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Article de méthode

Mesure de température de corps de souris avec le thermomètre à infrarouge pendant Passive systémique anaphylaxie et évaluation d’allergie alimentaire

25.9K vues

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DOI :

10.3791/58391

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14 septembre 2018

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici une nouvelle méthode pour mesurer avec précision les écarts de température du corps dans l’anaphylaxie systémique passive (PSA) et des modèles de souris allergie alimentaire à l’aide d’un thermomètre infrarouge. Cette procédure a été fidèlement reproduite dans les précédents résultats de PSA.

Résumé

Mesurer la température de corps souris est d’une importance primordiale pour enquêter sur les allergies et les symptômes anaphylactiques. Sondes rectales pour les lectures de température est commun, et ils sont est avérés pour être précis et précieux à cet égard. Toutefois, cette méthode de mesure de température exige les souris pour être anesthésiés afin d’y pour insérer la sonde sans nuire à l’animal. Cela limite la capacité d’observer simultanément les autres phénotypes de la souris. Afin d’enquêter sur d’autres phénotypes tout en mesurant les températures, les sondes rectales ne sont pas idéales, et une autre méthode est souhaitée. Ici, nous présentons une méthode non invasive de la mesure de la température qui renonce à l’exigence pour l’anesthésie de la souris tout en maintenant la fiabilité égale aux sondes rectales pour mesurer la température corporelle. Nous utilisons un thermomètre infrarouge qui détecte la température de surface de corps à des distances de 2 à 150 mm. Cette méthode de mesure de température de corps est réussie dans la reproduction fiable des tendances de changement de température au cours d’expériences d’anaphylaxie système passif chez les souris. Nous montrons que les températures de surface de corps sont environ 2,0 ° C inférieure à la mesure de la sonde rectale, mais le degré de chute de température suit la même tendance. En outre, nous utilisons la même technique pour observer les souris dans un modèle d’allergie alimentaire pour évaluer les niveaux de température et l’activité simultanément.

Introduction

Mesure de la température corporelle a été un élément essentiel de la surveillance des effets des symptômes anaphylactiques chez les animaux modèles1,2. Écarts de température ont été traditionnellement mesurées par les thermomètres sonde rectale en souris3,4. Avec ces mesures, les enquêteurs ont dépeint fiable de différences de température entre les variables ; Toutefois, cette méthode est une procédure longue et provoque la détresse à des souris, ce qui peuvent augmenter la température corporelle. Sonde rectale peut également provoquer larmoiement et i....

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Protocole

Toutes les expériences animales ont été approuvées par le Comité de l’urbanisme de l’Institut de La Jolla et animalier d’allergie et d’immunologie.

1. souris corps mesure de la température au cours de la Anesthetization

  1. Placez votre souris dans une boîte d’induction de l’anesthésie. Anesthésie à l’aide de 1 L/min débit d’oxygène à l’isoflurane 5 %.
    Remarque : Anesthetization est confirmée lorsque la souris ne répond plus de mouvement volontaire et a été immobile pendant plus de 30 s. alternativement, fréquence respiratoire du moniteur, et une fois que la souris respirent au 1 insufflations par toutes les 2 s ou plus, anesthetiz....

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Résultats

Anaphylaxie systémique passive : injectable i.v., semaine 10 vieilles femelles BALB/c ont été anesthésiés. Avant l’injection, nous avons mesuré leur température corporelle (Video 1) tel que décrit à l’étape 1. La figure 1 illustre la tendance de la température des deux populations après injection intraveineuse. La souris sensibilisées IgE a montré une baisse de la température maximale de 3,0 ° C à 20 min, alors que la souris de contrôle PBS a.......

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Discussion

Le protocole décrit a été créé dans le but de mesurer la température de corps sans l’utilisation de l’anesthésie. Malgré sa relative facilité avec laquelle la température lectures peuvent être obtenus, il y a plusieurs mises en garde qui s’adapter cette technique, en plus des effets plus évidents tels que gestion de stress et températures ambiantes différentes.

Tout d’abord, afin de maintenir les lectures de température constante tout au long de l’expérience, l’endroit où la température est me.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Subventions de recherche dans le Kawakami lab a été pris en charge par les NIH : R01 AR064418-01 a 1, R01 HL124283-01, R21 AI 115534-01 et R41AI124734-01.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Thermomètre infrarouge sans contactSinoPieDT-8861
Anti-dinitrophényle (DNP) IgESigma AldrichD8406-.2MG
Aiguille PrecisionGlide 30 GBD305128
aiguille PrecisionGlide 26 G  ;BD305111
seringue de 1 mLBD309659
Dinitrophényle - albumine sérique humaineBiosearch TechnologiesD-5059-10
Ovalbumine du blanc d’œuf de pouleSigma AldrichA5503-50G
Imject AlunThermoFisher Scientific77161
Aiguilles d’alimentation animale, jetablesFisher ScientificTél. : 01-208-87

Références

  1. Finkelman, F. D. Anaphylaxis: lessons from mouse models. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 120 (3), Quiz 516-507 506-515 (2007).
  2. Lee, J. K., Vadas, P. Anaphylaxis: mechanisms and management. Clinical and Experimental Allergy: Journal of the British Society for Allergy and Clinical Immunology. 41 (7), 923-938 (2011).
  3. Newsom, D. M., Bolg....

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Réimpressions et autorisations

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