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Article de méthode

Génie de génome CRISPR dotés de Cas9 pour produire des modèles de Jurkat Reporter pour l’Infection à VIH-1 avec les Sites d’intégration Proviral sélectionnés

9.2K vues

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DOI :

10.3791/58572

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14 novembre 2018

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Nous présentons un flux de travail de génie du génome pour la génération de nouveaux modèles in vitro pour l’infection à VIH-1 qui récapitulent l’intégration provirale dans certains sites génomiques. Ciblage des journalistes dérivé du VIH est facilitée par la manipulation du génome CRISPR Cas9-médiation, in situ. Des protocoles détaillés pour la génération de cellule unique clone, dépistage et vérification de ciblage correcte sont fournis.

Résumé

Virus de l’immunodéficience humaine (VIH) intègre son ADN proviral non aléatoirement dans le génome de cellule hôte sites récurrents et génomiques hotspots. Nous présentons ici un protocole détaillé pour la génération de nouveaux modèles in vitro d’infection à VIH avec des sites choisis intégration génomique à l’aide des technologies d’ingénierie génomique CRISPR dotés de Cas9. Avec cette méthode, une séquence de journaliste de choix peut être intégrée dans un locus génomique ciblé et choisi, reflétant des sites d’intégration cliniquement pertinente.

Dans le protocole, la conception d’un journaliste dérivé du VIH et en choisissant une séquence cible de site et gRNA sont décrites. Un vecteur de ciblage avec les bras de l’homologie est construit et transfecté dans des cellules T Jurkat. La séquence de journaliste s’adresse au site génomique sélectionné par recombinaison homologue, facilitée par une médiation Cas9 bicaténaires pause sur le site cible. Clones de cellules individuelles sont générées et projetés pour le ciblage des événements par cytométrie en flux et par PCR. Clones sélectionnés sont ensuite développées, et un ciblage correct est vérifiée par PCR, séquençage et de Southern. Événements hors-cible du génie de génome CRISPR Cas9-médiation sont analysés.

En utilisant ce protocole, les systèmes de cultures cellulaires roman cette infection à VIH modèle à sites d’intégration cliniquement pertinente peut être générée. Bien que la génération de clones de cellules individuelles et la vérification de l’intégration de séquence correcte journaliste prend du temps, les lignées clonales qui en résultent sont des outils puissants pour analyser fonctionnellement choix site intégration proviral.

Introduction

Intégration de l’ADN proviral dans le génome de l’hôte à l’infection est une étape essentielle dans le cycle de vie du virus de l’immunodéficience humaine (VIH). Après intégration, VIH persiste en établissant la latence en sous-ensembles de cellules T CD4 + vivaces telles que les cellules T CD4 + mémoire. Intégration du VIH semble être non aléatoire1,2. On a décelé un certain nombre de hotspots génomiques avec l’ADN proviral intégré de manière récurrente dans plusieurs études à travers le séquençage des sites d’intégration aux personnes infectées de manière aiguë et chronique2,

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Protocole

1. cibler stratégie pour génome d’ingénierie et le ciblage de dessin vectoriel (tv)

Remarque : La première étape de l’ingénierie du génome consiste sélection et génération des outils nécessaires pour cibler les CRISPR Cas9-induite. Sélection d’un locus du site intégration génomique, choix du type de cellule afin de cibler et conception d’un reporter dérivé du VIH pour intégration doivent précéder cette étape. Ce protocole décrit le ciblage d’un journaliste minime du VIH-LTR_tdTomato_BGH-PA dans des cellules Jurkat cible. Un diagramme du flux de travail basés sur CRISPR-Cas9 ciblage, génération, dépistage et vérification des l....

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Résultats

Dans cette expérience de représentant, nous avons choisi de cibler un journaliste dérivés du VIH-1 minime consistant en une LTR, séquence codant pour tdTomato et la séquence polyA-signal à deux loci dans l’intron 5 du gène BACH217. Les locus pour le ciblage ont été choisis selon la proximité avec les sites publiés intégration récurrente trouvés dans différentes études sur des cellules de T primaires de patients infectés par le VIH2,

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Discussion

Nous décrivons ici un protocole visant à générer des modèles de journaliste Jurkat dérivés du VIH-1 avec des sites d’intégration proviral choisi appliquant le génie du génome CRISPR dotés de Cas9.

