Summary

Yetişkin omurilik çekirdeği yalıtım kitlesel paralel tek-çekirdek RNA sıralama için

Published: October 12, 2018
doi:

Summary

Burada, hızlı bir şekilde yüksek kaliteli çekirdekleri aşağı akım kitlesel paralel RNA sıralama için taze veya dondurulmuş dokusundan izole etmek için bir iletişim kuralı mevcut. İkisi de çekirdek yalıtımı için kullanılan deterjan-mekanik ve mekanik hipotonik doku bozulma ve hücre lizis seçenekleri, içerir.

Abstract

Tek bir hücre’nın gen ekspresyonu sondalama hücre tipi ve hücre devlet sağlar. Tek hücreli RNA sıralama transkripsiyon profilleri hücrelerinin, merkezi sinir sistemi gibi heterojen dokuları özellikle eğitim için güçlü bir araç olarak ortaya çıkmıştır. Ancak, tek hücre sıralama için gereken ayrılma yöntemleri gen ifade ve hücre ölümünde deneysel değişikliklere yol açabilir. Ayrıca, bu yöntemler genellikle böylece arşivleme üzerine çalışmalar ve biyo-banka malzeme sınırlama taze doku için kısıtlanır. Tek çekirdek RNA sıralama (snRNA-Seq) transkripsiyon çalışmaları, verilen bu doğru hücre tipleri tanımlar, donmuş ya da ayırmak zor doku çalışma ruhsatı için çekici bir alternatifi ve ayrılma kaynaklı azaltır Transkripsiyon. Burada, yüksek üretilen iş iletişim kuralı çekirdeği aşağı akım snRNA-devamı için hızlı yalıtım için mevcut Bu yöntem çekirdeği taze veya dondurulmuş omurilik örneklerinden yalıtım sağlar ve iki kitlesel paralel damlacık kapsülleme platformları ile kombine edilebilir.

Introduction

Sinir sistemi hànzú morfolojik, biyokimyasal ve elektrofizyolojik özellikleri çeşitli bir dizi görüntüleyen hücreler kümesinden oluşur. Süre toplu RNA sıralama gen ekspresyonu farklı koşullar altında doku genelindeki değişiklikleri belirlemek için yararlı olmuştur, transkripsiyon değişiklikleri tek hücre düzeyinde algılanması engellemektedir. Tek hücreli transkripsiyon analiz son gelişmeler hànzú hücreleri sınıflandırması moleküler kendi repertuar göre fonksiyonel gruplara etkinleştirdiyseniz ve hatta son zamanlarda aktif nöron kümeleri bulmak için kullanılacak olabilir. 1 , 2 , 3 , 4 son on yıl içinde gen ifadesinde bir görünüme hücre tipi çeşitlilik sağlayan tek tek hücreler, çalışma tek hücre RNA (scRNA-Seq) sıralama gelişimini sağlamıştır. 5

Gibi kitlesel paralel scRNA-Seq, ölçeklenebilir yaklaşımlar ortaya çıkması sıra heterojen dokulara, merkezi sinir sistemine sahip pek çok bölge de dahil olmak üzere platformlar sağlamıştır. 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 ancak, tek hücre ayrılma yöntemleri gen ifadesinde deneysel değişikliklerin yanı sıra hücre ölümüne yol açabilir. 16 tek hücre sıralama yöntemleri endojen transkripsiyon profilleri korunması etkinleştirmek için son çalışmasını benimsemiştir. 1 , 3 , 4 , 17 , 18 , 19 bu stratejileri hemen erken gen (IEG) ifade duyusal uyarıcı veya davranış aşağıdaki algılamak için özellikle uygun olmuştur. 3 , 4 gelecekte, bu strateji de dokularda hastalık durumlarında veya strese yanıt dinamik değişiklikleri incelemek için kullanılabilir. Bu yöntemleri, tek çekirdek RNA sıralama (snRNA-Seq) hücre ayrılma stres-inducing içermeyen ve zor doku (örneğin, spinal kord) ayırmak için yanı sıra dondurulmuş kullanılabilir bir umut verici yaklaşımdır doku. 4 , 17 , 18 , 19 uyarlama önceki çekirdek izolasyon yöntemleri,20,21,22,23,25 snRNA-Seq genellikle hızlı doku bozulması ve hücre kullanır lizis soğuk koşulları, Santrifüjü ve ayrılık çekirdeği, hücresel enkaz altında. 4 çekirdek çoklu mikrosıvısal damlacık kapsülleme platformlarda aşağı akım nesil sıralama için ayrılmış olabilir. 4 , 7 , 24 , 25 bu yöntem bir anda zaman içinde binlerce hücre transkripsiyon etkinliği bir anlık görüntü için izin verir.

