Summary

由小圆形 DNA 分子构建的稳定 DNA 分子、一维和二维纳米结构

Published: April 12, 2019
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Summary

本文详细介绍了小圆形 DNA 分子 T4 结扎和变性 PAGE 纯化、圆形瓷砖退火和原生 page 分析、一维和二维 DNA 纳米结构的组装和 AFM 成像以及琼脂糖凝胶的研究。有限 DNA 纳米结构的电泳和离心纯化。

Abstract

本文详细介绍了小圆形 DNA 分子的合成、圆形 DNA 图案的退火以及一维和二维 DNA 纳米结构的构建。几十年来, DNA 纳米技术的快速发展归功于线性 Dna 的使用作为源材料。例如, DAO (双交叉、反平行、奇数半转) 磁贴作为构建 2D DNA 格子的构建块而闻名;DAO 的核心结构是由两个线性单链 (ss) 寡核苷酸组成的, 就像两条绳子做右手老奶奶结一样。在这里, 一种名为 cDAO (耦合 DAO) 的新型 DNA 切片是使用 cDAO 或 cDAO (圆形64或84核苷酸) 的小圆形 ss-DNA 作为支架链和几个线性 Ss-dna 作为主要链。完美的一维和二维纳米结构由 cDAO 瓷砖组装而成: 无限纳米线、纳米轴、纳米管、纳米带;和有限的纳米矩形。详细的方案描述: 1) T4 连接酶制备和纯化变性 page (聚丙烯酰胺凝胶电泳) 的小圆形寡核苷酸, 2) 退火稳定的圆形瓷砖, 其次是本地 PAGE 分析, 3) 组装无限一维纳米线、纳米轴、纳米轴、纳米管和纳米带的无限二维晶格和有限二维纳米矩形, 然后是原子力显微镜成像。该方法简单、可靠, 对大多数实验室来说都是经济实惠的。

Introduction

DNA 分子已被用于建立多种纳米结构几十年来。典型的图案包括 dae (双交叉, 反平行, 甚至半转) 和 dao瓷砖 1,2, 3, 星牌 4,5,6, 7, 单链 (ss)瓷砖 8,9,10和 dna 折纸11,12,13。这些 DNA 图案和格子是由线性 ss-DNAs 组装而成的。最近, 我们还报告了使用圆形 ss-寡核苷酸作为支架来构建图案、一维纳米管和二维格子14151617。通过在 c64nt 中心插入 holliday 连接点 181920、21,可以形成一对两个耦合 dao 磁贴17。这个新的 cDAO 母题及其衍生物足够稳定和刚性, 可以组装高达 3×5μm 2 的二维 DNA晶格。在本文中, 我们使用了一个术语 “圆形瓷砖”, 它被定义为一个稳定的 DNA 复杂分子, 用一个圆形支架和其他线性的 ss-寡核苷酸的钉建造, 另一个术语 “线性瓦”, 它是由一个完整的线性生成寡核苷酸。

该协议演示了如何构建五种 DNA 纳米结构, 这些纳米结构以小圆形 dna 分子为支架: 1) 无限一维 c64nt 和 c64nt 纳米线, 2) 无限二维 Cdao-c64nt-o 和 Cdao-c64t-e (-o 代表5个半圈和—表示偶数的4个半转) 格子, 3) 无限二维 cdao-c8nt-o 和 Cdaa-c84nt e 晶格, 4) 有限的 2D 5×6 Cdao-c64n-o 和 5×6 cdao-c74&84nt o 矩形, 5) 无限 1D acdaa-c4nt e 纳米颗粒和纳米轴 (请参阅 图 3-5用于上述五种 dna 纳米结构的示意图和图像)。一维 c64nt 和 c64nt 纳米线分别从与两个线性订书机相关的每个 c64nt 和 c64nt 支架中组装而成。Cdao-c64nt、Acda-c64nt、cdaa-c74nt 或 Cdao-c84nt 的每个圆形磁贴分别从其相应的 c64nt、c74nt 或 c84 nt 的脚手架中退火, 并分别使用四个线性订书针进行退火。无限二维格子是从具有不同序列的两个圆形磁贴的同一类型进行组装的。两个有限的二维矩形格子分别从32块圆形子网格的两组组合在一起。为了省钱, 在第一个亚退火步骤中, 分别使用不同的悬架来退火32°o-c64nt、12个 cdaa-c74 和 20个 cdao-c84nt 圆形分瓦, 而不同的悬架则只使用单级 c64nt、c64nt 和 c64nt 作为相应的脚手架将相应的32个圆形子晶瓦混合在一起, 应用第二晶格退火步骤分别组装有限的 5×6 cdao-c64n-o 和 5×6 cdao-c74&84nt-o 晶格。当然, 不同顺序的圆形支架可以用来组装各种有限尺寸的纳米结构, 但它将花费更多的金钱和劳动力。无限 1D Acdaa-c64nt e 纳米颗粒和纳米光谱是由一个序列的非对称 acda-c64t 磁贴退火, 线性连接数均匀, 为4个半圈。有两种方法可以从 Cdao-c64nt 和 Cdao-c84nt 的圆形磁贴中组装无限二维格子, 它们分别由偶数4和5个半圈的奇数的互距来区分。前者要求所有磁贴以相同的方式对齐;后者要求沿螺旋轴交替相邻的两个瓦片的面。如果磁贴是刚性和平面的, 例如 Cdao-c64nt, 这两种方法都会产生平面纳米带;如果磁贴向一个方向弯曲, 例如 Cdao-c84nt, 偶数4半转的互连将产生纳米管, 而奇数5半转的互连将产生平面纳米带, 因为消除了曲线偏置的增长, 通过弯曲的瓷砖的交替对齐。从圆形瓷砖成功组装一维和二维 DNA 纳米结构表明了这种新方法的几个优点: 圆形瓷砖的强制稳定性和刚性, 而不是线性瓷砖, 手性瓷砖用于组装非对称纳米结构, 如纳米颗粒和纳米带, 了解 DNA 力学和分子结构的新愿景。

