Summary

En In Vitro Model af en Parallel-plade Perfusion System at studere bakteriel tilslutning til at pode væv

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Vi beskriver en in-house designet i vitro flow kammer model, som giver mulighed for undersøgelse af bakteriel tilslutning til at pode væv.

Abstract

Forskellige ventil ledningsanlæg og stent monterede ventiler bruges til højre ventrikel udstrømning tarmkanalen (RVOT) ventil udskiftning hos patienter med medfødt hjertesygdom. Når du bruger proteser materialer dog, er disse grafts modtagelige for bakterielle infektioner og forskellige vært svar.

Identifikation af bakterie og vært faktorer, der spiller en afgørende rolle for endovaskulære overholdelsen af mikroorganismer er af betydning for bedre at forstå Patofysiologi af udbrud af infektioner såsom infektiøs endocarditis (IE) og at udvikle forebyggende strategier. Udviklingen af kompetente modeller at undersøge bakteriel adhæsion fysiologiske shear betingelser er derfor nødvendigt. Her, beskriver vi brugen af en nyligt udformet i vitro perfusion kammer baseret på parallelle plader der giver mulighed for undersøgelse af bakteriel tilslutning til forskellige komponenter af transplantat væv såsom fritliggende ekstracellulære matrix, endotelceller og inert områder . Denne metode kombineres med kolonidannende enhed (CFU) tælle er tilstrækkelige til at vurdere graft materialer tilbøjelighed mod bakteriel adhæsion under flow. Yderligere kan på, flow kammer system bruges til at undersøge rollen af blodkomponenter i bakteriel adhæsion shear betingelser. Vi viste, at kilden til væv, deres overflade morfologi og bakteriearter specificitet ikke er de store afgørende faktorer i bakteriel tilslutning til pode væv ved hjælp af vores in-house designet i vitro perfusion model.

Introduction

Staphylococcus aureus (S. aureus) beskæftiger en række virulens strategier til at omgå immunforsvaret værtssystemet koloniserer biologiske eller ikke-biologiske overflader implanteres i det menneskelige omsætning, hvilket fører til alvorlige intravaskulær infektioner såsom sepsis og IE1,2,3,4,5. IE er fortsat et vigtigt behandling forbundet komplikation hos patienter efter implantation af kunstige hjerteklapper mens individuelle faktorer, der bidrager til udbrud af IEare ikke endnu fuldt ud forstået6,7. Under strømningsforhold støder bakterier shear styrker, som de skal overvinde for at overholde fartøj væg8. Modeller, som gør det muligt at studere samspillet mellem bakterier og proteser ventil væv eller endotel under flow, er af interesse, da de afspejler i vivo situationen mere.

Flere specifikke mekanismer lette bakteriel tilslutning i endothelial celler (ECs) og til den eksponerede subendothelial matrix (ECM) fører til væv kolonisering og modning af vegetationen, er væsentlige tidlige trin i IE9. Forskellige stafylokokker overflade proteiner eller MSCRAMMs (mikrobielle overflade komponenter anerkende klæbende matrix molekyler) er blevet beskrevet som mediatorer af adhæsion værtsceller og ECM proteiner ved at interagere med molekyler såsom fibronektin, fibrinogen, kollagen og von Willebrands faktor (VWF)8,10,11. Men i betragtning af intra molekylære foldning af nogle virulens faktorer, for det meste studerede under statiske forhold, mange af disse interaktioner kan have forskellige relevans i endovaskulære infektioner i cirkulerende blod.

Derfor præsenterer vi en in-house designet i vitro parallel-plade flow kammer model, som giver mulighed for vurdering af bakteriel tilslutning til forskellige komponenter af ECM og ECs i forbindelse med væv grafts implanteret i RVOT position. Det overordnede formål med metoden i dette arbejde er at studere mekanismer af interaktion mellem bakterier og underliggende endovaskulære væv i flow betingelser, som er tæt knyttet til blodbanen patogener i vivo miljø som S. aureus. Denne nye fremgangsmåde fokuserer på modtagelighed for graft væv overflader til bakteriel tilslutning til at identificere potentielle risikofaktorer for udvikling af IE.

