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Article de méthode

Isolation, Fixation et l’Immunofluorescence imagerie des glandes surrénales de souris

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DOI :

10.3791/58530

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2 octobre 2018

 , 

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici une méthode pour isoler les glandes surrénales de souris, difficulté les tissus, leur section et effectuez l’immunofluorescence souillant.

Résumé

Immunofluorescence est une technique bien établie pour la détection des antigènes dans les tissus avec l’emploi d’anticorps conjugués fluorochrome et dispose d’un large éventail d’applications. Détection d’antigènes permet la caractérisation et l’identification de plusieurs types de cellules. Située au-dessus des reins et encapsulé par une couche de cellules mésenchymateuses, la glande surrénale est un organe endocrine composé de deux tissus différents avec différentes origines embryologiques, le cortex externe mésonéphriques dérivés mesoderm intermédiaire et les neurones medulla interne dérivée de crête. La corticosurrénale sécrète des stéroïdes (c.-à-d., les minéralocorticoïdes, glucocorticoïdes, hormones sexuelles), tandis que la médullosurrénale produit des catécholamines (c.-à-d., adrénaline, noradrénaline). En effectuant une recherche surrénalienne, il est important d’être capable de distinguer les cellules uniques avec des fonctions différentes. Ici, nous fournissons un protocole mis au point dans notre laboratoire qui décrit une série d’étapes séquentielles requises pour l’obtention d’immunofluorescence souillant pour caractériser les types de cellules de la glande surrénale. Nous nous concentrons d’abord sur la dissection des souris les glandes surrénales, l’élimination microscopique des graisses periadrenal suivie de la fixation, le traitement et la paraffine incorporant des tissus. Nous décrivons ensuite la découpe des blocs de tissus avec un microtome rotatif. Enfin, nous détaillons un protocole pour l’immunofluorescence des glandes surrénales que nous avons élaborée pour minimiser les anticorps non-spécifiques et autofluorescence afin d’obtenir un signal optimal.

Introduction

Immunohistochemistry est une technique de détection de composants tissulaires avec l’utilisation d’anticorps dirigés contre des molécules cellulaires spécifiques et des techniques de coloration ultérieures pour détecter les anticorps conjugués1. Cette procédure d’immunohistochemical nécessite une fixation spécifique et traitement des tissus qui sont souvent empiriquement déterminées pour l’antigène spécifique, les tissus et les anticorps utilisés2. La fixation est essentielle préserver l’état « original » du tissu et ainsi maintenir intact cellulaires et des structures subcellulaires et profils d’expression. Plus de trai....

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Protocole

Toutes les méthodes ont été réalisés conformément aux protocoles approuvés sur le plan institutionnel sous les auspices du Comité universitaire sur l’utilisation et l’entretien des animaux à l’Université du Michigan.

1. préparation pour la chirurgie

  1. Le jour avant la chirurgie, préparer 4 % paraformaldéhyde (PFA) / tampon phosphate salin (PBS). Dans le cas des aliquotes congelés, procéder à un dégel et conserver à 4 ° C.
    NOTE : 4 % PFA n’est pas stable pendant plus de 48 h.
    ATTENTION : PFA est toxique, éviter tout contact avec la peau et les yeux et disposer dans un contenant approprié.
  2. Le jour de la chirurgie, prép....

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Résultats

La figure 1 représente une représentation schématique de l’ensemble du protocole décrit ci-dessus. Les glandes surrénales sont récoltées de souris, adjacent de tissus adipeux est enlevé sous un microscope à dissection et les surrénales sont ensuite fixés à 4 % PFA. Après cette étape, les glandes surrénales sont traitées et incorporés à la paraffine et sectionnés avec un microtome permettant de couper l’orgue en fines tranches qui sont déposés sur lames de mic.......

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Discussion

Ce protocole décrit une méthode pour l’isolement des glandes surrénales de souris ainsi que de la préparation et la coloration des glandes surrénales de souris de paraffine sectionnés.

Comparé à d’autres protocoles que nous avons testé, ce protocole immunofluorescence s’est avéré convenant à la plupart des anticorps utilisés dans notre laboratoire. Toutefois, dans certains cas, il peut exiger des ajustements pour améliorer les résultats de coloration. Une variable qui peut facilement être modi.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions le Dr Mohamad Zubair pour ses suggestions utiles et assistance technique dans la mise en place du présent protocole. Ce travail a été soutenu par le National Institute of Diabetes et Digestive and Kidney Diseases, instituts nationaux de santé recherche Grant 2R01-DK062027 (à Gadio).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plaque de culture cellulaire à 24 puitsNest Biotechnology Co.0412B
Aiguilles jetables 25 G x 5/8"Exel International26403
Paraformaldéhyde (PFA)Sigma-Aldrich  ;P6148
Paraplast plus  ;McCormik scientific39502004Paraffine pour l’enrobage tissulaire
Cassettes de biopsie Shandon II avec couvercle attachéThermo scientific1001097Cassettes pour le traitement
des tissus Lames microtomes à profil élevéAccu-Edge4685Lames jetables en acier inoxydable
Moules d’enrobage de tissus en plastique jetables Peel-a-wayPolysciences Inc.18986Tronquée, carrée de 22 mm en haut effilée à 12 mm en bas
Lames de microscope Superfrost PlusFisherbrand12-550-1575 mm x 25 mm x 1 mm
XylèneFisher ChemicalX5P1GAL  ;
200 ProofEthanol Decon Labs, Inc.
Certi-Pad Compresses de gaze  ;Sécurité certifiée Mfg, Inc231-2103" x 3. Compresses de gaze stériles sans latex
Kit M.O.M.Vector laboratoriesBMK-2202Pour la détection des anticorps primaires de souris sur les tissus
de souris KimWipes Kimtech34155Lingettes 4,4 pouces x 8,4 pouces
Super PAP PENInvitrogen  ;00-8899Stylo pour dessiner sur des lames Verre de
protection de microscopeFisherbrand12-544-DTaille : 22 x 50 x 1.5
DAPISigmaD9542  ;(Préparé dans une bouteille de 20 mg/mL)
Réactif anti-décoloration ProLong GoldSondes moléculairesP36930Agent de montage pour immunofluorescence
série X-cite 120QLumen DynamicsSource lumineuse
Coolsnap MyoPhotometricsCamera
Optiphot-2  ;NikonMicroscope
microtomeAmerican Optical Tissue
EmbedderLeicaEG1150 H  ;
Processeur de tissus  ;LeicaASP300S
Sérum de chèvre normalSigmaG9023
Anti-THde souris MilliporeMAB318Anticorps primaire
Lapin anti-SF1Ab proteintech group (PTGlabs)  ; sur mesureAnticorps primaire
Alexa-488 Souris IgG  ; chèvre élevéeJackson ImmunoResearch115-545-003  ;Anticorps secondaires
Dylight-549 Lapin IgG chèvre élevéeJackson ImmunoResearch111-505-003Anticorps secondaire
Citrate acide anhydreFisher ChemicalA940-500
NIS-Elements Recherche fondamentale  ;Logiciel Nikonpour l’imagerie

Références

  1. Brandtzaeg, P. The increasing power of immunohistochemistry and immunocytochemistry. Journal of Immunological Methods. 216 (1-2), 49-67 (1998).
  2. Matos, L. L., Trufelli, D. C., de Matos, M. G., da Silva Pinhal, M. A. Immunohistochemistry as....

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Réimpressions et autorisations

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