Protocol

1. 编制圆形 Dna 使用商业公司直接提供的所有线性 Dna, 无需进一步纯化。 以 5, 000xg 离心 DNA 样本 5分钟, 以收集管内底部的所有 DNA 颗粒。加入适当体积的 TE 缓冲液 (10 mM tris, 1 mM EDTA, pH 8.0) 来溶解 DNA。 使用260纳米的微紫外光谱仪测量每个 ss-DNA 溶液的 “a” ngμl 浓度。将 “a” ngμμl 转换为 “b” Μμm, 跟随 b = ax10 3/(dna 链的分子量)。调整 TE 溶液的用量, 使 Dna 溶液达到10μm。</…

Representative Results

由于环状 dna 内的毛孔被凝胶纤维 23, 24, 25 穿透和阻碍, 因此在变性页中, 圆形 dna 的移动速度比其前兆线性 dna 稍慢(图 2).低聚单体环化的正确结扎反应效率取决于基板序列和浓度、反应温度、时间等。由于前体线性 DNA 的浓度在3.5Μm 左右足够高, 因此, 在 uv 光下, c64nt (或 c64…

Discussion

本文提出的方案主要集中在小圆形 DNA 分子的合成和 DNA 纳米结构的组装上。大多数随机测序的 DNA 设计可以在该协议中使用。圆形 Dna 的纯度对于 DNA 组件的成功至关重要。降低 5 ‘-磷酸化线性 DNA 的浓度可以提高环化的生产产率;但是, 这将增加产生相同数量的循环 Dna 的工作量。夹板 DNA 链的长度也会影响正确的结扎反应, 优化后 c64nt 和 c64nt 的核苷酸长度在20个左右。

在组装?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢国家自然科学基金 (91753134 和 21571100) 和东南大学生物电子国家重点实验室的财政支持。

Materials

T4 ligase TaKaRa 2011A
T4 buffer TaKaRa 2011A
TE buffer Sangon B548106
Thermo bottle Thermos SK-3000
Thermo cycler Bio Gener GE4852T
Exonuclease I TaKaRa 2650A
Exonuclease I buffer TaKaRa 2650A
30% (w/v) Acryl/Bis solution (19:1) Sangon B546016
TAE premix podwer Sangon B540023
Mg(Ac)2·4H2O Nanjing Chemical Reagent C0190550223
Urea Sangon A510907
TEMED BBI A100761
Ammonium Persulfate Nanjing Chemical Reagent 13041920295
Power supply Beijing Liuyi DYY-8C
Water bath Sumsung DK-S12
Formamide BBI A100314
DNA Marker (25~500 bp) Sangon B600303
DNA Marker (100~3000 bp) Sangon B500347
Loading buffer Sangon B548313
PAGE electrophoresis systerm Beijing Liuyi 24DN
Filter ASD 5010-2225 0.22 µM
UV imaging System Tanon 2500R
n-butanol Sangon A501800
Absolute Ethanol SCR 10009257
NaOAc Nanjing Chemical Reagent 12032610459
Centrifuge eppendorf Centrifuge 5424R
Vacuum concentrator CHRIST RVC 2-18
Ultraviolet spectrum Allsheng Nano-100
nucleic acid stain Biotium 16G1010 GelRed
Agarose Biowest G-10
Agarose electrophoresis systerm Beijing Liuyi DYCP-31CN
Heating Plate Jiangsu Jintan DB-1
TBE premix podwer  Sangon B540024
filter column Bio-Rad 7326165 Freeze 'N Squeeze column
AFM Bruker Dimension FastScan
PEG8000 BBI A100159
Mica Ted Pella BP50
triangular AFM probe in air Bruker FastScan-C
triangular AFM probe in fulid Bruker ScanAsyst-fluid+
DNA strands Sangon

