Summary

प्राथमिक संस्कृतिक माउस में ऑक्सीजन की खपत दर का विश्लेषण एक Extracellular फ्लक्स विश्लेषक का उपयोग कर नवजात Cardiomyocytes

Published: February 13, 2019
doi:

Summary

इस प्रोटोकॉल का लक्ष्य कैसे विभिंन कारकों दिल में ऑक्सीजन की खपत को बदल सकते है की जांच करने के लिए एक मॉडल प्रणाली के रूप में माउस नवजात cardiomyocytes का उपयोग करने के लिए वर्णन है ।

Abstract

Mitochondria और ऑक्सीडेटिव चयापचय हृदय की मांसपेशी समारोह को बनाए रखने के लिए महत्वपूर्ण हैं । अनुसंधान से पता चला है कि mitochondrial शिथिलता हृदय विफलता में पाया बिगड़ा हृदय समारोह के लिए एक महत्वपूर्ण योगदान कारक है । इसके विपरीत, दोषपूर्ण mitochondrial समारोह बहाल लाभकारी प्रभाव हो सकता है दिल में असफल हृदय समारोह में सुधार होगा । इसलिए, विनियामक तंत्र का अध्ययन और mitochondrial समारोह के लिए उपंयास नियामकों की पहचान अंतर्दृष्टि जो हृदय रोग के इलाज के लिए नए चिकित्सीय लक्ष्यों को विकसित किया जा सकता है प्रदान कर सकता है । यहां, कार्डिएक myocyte mitochondrial श्वसन एक अद्वितीय कोशिका संस्कृति प्रणाली का उपयोग कर विश्लेषण किया है । सबसे पहले, एक प्रोटोकॉल को तेजी से अलग और संस्कृति उच्च व्यवहार्यता नवजात माउस cardiomyocytes को अनुकूलित किया गया है । फिर, एक ९६-अच्छी तरह से प्रारूप extracellular फ्लक्स विश्लेषक इन cardiomyocytes की ऑक्सीजन की खपत दर का आकलन करने के लिए प्रयोग किया जाता है । इस प्रोटोकॉल के लिए, हम बोने की स्थिति को अनुकूलित और दिखा दिया है कि नवजात माउस cardiomyocytes ऑक्सीजन की खपत दर आसानी से एक extracellular फ्लक्स विश्लेषक में मूल्यांकन किया जा सकता है । अंत में, हम ध्यान दें कि हमारे प्रोटोकॉल एक बड़ा संस्कृति आकार और अंय अध्ययनों के लिए लागू किया जा सकता है, ऐसे intracellular संकेतन और सिकुड़ा समारोह विश्लेषण के रूप में ।

Introduction

एक सतत कार्डियक सिकुड़ा समारोह को बनाए रखने के लिए, cardiomyocytes को मुख्य रूप से एटीपी1के रूप में सेलुलर ऊर्जा की एक निरंतर आपूर्ति बनाए रखना चाहिए । दिल में, एटीपी के लगभग ९५% mitochondria द्वारा उत्पंन होता है, मुख्य रूप से ऑक्सीडेटिव फास्फारिलीकरण के माध्यम से, दिखा रहा है कि mitochondria कार्डियक फंक्शन2,3में एक महत्वपूर्ण ऊर्जावान भूमिका निभाते हैं । इस धारणा का समर्थन है कि mitochondrial समारोह के dysregulation cardiomyopathy और दिल की विफलता के लिए नेतृत्व कर सकते है4,5। इसके विपरीत, mitochondrial समारोह बहाल करने के लिए असफल दिल6,7के कार्डियक समारोह में सुधार दिखाया गया है । इसलिए, mitochondrial के तंत्र का अध्ययन और cardiomyocytes में mitochondrial समारोह के उपंयास नियामकों की पहचान न केवल हृदय ऊर्जा उत्पादन के यंत्रवत अंतर्दृष्टि प्रकट होगा, लेकिन यह भी अंतर्दृष्टि है कि नेतृत्व करेंगे प्रदान कर सकता है हृदय रोगों के उपचार के लिए नए चिकित्सीय लक्ष्यों के विकास के लिए6,8.