Plusieurs points du protocole nécessitent une attention particulière durant la phase de planification. Tout d’abord, le locus d’être la cible doit être choisi avec soin, car certains loci pourrait être plus facile à la cible que d’autres (par exemple, selon l’état de la chromatine de la régi.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Britta Weseloh et Bettina Abel pour l’assistance technique. Nous remercions également Arne Düsedau et Jana Hennesen (plate-forme de technologie dans la cytométrie en flux, Heinrich Pette Institut) pour le support technique.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Vecteur d’expression de mammifère pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9Addgene42230pour l’expression de SpCas9 et d’ARNg
pMKGeneArtVecteur d’expression de mammifère pour le clonage
d’ADNc3.1InvitrogenV79020Vecteur d’expression de mammifère pour le clonage
BbsINew England BiolabsR0539SEnzyme de restriction
NEBuilder Hifi DNA Kit de clonage d’assemblageNew England BiolabsE5520SKit de clonage d’assemblage utilisé pour la génération de vecteurs cibles
Système de PCR de précision TaqPlusAgilent Technologies600210ADN polymérase avec activité de relecture utilisée pour l’amplification des bras d’homologie (étape 1.2.2.2), vérification du site d’intégration et de la séquence du rapporteur (étapes 3.3.3 et 3.3.5), génération de la sonde génomique pour le transfert de Southern (étape 3.4.1.5) et analyse des événements hors cible (étape 3.5.4)
Plaque de culture tissulaire à 96 puits (à fond rond)TPP92097pour le placage de dilution Phision
High-Fidelity DNA polyméraseNew England BiolabsM0530 LADN polymérase utilisée pour la détection des événements de ciblage (étape 2.4.2) et la génération d’une sonde spécifique au rapporteur pour le transfert de Southern (étape 3.4.1.4)
Diméthylsulfoxyde (DMSO)Sigma-AldrichD9170Dimethyl sulfoxyde comme PCR additif
Chlorure de magnésium (MgCl2) SolutionNew England BiolabsB9021SMgCl2 en tant qu’additif PCR
Désoxynucléotide (dNTP) Solution MélangeNew England BiolabsN0447SdNTP avec 10 mM de chaque nt pour les réactions PCR
5PRIME HotMasterMix5PRIME2200400Mélange PCR prêt à l’emploi utilisé pour le dépistage PCR (étape 3.2.11)
QIAamp DNA blood mini kitQiagen51106Kit d’isolement et de purification de l’ADN
QIAquick PCR Kit de purificationQiagen28106Kit de purification PCR
RPMI 1640 sans glutamineLonzaBE12-167Fmilieu de culture cellulaire
Sérum de veau fœtal Afrique du Sud ChargePAN BiotechP123002milieu
de culture cellulaireL-glutamineBiochromK 0282milieu de culture cellulaire supplément
Pénicilline/Streptomycine 10.000 U/mL/ 10.000 µ ; g/mLSupplément de milieu de culture cellulaireBiochromA 2212
Gibco Opti-MEM Milieu sérique réduitThermo Fisher Scientific31985062milieu de culture cellulaire à concentration sérique réduite optimisé pour la transfection
Réactif de transfectionTransIT-JurkatMirus BioMIR2125
phorbol 12-myristate 13-acétateSigma-AldrichP8139-1MGculture cellulaire réactif
IonomycinSigma-AldrichI0634-1MGréactif de culture cellulaire
Unité de filtration à seringue, membrane PES, 0,22 & micro ; mMillexSLGP033RBunité de filtration pour filtration stérile
Incubateur Heracell 150iThermo Fisher Scientific51026280incubateur de culture tissulaire
Amershan Hybond-N+GE HealthcareRPN1520Bmembrane en nylon chargée positivement pour transfert d’ADN et d’ARN
Stratalinker 1800Stratagene400072réticulant UV
High PrimeRoche11585592001kit pour le marquage de l’ADN avec du dCTP radioactif à l’aide d’oligonucléotides aléatoires comme amorces
illustra ProbeQuant G-50 Micro ColumnsGE Healthcare28-9034-08colonnes de chromatographie spin-columns pour la purification de l’ADN marqué
Plaques de culture tissulaire supplément de

Références

  1. Hughes, S. H., Coffin, J. M. What Integration Sites Tell Us about HIV Persistence. Cell Host and Microbe. 19 (5), 588-598 (2016).
  2. Marini, B., Kertesz-Farkas, A., et al. Nuclear architecture dictates HIV-1 integration site selection. Nature. 521 (7551), 227-231 ....

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Réimpressions et autorisations

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