References

  1. Tsu-Ju, F., Seeman, N. C. DNA double-crossover molecules. Biochimie. 32 (13), 3211-3220 (1993).
  2. Winfree, E., Liu, F., Wenzler, L. A., Seeman, N. C. Design and self-assembly of two-dimensional DNA crystals. Nature. 394 (6693), 539-544 (1998).
  3. Liu, F., Sha, R., Seeman, N. C. Modifying the surface features of two-dimensional DNA crystals. Journal of the American Chemical Society. 121 (5), 917-922 (1999).
  4. Yan, H., Park, S. H., Finkelstein, G., Reif, J. H., LaBean, T. H. DNA-templated self-assembly of protein arrays and highly conductive nanowires. Science. 301 (5641), 1882-1884 (2003).
  5. Liu, D., Wang, M., Deng, Z., Walulu, R., Mao, C. Tensegrity: Construction of rigid DNA triangles with flexible four-arm DNA junctions. Journal of the American Chemical Society. 126 (8), 2324-2325 (2004).
  6. Tian, C., Li, X., Liu, Z., Jiang, W., Wang, G., Mao, C. Directed self-assembly of DNA tiles into complex nanocages. Angewandte Chemie: International Edition. 53 (31), 8041-8044 (2014).
  7. Wang, P., et al. Retrosynthetic analysis-guided breaking tile symmetry for the assembly of complex DNA nanostructures. Journal of the American Chemical Society. 138 (41), 13579-13585 (2016).
  8. Ke, Y., Ong, L. L., Shih, W. M., Yin, P. Three-dimensional structures self-assembled from DNA bricks. Science. 338 (6111), 1177-1183 (2012).
  9. Wei, B., Dai, M., Yin, P. Complex shapes self-assembled from single-stranded DNA tiles. Nature. 485 (7400), 623-626 (2012).
  10. Ke, Y., et al. DNA brick crystals with prescribed depths. Nature Chemistry. 6 (11), 994-1002 (2014).
  11. Rothemund, P. W. K. Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns. Nature. 440 (7082), 297-302 (2006).
  12. Douglas, S. M., Dietz, H., Liedl, T., Högberg, B., Graf, F., Shih, W. M. Self-assembly of DNA into nanoscale three-dimensional shapes. Nature. 459 (7245), 414-418 (2009).
  13. Dietz, H., Douglas, S. M., Shih, W. M. Folding DNA into twisted and curved nanoscale shapes. Science. 325 (5941), 725-730 (2009).
  14. Ackermann, D., Schmidt, T. L., Hannam, J. S., Purohit, C. S., Heckel, A., Famulok, M. A double-stranded DNA rotaxane. Nature Nanotechnology. 5 (6), 436-442 (2010).
  15. Zheng, H., Xiao, M., Yan, Q., Ma, Y., Xiao, S. J. Small circular DNA molecules act as rigid motifs to build DNA nanotubes. Journal of the American Chemical Society. 136 (29), 10194-10197 (2014).
  16. Wang, M., Huang, H., Zhang, Z., Xiao, S. J. 2D DNA lattices constructed from two-tile DAE-O systems possessing circular central strands. Nanoscale. 8 (45), 18870-18875 (2016).
  17. Guo, X., Wang, X. M., Wei, S., Xiao, S. J. Construction of a holliday junction in small circular DNA molecules for stable motifs and two-dimensional lattices. ChemBioChem. 19 (13), 1379-1385 (2018).
  18. Holliday, R. A mechanism for gene conversion in fungi. Genet. Res. 5 (2), 282-304 (1964).
  19. Duckett, D. R., et al. The structure of the Holliday junction. Structure and Methods, Human Genome Initiative and DNA Recombination. 1 (1), 157-181 (1990).
  20. Ariyoshi, M., Vassylyev, D. G., Iwasaki, H., Nakamura, H., Shinagawa, H., Morikawa, K. Atomic structure of the RuvC resolvase: A holliday junction-specific endonuclease from E. coli. Cell. 78 (6), 1063-1072 (1994).
  21. Eichman, B. F., Vargason, J. M., Mooers, B. H., Ho, P. S. The Holliday junction in an inverted repeat DNA sequence: sequence effects on the structure of four-way junctions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (8), 3971-3976 (2000).
  22. Stahl, E., Martin, T. G., Praetorius, F., Dietz, H. Facile and scalable preparation of pure and dense DNA origami solutions. Angewandte Chemie: International Edition. 53 (47), 12735-12740 (2014).
  23. de Gennes, P. G. Reptation of a polymer chain in the presence of fixed obstacles. The Journal of Chemical Physics. 55 (2), 572-579 (1971).
  24. Slater, G. W., Noolandi, J. New biased reptation model for charged polymers. Physical Review Letters. 55 (15), 1579 (1985).
  25. Lilley, D. M. J. Analysis of branched nucleic acid structure using comparative gel electrophoresis. Quarterly Reviews of Biophysics. 41 (1), 1-39 (2008).
  26. Pfreundschuh, M., Martinez-Martin, D., Mulvihill, E., Wegmann, S., Muller, D. J. Multiparametric high-resolution imaging of native proteins by force-distance curve-based AFM. Nature Protocols. 9 (5), 1113-1130 (2014).
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Citer Cet Article
Guo, X., Wang, X., Xiao, S. Stable DNA Motifs, 1D and 2D Nanostructures Constructed from Small Circular DNA Molecules. J. Vis. Exp. (146), e58744, doi:10.3791/58744 (2019).

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