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Article de méthode

Enquête de dépendances génétiques utilisant la concurrence fondée sur les Cas9-CRISPR

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DOI :

10.3791/58710

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7 janvier 2019

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Dans cet article

Résumé

Ce manuscrit décrit une méthode de base CRISPR-Cas9 de groupés régulièrement entrecoupées court palindromique répète (CRISPR) pour une enquête rapide et simple du rôle de plusieurs gènes candidats à la prolifération des cellules de la leucémie myéloïde aiguë (AML) Parallèlement. Cette technique est évolutive et peut être appliquée dans les autres lignées cellulaires cancéreuses ainsi.

Résumé

Études de perturbation de gènes ont été utilisés intensivement pour enquêter sur le rôle des gènes individuels dans la pathogenèse de l’AML. Pour la réalisation complète du gène perturbation, beaucoup de ces études ont fait l’utilisation de modèles knock-out gène complexe. Bien que ces études sur des souris knockout offrent un système élégant et ayant fait leurs preuves pour enquêter sur les relations génotype-phénotype à, une méthode rapide et évolutive pour l’évaluation des gènes candidats qui jouent un rôle dans la prolifération cellulaire AML ou la survie dans les modèles AML aidera à accélérer l’interrogatoire parallèle de plusieurs gènes candidats. Les progrès récents dans les technologies de modification du génome ont amélioré considérablement notre capacité à effectuer des perturbations génétiques à une échelle sans précédent. Un tel système de modification du génome est la méthode CRISPR dotés de Cas9 qui permet d’effectuer des modifications rapides et efficaces dans le génome de cellules cibles. La simplicité et l’évolutivité des CRISPR/Cas9-mediated gene-suppression rend une des techniques plus attrayants pour l’interrogatoire d’un grand nombre de gènes dans des tests phénotypiques. Nous présentons ici un essai simple avec CRISPR/Cas9 médiée par gène-perturbation combinée à haut-débit débit-cytometry-concurrence fondée sur les dosages d’enquêter sur le rôle des gènes qui peuvent jouer un rôle important dans la prolifération ou la survie de l’homme et lignées de cellules murines AML.

Introduction

Les dernières décennies ont vu les nombreux efforts de recherche axés sur l’identification de la contribution des principales voies moléculaires dans la pathogenèse de la leucémie myéloïde aiguë (AML). Traditionnellement, disruption de génique dans les cellules de Lam a été réalisée à l’aide de la souris knock-out conditionnel ou court-hairpin RNA (Sharn). Tandis que chez des souris knockout offrent un système sophistiqué de contrôle spatio-temporelle de la délétion de gène, générant des souris knockout gène est fastidieux, long et coûteux. En outre, gène-coups de grâce à l’aide de stratégies de recombinaison n’est pas facilement évolutive ; ces stratégies ne se prête....

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Protocole

1. générer AML Cell Line Clones avec forte Expression de Cas9 Stable et Active

  1. Production de Cas9 lentivirus
    1. Jour 0 : Plaque 4 x 106 293 t cells dans 10 mL de DMEM avec 10 % sérum fœtal (SVF) et de la pénicilline et de L-glutamine dans un plat de culture de tissu de 10 cm dans un niveau 2 de biosafety (BSL2) certifié hotte de culture cellulaire. Placer le plat dans un incubateur à 37 ° C.
    2. Jour 1 : Les cellules 293 t plaqué devraient être 70 – 80 % anastomosé au jour 1. Effectuer la transfection utilisant le protocole suivant dans l’après-midi.
    3. Réchauffer le moyen de transfection, de milieux de cultu....

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Résultats

Dans notre étude, nous avons tout d’abord transduites la MOLM13 humaine AML lignée qui porte la translocation de MLL-AF9 avec haut-titre virus codant le plasmide lentiviraux Cas9-blasticidine. Dans nos mains, en vrac non triées de cellules MOLM13-Cas9 ne manifestaient pas de haut niveau d’expression Cas9 Western Blot et n’a pas exécuté aussi bien quand le dosage efficace gène édition-à l’aide de la méthode décrite précédemment7. Par conséquent, nous avons procédé à.......

