pesquisa Lawrence 2014 do Rolanette e osso Lawrence Berdon doença programa do Texas (para J. Wang ) e os institutos nacionais de saúde (DE026561 e DE025873 para J. Wang, DE016320 e DE019650 de R. Maxson).

Materials

Active STO feeder cells ATCC ATCC CRL-1503 Also available in mitomycin C-inactivated form, catalog # ATCC 56-X
O9-1 mouse cranial neural crest cell line Millipore Sigma SCC049
DMEM, high glucose, no glutamine Gibco 11960-044
DMEM, high glucose Hyclone SH30243.01
FBS (fetal bovine serum) Millipore Sigma ES-009-B
Penicillin – streptomycin Gibco 15140-122
L-glutamine 200mM (100X) Gibco 25030-081
Gelatin from porcine skin Sigma G1890
Trypsin-EDTA 0.25% in HBSS Genesee Scientific 25-510
DPBS (Dulbecco's phosphate buffered saline) without calcium or magnesium Lonza 17-512F
MEM non-essential amino acids (MEM NEAA) 100X Gibco 11140-050
Sodium pyruvate (100mM) Gibco 11360-070
2-Mercaptoethanol Sigma M-7522
ESGRO leukemia inhibitory factor (LIF) 106 unit/ml Millipore Sigma ESG1106
Recombinant human fibroblast growth factor-basic (rhFGF-basic) R&D Systems 233-FB-025
Mitomycin C Roche 10107409001
Matrigel matrix Corning 356234
DMSO (dimethylsulfoxide) Millipore Sigma MX1458-6
Lipofectamine RNAiMAX Thermo Fisher Scientific 13778-075
Opti-MEM I (1X) Gibco 31985-070
Minimum essential medium, alpha 1X with Earle's salts, ribonucleosides, deoxyribonucleosides, & L-glutamine Corning 10-022-CV
ON-TARGETplus Wwtr1 siRNA Dharmacon L-041057
ON-TARGETplus Non-targeting Pool Dharmacon D-001810
ON-TARGETplus Yap1 siRNA Dharmacon L-046247
FCS (fetal calf serum)
ITS (insulin-transferrin-selenium )
TGF-b3
Ascorbic acid
BMP2 (bone morphogenetic protein 2)
Dexamethasone
B-27 supplement