Protocol

1. forberede Graft væv til In vitro- undersøgelser Bemærk: Tre typer af væv blev brugt: kvæg hjertesækken patch (BP), befrugtede Homograft (CH) og bovin halsfedt grafts (BJV). I tilfælde af BJV conduit og CH (væv behandles af den europæiske Homograft (EHB) og lagres i flydende nitrogen forudgående at bruge), blev både væg og utætte hjerteklapper foldere brugt. BP patch og BJV conduit blev købt fra producenter. Før brug, tø CH efter EHB instruktioner12</…

Representative Results

For bedre at forstå mekanismerne bag IE udvikling, denne model giver mulighed for evaluering af bakteriel og væv i forbindelse faktorer til stede i infektion debut i vivo situation. Detaljeret, Roman i vitro tilgang gør det muligt for at kvantificere bakteriel adhæsion i strømningsforhold til forskellige graft væv af perfusing fluorescently mærket bakterier over væv øve shear understreger i de…

Discussion

Nylige kliniske observationer give særlig opmærksomhed til IE som en komplikation hos patienter har undergået ventil udskiftning af RVOT6,13. Dysfunktion af den implanterede ventil i IE er resultatet af bakteriel interaktion med for Intravaskulært transplantat fører til omfattende inflammatoriske og prokoagulant reaktioner1,14. Modellen præsenteres nye in vitro- tilladt os at undersøge hvi…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse var sponsoreret af et tilskud af forskning fond KU Leuven (OT/14/097) givet til RH. TRV var postdoc stipendiat af CVE Research Foundation – Flandern (Belgien; Giver nummer – 12K0916N) og RH understøttes af klinisk forskning fond UZ Leuven.

Materials

Bovine Pericardium (BP) patch, Supple Peri-Guard Pericardium Synovis Surgical Innovations, USA PC-0404SN
Bovine Jugular Vein conduits (BJV) Contegra conduit; Medtronic Inc, USA M333105D001
CH cryopreserved homograft European Homograft Bank (EHB)
Acu-Punch Acuderm Inc, USA P850 (8 mm); P1050 (10 mm)
human Albumin Flexbumin; Baxter, Belgium BE171464
LOT:16G12C
Tryptic soy broth (TSB) Fluka, Steinheim, Germany 22092-500G
Heart infusion broth (BHI) Fluka 53286-500G
Phosphate buffered saline (PBS). Gibco 14190-094
5(6)-Carboxyfluorescein N-hydroxysuccinimide ester (CF) Sigma-Aldrich, Germany 21878-100MG-F
Peristaltic pump (MODEL ISM444B) Ismatec BVP-Z Standard; Cole Parmer, Wertheim, Germany 631942-2
Sonication bath VWR Ultrasonic Cleaner; VWR, Radnor, Pa 142-6044 230V/50 -60Hz 60VA; HF45kHz, 30W
ProLong Gold Antifade Mountant Invitrogen by ThermoFisher P36930
InCell Analyzer 2000 (fluorescence scanner) GE Healthcare Life Sciences, Pittsburgh, Pa 29027886
Arium Pro VF – ultrapure water – H2O MilliQ Millipore 87206462
Microscopic slides – Tissue Culture Chambers (1-well) Sarstedt 94.6140.102
1-well on Lumox detachable Sarstedt 94.6150.101
Stainless Steel – surgical Blades Swann-Morton 311
Tygon Silicone Tubing, 1/8"ID x 1/4"OD Cole-Parmer EW-95702-06 Temperature range: –80 to 200°C
Sterilize: With ethylene oxide, gamma irradiation, or autoclave for 30 min, 15 psi of pressure
PharMed BPT Tubing Saint-Gobain AY242012 Autoclavable 30 min at 121°C
Tygon LMT-55 Tubing Saint Gobain Performance Plastics™ 15312022
Thermostat BMG BIOMEDIZINTECHNIK 300-0042 230V, 90VA, 50Hz