Çekirdeklerin hücrelerden yalıtım ve sıralama, her biri kendi avantajları ve dezavantajları önce serbest bırakmak için birden çok strateji vardır. Burada, biz tanımlamak ve aşağı akım kitlesel paralel snRNA Seq için yetişkin omurilik üzerinden çekirdek yalıtım etkinleştirmek için iki protokol karşılaştırın: deterjan-mekanik lizis ve mekanik hipotonik lizis. Deterjan-mekanik lizis tam doku bozulması ve çekirdekleri daha yüksek bir son verim sağlar. Hipotonik mekanik-lysis doku bozulması, miktar ve saflık son nükleer verim arasında bir denge seçmek için bir fırsat sağlayan kontrol edilebilir bir ölçüde içerir. Bu yaklaşımlar karşılaştırılabilir RNA verim, çekirdek ve hücre tipi profil başına genlerin algılanan numaraları sağlar ve aynı zamanda her ikisi de başarılı bir şekilde snRNA-devamı için kullanılabilir

Protocol

Sinir hastalıkları Ulusal Enstitüsü ve kontur hayvan bakım ve kullanım Komitesi tarafından onaylanmış bir protokol uyarınca gerçekleştirilmiş tüm hayvan işleri. Erkek ve dişi ICR/CD-1 yaban-farelerde tip, 8 arasında örnekleri dengeli ve 12 hafta yaşlı, tüm deneyler için kullanılmıştır. Fareler yerel kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi kılavuzlarınıza uygun olarak ele alınmalıdır. 1. malzeme ve arabellekleri hazırlanması Tüm arabellekleri ku…

Representative Results

Burada, çekirdeği olan yetişkin fare lomber spinal kord aşağı akım kitlesel paralel RNA sıralama için üzerinden gerçekleştirilen. Protokol üç ana bileşenini dahil: doku bozulması ve hücresel lizis, homojenizasyon ve sukroz yoğunluğu Santrifüjü (Şekil 1). Saniye içinde çok sayıda çekirdeği hem de hücresel ve doku artıkları (Şekil 2ATablo 2) ham çekirdeği hazırlıkla deterjan-mekan…

Discussion

Bu iletişim kuralı, nihai hedefi aşağı akım transkripsiyon analiz için yüksek kaliteli RNA içeren çekirdeklerin izole etmektir. SnRNA-Seq yöntemleri tüm hücre tiplerinin spinal kord profil için uyarlanmış. Başlangıçta, biz omurilik sinir hücreleri hücre ölümü için özellikle savunmasız olduğu gibi tipik hücre ayrılma yöntemleri tek hücre RNA sıralama için etkisiz bulundu. Ayrıca, hücre ayrılma yöntemleri hundred-fold kadar birçok çeşitli etkinlik ve stres tepkisi genler tarafından…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu eser NINDS Intramural programı tarafından desteklenmiştir (1 ZIA NS003153 02) ve NIDCD (1 ZIA DC000059 18). Biz L. Li ve onların teknik destek ve yararlı tartışmalar için CI Dobrott ve C. Kathe el yazması gözden geçirme için teşekkür ederim.