पूरे दिल की तुलना में, जो myocytes और गैर myocytes9का एक मिश्रण होता है, cardiomyocyte संस्कृतियों अत्यंत शुद्ध कर रहे हैं, गैर के ंयूनतम संदूषण के साथ दिल से myocytes, जैसे fibroblasts और endothelial10कोशिकाओं । इसके अलावा, नवजात पिल्ले से अलग cardiomyocytes, वयस्क दिल10,11से अलग कोशिकाओं की तुलना में समय की एक छोटी राशि में कोशिकाओं की एक बड़ी संख्या संवर्धन सक्षम बनाता है । सबसे महत्वपूर्ण, प्राथमिक संस्कृति वयस्क माउस cardiomyocytes लघु अस्तित्व समय है (जैसे 24 घंटे) और लंबे समय अंक de-अंतर पर । नवजात माउस cardiomyocytes जीवित है और संस्कृति में 7 दिनों के ऊपर के लिए हेरफेर किया जा सकता है, उंहें दवा यौगिकों और mitochondria के cardiomyocytes10में समारोह पर जीन हेरफेर के प्रभाव के परीक्षण के लिए आदर्श बना । बेशक, वहां वयस्क और नवजात कोशिकाओं के बीच महत्वपूर्ण जैविक मतभेद हैं, लेकिन अब नवजात कोशिकाओं की संस्कृति के लिए उपलब्ध अवधि उंहें अध्ययन के कई विभिंन प्रकार के लिए उपयुक्त बनाता है, mitochondrial समारोह के उन सहित ।

तारीख करने के लिए, प्राथमिक कल्चरल नवजात माउस और चूहे cardiomyocytes हृदय में12,13अध्ययन करने के लिए मॉडल के रूप में इस्तेमाल किया गया है । हाल के वर्षों में, अध्ययन एक extracellular फ्लक्स विश्लेषक के लिए ऑक्सीजन की खपत दर (ओसीआर) को मापने और माउस और चूहे नवजात cardiomyocytes14,15में ऑक्सीडेटिव क्षमता का मूल्यांकन करते थे । जबकि चूहों की तुलना में, माउस नवजात cardiomyocytes की कोशिका व्यवहार्यता कम है और अधिक परिवर्तनशीलता16है । इसके अलावा, आनुवंशिक रूप से इंजीनियर माउस मॉडलों से कोशिकाओं का अध्ययन करने की क्षमता माउस सेल मॉडल बहुत महत्वपूर्ण बनाता है । यह देखते हुए कि ओसीआर अध्ययन सेल संख्या और बोने की सघनता, एक reproducible के विकास के प्रति संवेदनशील हैं, विश्वसनीय, और सरल प्रोटोकॉल अनुरूप कोशिका उपज और व्यवहार्यता प्राप्त करने के लिए आवश्यक है ।

यहां, हम रिपोर्ट एक अनुकूलित प्रोटोकॉल है कि विकसित किया गया है जो एक ९६-अच्छी तरह से ओसीआर विश्लेषण के लिए प्रारूप extracellular फ्लक्स विश्लेषक के साथ साथ संस्कृतिक माउस नवजात cardiomyocytes का उपयोग करता है । इस प्रोटोकॉल बहुत परख के reproducibility बढ़ जाती है । इसके अलावा, प्रोटोकॉल न केवल एक उपंयास और ओसीआर विश्लेषण के लिए reproducible विधि प्रदान करता है, लेकिन यह भी अंय प्रयोगात्मक प्रयोजनों के लिए एक बड़ा आकार संस्कृति के लिए अनुकूलित किया जा सकता है, जैसे कि जो myofibrillar कार्यों और intracellular अध्ययन की जरूरत हो सकती है संकेत रास्ते ।

विशेष रूप से, इस प्रोटोकॉल एक ९६-अच्छी तरह से सेल संस्कृति की थाली में अलगाव और नवजात माउस cardiomyocytes की संस्कृति के लिए एक दिन की प्रक्रिया का वर्णन । इसके अलावा, यह एक extracellular फ्लक्स विश्लेषक का उपयोग ऑक्सीजन की खपत को मापने के लिए प्रक्रिया का वर्णन । उपयोग किए गए सभी समाधान बाँझ या बाँझ फ़िल्टर कर रहे हैं. सभी उपकरण ७५% इथेनॉल द्वारा निष्फल रहे हैं । हम प्रक्रिया के विभिंन भागों के लिए सामग्री की एक मेज प्रदान करते हैं । संवर्धन cardiomyocytes के लिए, सभी प्रक्रियाओं और कदम एक मानक सेल संस्कृति हुड में प्रदर्शन कर रहे हैं । इस प्रोटोकॉल एक कूड़े से नवजात माउस दिल के अलगाव के लिए विकसित की है (लगभग 8-10 पिल्ले) । हालांकि, प्रोटोकॉल भी कई कूड़े से cardiomyocytes अलग करने के लिए अनुकूलित किया जा सकता है ।

Protocol

नवजात चूहों के साथ काम करने के लिए, पशु देखभाल कार्यक्रमों द्वारा उल्लिखित स्थानीय विश्वविद्यालय/संस्थान के दिशा निर्देशों का संदर्भ लें और एक के संस्थागत और अन्य उपयुक्त नियमों का पालन करें । इस प्र?…