References

  1. Achilleos, A., Trainor, P. A. Neural crest stem cells: discovery, properties and potential for therapy. Cell Research. 22 (2), 288-304 (2012).
  2. Le Douarin, N. M., Dupin, E. Multipotentiality of the neural crest. Current Opinion in Genetics and Development. 13 (5), 529-536 (2003).
  3. Santagati, F., Rijli, F. M. Cranial neural crest and the building of the vertebrate head. Nature Reviews. Neuroscience. 4 (10), 806-818 (2003).
  4. Cordero, D. R., et al. Cranial neural crest cells on the move: their roles in craniofacial development. American Journal of Medical Genetics. Part A. 155 (2), 270-279 (2011).
  5. Trainor, P. A. Craniofacial birth defects: The role of neural crest cells in the etiology and pathogenesis of Treacher Collins syndrome and the potential for prevention. American Journal of Medical Genetics. Part A. 152 (12), 2984-2994 (2010).
  6. Bronner, M. E., Simoes-Costa, M. The neural crest migrating into the twenty-first century. Current Topics in Developmental Biology. , 115-134 (2016).
  7. Zurkirchen, L., Sommer, L. Quo vadis: tracing the fate of neural crest cells. Current Opinion in Neurobiology. 47, 16-23 (2017).
  8. Sauka-Spengler, T., Bronner-Fraser, M. A gene regulatory network orchestrates neural crest formation. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 9 (7), 557-568 (2008).
  9. Knecht, A. K., Bronner-Fraser, M. Induction of the neural crest: a multigene process. Nature Reviews. Genetics. 3 (6), 453-461 (2002).
  10. Steventon, B., Carmona-Fontaine, C., Mayor, R. Genetic network during neural crest induction: from cell specification to cell survival. Seminars in Cell and Developmental Biology. 16 (6), 647-654 (2005).
  11. Raible, D. W. Development of the neural crest: achieving specificity in regulatory pathways. Current Opinion in Cell Biology. 18 (6), 698-703 (2006).
  12. Dupin, E., Sommer, L. Neural crest progenitors and stem cells: from early development to adulthood. Biologie du développement. 366 (1), 83-95 (2012).
  13. Henion, P. D., Weston, J. A. Timing and pattern of cell fate restrictions in the neural crest lineage. Development. 124 (21), 4351-4359 (1997).
  14. Harris, M. L., Erickson, C. A. Lineage specification in neural crest cell pathfinding. Developmental Dynamics. 236 (1), 1-19 (2007).
  15. Luo, R., Gao, J., Wehrle-Haller, B., Henion, P. D. Molecular identification of distinct neurogenic and melanogenic neural crest sublineages. Development. 130 (2), 321-330 (2003).
  16. Betters, E., Liu, Y., Kjaeldgaard, A., Sundstrom, E., Garcia-Castro, M. I. Analysis of early human neural crest development. Biologie du développement. 344 (2), 578-592 (2010).
  17. Yang, S. Y., Beavan, M., Chau, K. Y., Taanman, J. W., Schapira, A. H. V. A human neural crest stem cell-derived dopaminergic neuronal model recapitulates biochemical abnormalities in GBA1 mutation carriers. Stem Cell Reports. 8 (3), 728-742 (2017).
  18. Ishii, M., et al. A stable cranial neural crest cell line from mouse. Stem Cells and Development. 21 (17), 3069-3080 (2012).
  19. Yumoto, K., et al. TGF-beta-activated kinase 1 (Tak1) mediates agonist-induced Smad activation and linker region phosphorylation in embryonic craniofacial neural crest-derived cells. Journal of Biological Chemistry. 288 (19), 13467-13480 (2013).
  20. Wang, J., et al. Yap and Taz play a crucial role in neural crest-derived craniofacial development. Development. 143 (3), 504-515 (2016).
  21. Heallen, T., et al. Hippo pathway inhibits Wnt signaling to restrain cardiomyocyte proliferation and heart size. Science. 332 (6028), 458-461 (2011).
  22. Wang, J., Martin, J. F. Hippo pathway: An emerging regulator of craniofacial and dental development. Journal of Dental Research. 96 (11), 1229-1237 (2017).
  23. Pan, D. The hippo signaling pathway in development and cancer. Developmental Cell. 19 (4), 491-505 (2010).
  24. Xiao, Y., Leach, J., Wang, J., Martin, J. F. Hippo/Yap signaling in cardiac development and regeneration. Current Treatment Options in Cardiovascular Medicine. 18 (6), 38 (2016).
  25. Yu, F. X., Meng, Z., Plouffe, S. W., Guan, K. L. Hippo pathway regulation of gastrointestinal tissues. Annual Review of Physiology. 77, 201-227 (2015).
  26. Fu, V., Plouffe, S. W., Guan, K. L. The Hippo pathway in organ development, homeostasis, and regeneration. Current Opinion in Cell Biology. 49, 99-107 (2017).
  27. Moya, I. M., Halder, G. The Hippo pathway in cellular reprogramming and regeneration of different organs. Current Opinion in Cell Biology. 43, 62-68 (2016).
  28. Piccolo, S., Dupont, S., Cordenonsi, M. The biology of YAP/TAZ: hippo signaling and beyond. Physiological Reviews. 94 (4), 1287-1312 (2014).
  29. Bauer, D. E., Canver, M. C., Orkin, S. H. Generation of genomic deletions in mammalian cell lines via CRISPR/Cas9. Journal of Visual Experiments : JoVE. (95), e52118 (2015).
  30. Ran, F. A., et al. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nature Protocols. 8 (11), 2281-2308 (2013).
  31. Manderfield, L. J., et al. Hippo signaling is required for Notch-dependent smooth muscle differentiation of neural crest. Development. 142 (17), 2962-2971 (2015).
  32. Hindley, C. J., et al. The Hippo pathway member YAP enhances human neural crest cell fate and migration. Scientific Reports. 6, 23208 (2016).
  33. Nejigane, S., Haramoto, Y., Okuno, M., Takahashi, S., Asashima, M. The transcriptional coactivators Yap and TAZ are expressed during early Xenopus development. International Journal of Developmental Biology. 55 (1), 121-126 (2011).
  34. Grefte, S., Vullinghs, S., Kuijpers-Jagtman, A. M., Torensma, R., Von den Hoff, J. W. Matrigel, but not collagen I, maintains the differentiation capacity of muscle derived cells in vitro. Biomedical Materials. 7 (5), 055004 (2012).
  35. Kang, B. J., et al. Effect of matrigel on the osteogenic potential of canine adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Journal of Veterinary Medical Science. 74 (7), 827-836 (2012).
  36. Uemura, M., et al. Matrigel supports survival and neuronal differentiation of grafted embryonic stem cell-derived neural precursor cells. Journal of Neuroscience Research. 88 (3), 542-551 (2010).
check_url/fr/58346?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Nguyen, B. H., Ishii, M., Maxson, R. E., Wang, J. Culturing and Manipulation of O9-1 Neural Crest Cells. J. Vis. Exp. (140), e58346, doi:10.3791/58346 (2018).

View Video