Materials

Sucrose Invitrogen 15503-022
1 M HEPES (pH = 8.0) Gibco 15630-080
CaCl2 Sigma Aldrich C1016-100G
MgAc Sigma Aldrich M1028-10X1ML
0.5 M EDTA (pH = 8.0) Corning MT-46034CI
Dithiothreitol (DTT) Sigma Aldrich 10197777001 Add DTT just prior to use
Triton-X Sigma Aldrich T8787
Nuclease-free water Crystalgen 221-238-10
1 M Tris-HCl (pH = 7.4) Sigma Aldrich T2194
5 M NaCl Sigma Aldrich 59222C
1 M MgCl2 Sigma Aldrich M1028
Nonidet P40 Sigma Aldrich 74385
Hibernate-A Gibco A12475-01
Glutamax (100X) Gibco 35050-061
B27 (50X) Gibco 17504-044
1X PBS Crystalgen 221-133-10
0.04% BSA New England Biolabs B9000S
0.2 U/μL RNAse Inhibitor Lucigen 30281-1
Oak Ridge Centrifuge Tube Thermo Scientific 3118-0050
Disposable Cotton-Plugged Borosilicate-Glass Pasteur Pipets Fisher Scientific 13-678-8B
Glass Tissue Dounce (2 ml) Kimble 885303-002
Glass large clearance pestle Kimble 885301-0002
Glass small clearance pestle Kimble 885302-002
T 10 Basic Ultra Turrax Homogenizer IKA 3737001
Dispersing tool (S 10 N – 5G) IKA 3304000
Trypan Blue Stain (0.4%) Thermo Fisher Scientific T10282
40 μm cell strainer Falcon 352340
MACS SmartStrainers, 30 μm Miltenyi Biotec 130-098-458
Conical tubes Denville Scientific 1000799
Sorvall Legend XTR Centrifuge Thermo Fisher Scientific 75004505
Fiberlite F15-6 x 100y Fixed-Angle Rotor Thermo Fisher Scientific 75003698
Sterological Pipettes: 5 ml, 10 ml Denville Scientific P7127
Hemocytometer Daigger Scientific EF16034F
Chemgenes Barcoding Beads Chemgenes Macosko-2011-10
RNaseZap RNase Decontamination Solution Invitrogen AM9780
Falcon Test Tube with Cell Strainer Cap (35 μm) Corning 352235
MoFlo Astrios Cell Sorter Beckman Coulter B25982
Chromium i7 Multiplex Kit, 96 rxns 10X Genomics 120262
Chromium Single Cell 3’ Library and Gel Bead Kit v2, 4 rxns 10X Genomics 120267
Chromium Single Cell A Chip Kit, 16 rxns 10X Genomics
Tissue Culture Dish (60 x 15 mm) Corning 353002