References

  1. Que, Y. A., Moreillon, P. Infective endocarditis. Nature Reviews Cardiology. 8 (6), 322-336 (2011).
  2. Werdan, K., et al. Mechanisms of infective endocarditis: pathogen-host interaction and risk states. Nature Reviews Cardiology. 11 (1), 35-50 (2014).
  3. Moreillon, P., Que, Y. A. Infective endocarditis. The Lancet. 363 (9403), 139-149 (2004).
  4. Jalal, Z., et al. Selective propensity of bovine jugular vein material to bacterial adhesions: An in vitro study. International Journal of Cardiology. 198, 201-205 (2015).
  5. Sharma, A., Cote, A. T., Hosking, M. C. K., Harris, K. C. A Systematic Review of Infective Endocarditis in Patients With Bovine Jugular Vein Valves Compared With Other Valve Types. JACC Cardiovascular Interventions. 10 (14), 1449-1458 (2017).
  6. Malekzadeh-Milani, S., et al. Incidence and predictors of Melody(R) valve endocarditis: a prospective study. Archives of Cardiovascular Diseases. 108 (2), 97-106 (2015).
  7. Hill, E. E., et al. Management of prosthetic valve infective endocarditis. American Journal of Cardiology. 101 (8), 1174-1178 (2008).
  8. Claes, J., et al. Clumping factor A, von Willebrand factor-binding protein and von Willebrand factor anchor Staphylococcus aureus to the vessel wall. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 15 (5), 1009-1019 (2017).
  9. Fowler, T., et al. Cellular invasion by Staphylococcus aureus involves a fibronectin bridge between the bacterial fibronectin-binding MSCRAMMs and host cell beta1 integrins. European Journal of Cell Biology. 79 (10), 672-679 (2000).
  10. Patti, J. M., Hook, M. Microbial adhesins recognizing extracellular matrix macromolecules. Current Opinion in Cell Biology. 6 (5), 752-758 (1994).
  11. Massey, R. C., et al. Fibronectin-binding protein A of Staphylococcus aureus has multiple, substituting, binding regions that mediate adherence to fibronectin and invasion of endothelial cells. Cellular Microbiology. 3 (12), 839-851 (2001).
  12. Jashari, R., et al. Belgian and European experience with the European Homograft Bank (EHB) cryopreserved allograft valves–assessment of a 20 year activity. Acta Chirurgica Belgica. 110 (3), 280-290 (2010).
  13. Cheatham, J. P., et al. Clinical and hemodynamic outcomes up to 7 years after transcatheter pulmonary valve replacement in the US melody valve investigational device exemption trial. Circulation. 131 (22), 1960-1970 (2015).
  14. Que, Y. A., et al. Fibrinogen and fibronectin binding cooperate for valve infection and invasion in Staphylococcus aureus experimental endocarditis. The Journal of Experimental Medicine. 201 (10), 1627-1635 (2005).
  15. Veloso, T. R., et al. Bacterial adherence to graft tissues in static and flow conditions. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 155 (1), 325-332 (2018).
  16. Liesenborghs, L., Verhamme, P., Vanassche, T. Staphylococcus aureus, master manipulator of the human hemostatic system. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 16 (3), 441-454 (2018).
  17. Chiu, J. J., et al. Shear stress increases ICAM-1 and decreases VCAM-1 and E-selectin expressions induced by tumor necrosis factor-[alpha] in endothelial cells. Artheriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 24 (1), 73-79 (2004).
  18. Jockenhoevel, S., Zund, G., Hoerstrup, S. P., Schnell, A., Turina, M. Cardiovascular tissue engineering: a new laminar flow chamber for in vitro improvement of mechanical tissue properties. ASAIO Journal. 48 (1), 8-11 (2002).
  19. Veltrop, M. H. A. M., et al. Bacterial Species- and Strain-Dependent Induction of Tissue Factor in Human Vascular Endothelial Cells. Infection and Immunity. 67 (11), 6130-6138 (1999).

Play Video

Citer Cet Article
Ditkowski, B., Veloso, T. R., Bezulska-Ditkowska, M., Lubig, A., Jockenhoevel, S., Mela, P., Jashari, R., Gewillig, M., Meyns, B., Hoylaerts, M. F., Heying, R. An In Vitro Model of a Parallel-Plate Perfusion System to Study Bacterial Adherence to Graft Tissues. J. Vis. Exp. (143), e58476, doi:10.3791/58476 (2019).

View Video