Representative Results

वर्णित प्रोटोकॉल का उपयोग करके, दिल 0 नवजात पिल्ले दिन से अलग थे । 5 x 105 कोशिकाओं/पिल्ला प्राप्त किया गया था, और cardiomyocytes 10 x 10 3, 20 x103, या 30 x 103 कोशिकाओं के घनत्व में वरीयता दी गई/खैर, ९६ मे?…

Discussion

इस अध्ययन में, हम अलग और संवर्धन माउस नवजात cardiomyocytes के लिए एक सरल प्रोटोकॉल की स्थापना की है । इन cardiomyocytes का उपयोग करके, हम भी एक extracellular फ्लक्स विश्लेषक प्रणाली का उपयोग करके ऑक्सीजन की खपत दर को मापने के लिए शर?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम सभी रॉस लैब और मर्फी लैब के सदस्यों को धंयवाद देना चाहूंगा । यह काम अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन (14SDG17790005) द्वारा Y.C. NIH (HL115933, HL127806) और VA मेरिट (BX003260) को R.S.R. करने के लिए समर्थित है

Materials

Antimycin A SIGMA A8674 Inhibits complex III of the mitochondria
Cell strainer 100 μm pores FALCON 352360 To capture undigested tissue
Collagenase type II Worthington LS004176 To make collagenase digestion solution
D-Glucose SIGMA 75351 To make mitochodnrial stress test medium
DMEM high glucose Life technologies 11965-092 To make cell culture medium
DMEM without NaHCO3, Glucose, pyruvate, glumanine, and Hepes SIGMA D5030-10X1L To make mitochodnrial stress test medium
FCCP (Carbonyl cyanide 4-(trifluoromethoxy)phenylhydrazone) SIGMA C2920 Uncouples mitochondrial respiration
Fetal bovine serum (FBS) Life technologies 26140-079 To make cell culture medium
Fibronectin from bovine plasma SIGMA F1141-5MG To make coating solution for tissue culture plates
Fine scissors Fine Sciences Tools 14060-10 For dissection of hearts
Gelatin from porcine skin SIGMA G-1890 To make coating solution for tissue culture plates
HBSS (Hank's balnced salt solution,without Ca2+, Mg2+) Cellgro 21-022-CV To wash hearts and make pre-digestion and collagnase digestion solution
HEPES (1M) Fisher scientific 15630080 To make mitochodnrial stress test medium
Horse serum Life technologies 26050-088 To make cell culture medium
L-Glutamine SIGMA G-3126 To make mitochodnrial stress test medium
M-199 Cellgro 10-060-CV To make cell culture medium
Moria spoon Fisher scientific NC9190356 To wash hearts 
Oligomycin SIGMA 75351-5MG Inhibits mitochondrial ATP synthase
RIPA buffer Fisher scientific 89900 To lyse the cells for protein assay
Rotenone SIGMA R8875 Inhibits complex I of the mitochondria
Seahorse XFe96 Extracellular Flux
Analyzer
Agilent Device used to analyze oxygen consumption rate
Seahorse XFe96 FluxPak Agilent 102601-100 Package of flux analyzer culture plates, sensor cartridges, and calibrant
Sodium pyruvate SIGMA P2256 To make mitochodnrial stress test medium
Straight scissors Fine Sciences Tools 91401-12 For dissection of hearts
Syringe filter 0.2 μm size For sterile filtration of digestion medium
Trypsin USB Corporation 22715 25GM To make pre-digestion solution