References

  1. Hrvatin, S., et al. Single-cell analysis of experience-dependent transcriptomic states in the mouse visual cortex. Nature Neuroscience. 21 (1), 120-129 (2018).
  2. Hu, P., et al. Dissecting Cell-Type Composition and Activity-Dependent Transcriptional State in Mammalian Brains by Massively Parallel Single-Nucleus RNA-Seq. Molecular Cell. 68 (5), 1006-1015 (2017).
  3. Wu, Y. E., Pan, L., Zuo, Y., Li, X., Hong, W. Detecting Activated Cell Populations Using Single-Cell RNA-Seq. Neuron. 96 (2), 313-329 (2017).
  4. Sathyamurthy, A., et al. Massively Parallel Single Nucleus Transcriptional Profiling Defines Spinal Cord Neurons and Their Activity during Behavior. Cell Reports. 22 (8), 2216-2225 (2018).
  5. Tang, F., et al. mRNA-Seq whole-transcriptome analysis of a single cell. Nature Methods. 6 (5), 377-382 (2009).
  6. Campbell, J. N., et al. A molecular census of arcuate hypothalamus and median eminence cell types. Nature Neuroscience. 20 (3), 484-496 (2017).
  7. Macosko, E. Z., et al. Highly Parallel Genome-wide Expression Profiling of Individual Cells Using Nanoliter Droplets. Cell. 161 (5), 1202-1214 (2015).
  8. Chen, R., Wu, X., Jiang, L., Zhang, Y. Single-Cell RNA-Seq Reveals Hypothalamic Cell Diversity. Cell Reports. 18 (13), 3227-3241 (2017).
  9. Jaitin, D. A., et al. Massively parallel single-cell RNA-seq for marker-free decomposition of tissues into cell types. Science. 343 (6172), 776-779 (2014).
  10. Li, C. L., et al. Somatosensory neuron types identified by high-coverage single-cell RNA-sequencing and functional heterogeneity. Cell Research. 26 (8), 967 (2016).
  11. Shin, J., et al. Single-Cell RNA-Seq with Waterfall Reveals Molecular Cascades underlying Adult Neurogenesis. Cell Stem Cell. 17 (3), 360-372 (2015).
  12. Tasic, B., et al. Adult mouse cortical cell taxonomy revealed by single cell transcriptomics. Nature Neuroscience. 19 (2), 335-346 (2016).
  13. Usoskin, D., et al. Unbiased classification of sensory neuron types by large-scale single-cell RNA sequencing. Nature Neuroscience. 18 (1), 145-153 (2015).
  14. Villani, A. C., et al. Single-cell RNA-seq reveals new types of human blood dendritic cells, monocytes, and progenitors. Science. 356 (6335), (2017).
  15. Zeisel, A., et al. Brain structure. Cell types in the mouse cortex and hippocampus revealed by single-cell RNA-seq. Science. 347 (6226), 1138-1142 (2015).
  16. Lacar, B., et al. Nuclear RNA-seq of single neurons reveals molecular signatures of activation. Nature Communications. 7, 11022 (2016).
  17. Lake, B. B., et al. Neuronal subtypes and diversity revealed by single-nucleus RNA sequencing of the human brain. Science. 352 (6293), 1586-1590 (2016).
  18. Grindberg, R. V., et al. RNA-sequencing from single nuclei. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (49), 19802-19807 (2013).
  19. Krishnaswami, S. R., et al. Using single nuclei for RNA-seq to capture the transcriptome of postmortem neurons. Nature Protocols. 11 (3), 499-524 (2016).
  20. Matevossian, A., Akbarian, S. Neuronal nuclei isolation from human postmortem brain tissue. Journal of Visualized Experiments. (20), (2008).
  21. Bergmann, O., Jovinge, S. Isolation of cardiomyocyte nuclei from post-mortem tissue. Journal of Visualized Experiments. (65), (2012).
  22. Nohara, K., Chen, Z., Yoo, S. H. A Filtration-based Method of Preparing High-quality Nuclei from Cross-linked Skeletal Muscle for Chromatin Immunoprecipitation. Journal of Visualized Experiments. (125), (2017).
  23. Halder, R., et al. DNA methylation changes in plasticity genes accompany the formation and maintenance of memory. Nature Neuroscience. 19 (1), 102-110 (2016).
  24. Habib, N., et al. Massively parallel single-nucleus RNA-seq with DroNc-seq. Nature Methods. 14 (10), 955-958 (2017).
  25. . Sample Preparation Demonstrated Protocols: Isolation of Nuclei for Single Cell RNA Sequencing Available from: https://support.10xgenomics.com/single-cell-gene-expression/sample-prep/doc/demonstrated-protocol-isolation-of-nuclei-for-single-cell-rna-sequencing (2018)
  26. 10X Genomics. . Single Cell 3′ Reagent Kits v2 User Guide. , (2018).
  27. Fu, Y., Rusznak, Z., Herculano-Houzel, S., Watson, C., Paxinos, G. Cellular composition characterizing postnatal development and maturation of the mouse brain and spinal cord. Brain Structure and Function. 218 (5), 1337-1354 (2013).
  28. Lake, B. B., et al. A comparative strategy for single-nucleus and single-cell transcriptomes confirms accuracy in predicted cell-type expression from nuclear RNA. Scientific Reports. 7 (1), 6031 (2017).
  29. Bakken, T. E. Equivalent high-resolution identification of neuronal cell types with single-nucleus and single-cell RNA-sequencing. bioRxiv. , (2018).
  30. Habib, N., et al. Div-Seq: Single-nucleus RNA-Seq reveals dynamics of rare adult newborn neurons. Science. 353 (6302), 925-928 (2016).
check_url/fr/58413?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Matson, K. J., Sathyamurthy, A., Johnson, K. R., Kelly, M. C., Kelley, M. W., Levine, A. J. Isolation of Adult Spinal Cord Nuclei for Massively Parallel Single-nucleus RNA Sequencing. J. Vis. Exp. (140), e58413, doi:10.3791/58413 (2018).

View Video