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Discussion

Dans ce manuscrit, les auteurs décrivent un protocole détaillé pour effectuer un test de croissance compétitive CRISPR dotés de Cas9 pour enquêter sur le rôle des gènes candidats dans des lignées cellulaires AML cytométrie-dans les cellules humaines/murin AML (Figure 5). L’objectif du test est d’identifier l’effet de la suppression du gène sur l’entretien de la prolifération cellulaire AML pendant deux à trois semaines sur une échelle de débit moyen. Certaines étapes critiques doivent être s.......

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Déclarations de divulgation

A.J.D est un consultant pour A2A pharmaceuticals (New Jersey) et Salgomed Therapeutics (San Diego). D’autres auteurs n’ont aucun conflit à déclarer.

Remerciements

Le plasmide de pCW-Cas9 était un cadeau de Eric Lander & David Sabatini (Addgene plasmide 50661 #) et le pKLV2-U6gRNA5 (BbsI) - PGKpuro2ABFP - plasmide W du labo Yusa (plasmide #67974 de Addgene. Nous tenons à remercier le noyau de la cytométrie en flux SBP Medical Discovery Institute pour une aide opportune avec analyse en flux et tri. Nous tenons à souligner le soutien de la Lady Tata Memorial Foundation AP. j.-c. Nous tenons à remercier également les sources de financement suivantes : NIH/NCI P30 CA030199 Cancer Center parrainé par Grant, la Fondation-V et les San Diego NCI Cancer Centers (C3) #PTC2017to A.J.D.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
FLAG-M2 Anticorpssigma-aldrichF3165, lot # SLBS3530V
Anticorps anti-sourisInvitrogen31446, lot # TA2514341
SuperSignal West Femto Substrat à sensibilité maximaleThermo Fisher34095
Système d’imagerie ChemiDocBIO RAD17001401
Centrifugeuse Sorvall Legend RTThermo Scientific
BlasticidineThermo FisherR21001
SYTOX RougeThermo FisherS34859
Opti-MEMThermo Fisher31985062
DMEMThermo Fisher11965-092
RPMIThermo Fisher11875-093
Pénicilline-StreptomycineThermo Fisher15140122
L-Glutamine (200 mM)Thermo Fisher25030081
Sérum fœtal bovin (FBS)SAFC12303C
vecteur unique d’ARNgAddgene #67974pKLV2-U6gRNA5(BbsI)-PGKpuro2ABFP-W
CelLytic Kit d’extraction nucléairesigma-alorichNXTRACT
XtremeGENE 9sigma-alorich6365787001
RétronectineTakaraT100B
Cytomètre en fluxBD Biosciences
T4 PNKNEBioLabsM0201S
Tampon de ligature de l’ADN T4NEBioLabsB0202S
Enzyme T4 DNA LigaseNEBioLabsM0202S
AmpicillineFisher scientifiqueBP1760-25
LB agarFisher scientificBP9724-500
LB BouillonFisher scientificBP9731-500
Qiagen mini-prep kitQiagen27104
NanoDrop Spectrophotomètre ThermoFisherNanoDrop One
Recombinant Murin IL-3Peprotech213-13
Recombinant Murin IL-6Peprotech216-16
Souris recombinante M-CSFPeprotech315-02
Cellules stables et compétentesNEBiolabsC3040I
10 cm Boîtes de culture tissulaireFisher Scientific353003
Solution de précipitation des protéinesQiagen158910
Solution d’hydratation de l’ADNQiagen158914
QIAquick Gel Extraction KitQiagen28704
BbSINew England BioLabsR0539S
APEX 2.0x Taq Red Master Mix KitGenessee Scientific42-138
PuromycinFisher scientificBP2956100
50 mL tubesconiques en polypropylèneFisher scientific1495949A
Tubes coniques en polypropylène de 15 mLFisher scientific1495970C
Solution de lyse cellulaire Qiagen 158906

Références

  1. Mali, P., Esvelt, K. M., Church, G. M. Cas9 as a versatile tool for engineering biology. Nature Method. 10 (10), 957-963 (2013).
  2. Doudna, J. A., Charpentier, E. Genome editing. The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9. Science. 346 (6213), 1258096(2014).

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Réimpressions et autorisations

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