References

  1. Stanley, W. C., Recchia, F. A., Lopaschuk, G. D. Myocardial substrate metabolism in the normal and failing heart. Physiological Reviews. 85 (3), 1093-1129 (2005).
  2. Wang, K., et al. Mitochondria regulate cardiac contraction through ATP-dependent and independent mechanisms. Free Radical Research. , 1-10 (2018).
  3. Kolwicz, S. C., Purohit, S., Tian, R. Cardiac metabolism and its interactions with contraction, growth, and survival of cardiomyocytes. Circulation Research. 113 (5), 603-616 (2013).
  4. Rosca, M. G., Hoppel, C. L. Mitochondrial dysfunction in heart failure. Heart Failure Reviews. 18 (5), 607-622 (2013).
  5. Wai, T., et al. Imbalanced OPA1 processing and mitochondrial fragmentation cause heart failure in mice. Science. 350 (6265), aad0116 (2015).
  6. Bayeva, M., Gheorghiade, M., Ardehali, H. Mitochondria as a therapeutic target in heart failure. Journal of American College Cardiololgy. 61 (6), 599-610 (2013).
  7. Camara, A. K., Bienengraeber, M., Stowe, D. F. Mitochondrial approaches to protect against cardiac ischemia and reperfusion injury. Frontiers in Physiology. 2, 13 (2011).
  8. Brown, D. A., et al. Expert consensus document: Mitochondrial function as a therapeutic target in heart failure. Nature Reviews Cardiology. 14 (4), 238-250 (2017).
  9. Zhou, P., Pu, W. T. Recounting Cardiac Cellular Composition. Circulation Research. 118 (3), 368-370 (2016).
  10. Parameswaran, S., Kumar, S., Verma, R. S., Sharma, R. K. Cardiomyocyte culture – an update on the in vitro cardiovascular model and future challenges. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 91 (12), 985-998 (2013).
  11. Judd, J., Lovas, J., Huang, G. N. Isolation, Culture and Transduction of Adult Mouse Cardiomyocytes. Journal of Vissualized Experiments. 10 (114), (2016).
  12. Gibbs, C. L., Loiselle, D. S. Cardiac basal metabolism. Japanese Journal of Physiology. 51 (4), 399-426 (2001).
  13. Mdaki, K. S., Larsen, T. D., Weaver, L. J., Baack, M. L. Age Related Bioenergetics Profiles in Isolated Rat Cardiomyocytes Using Extracellular Flux Analyses. PLoS One. 11 (2), e0149002 (2016).
  14. Neary, M. T., et al. Hypoxia signaling controls postnatal changes in cardiac mitochondrial morphology and function. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 74, 340-352 (2014).
  15. Hill, B. G., Dranka, B. P., Zou, L., Chatham, J. C., Darley-Usmar, V. M. Importance of the bioenergetic reserve capacity in response to cardiomyocyte stress induced by 4-hydroxynonenal. Biochemical Journal. 424 (1), 99-107 (2009).
  16. Sreejit, P., Kumar, S., Verma, R. S. An improved protocol for primary culture of cardiomyocyte from neonatal mice. In vitro Cellular & Developmental Biology – Animal. 44 (3-4), 45-50 (2008).
  17. . AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2013 Edition Available from: https://www.avma.org/KB/Policies/Documents/euthanasia.pdf (2013)
  18. Manso, A. M., et al. Talin1 has unique expression versus talin 2 in the heart and modifies the hypertrophic response to pressure overload. Journal of Biological Chemistry. 288 (6), 4252-4264 (2013).
  19. Wang, G. W., Kang, Y. J. Inhibition of doxorubicin toxicity in cultured neonatal mouse cardiomyocytes with elevated metallothionein levels. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 288 (3), 938-944 (1999).
  20. Divakaruni, A. S., et al. Thiazolidinediones are acute, specific inhibitors of the mitochondrial pyruvate carrier. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (14), 5422-5427 (2013).
  21. Rogers, G. W., et al. High throughput microplate respiratory measurements using minimal quantities of isolated mitochondria. PLoS One. 6 (7), e21746 (2011).
  22. Sansbury, B. E., Jones, S. P., Riggs, D. W., Darley-Usmar, V. M., Hill, B. G. Bioenergetic function in cardiovascular cells: the importance of the reserve capacity and its biological regulation. Chemico-Biological Interactions. 191 (1-3), 288-295 (2011).
  23. Sharp, W. W., et al. Dynamin-related protein 1 (Drp1)-mediated diastolic dysfunction in myocardial ischemia-reperfusion injury: therapeutic benefits of Drp1 inhibition to reduce mitochondrial fission. FASEB Journal. 28 (1), 316-326 (2014).
  24. Tigchelaar, W., et al. Hypertrophy induced KIF5B controls mitochondrial localization and function in neonatal rat cardiomyocytes. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 97, 70-81 (2016).
  25. Graham, B. H., et al. A mouse model for mitochondrial myopathy and cardiomyopathy resulting from a deficiency in the heart/muscle isoform of the adenine nucleotide translocator. Nature Genetics. 16 (3), 226-234 (1997).
  26. Zhao, Y. Y., et al. Defects in caveolin-1 cause dilated cardiomyopathy and pulmonary hypertension in knockout mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (17), 11375-11380 (2002).
  27. Vander Heiden, M. G., et al. Growth factors can influence cell growth and survival through effects on glucose metabolism. Molecular and Cellular Biology. 21 (17), 5899-5912 (2001).
  28. Detillieux, K. A., Sheikh, F., Kardami, E., Cattini, P. A. Biological activities of fibroblast growth factor-2 in the adult myocardium. Cardiovascular Research. 57 (1), 8-19 (2003).
  29. Wang, R., et al. The acute extracellular flux (XF) assay to assess compound effects on mitochondrial function. Journal of Biomolecular Screening. 20 (3), 422-429 (2015).
  30. Dai, D. F., et al. Age-dependent cardiomyopathy in mitochondrial mutator mice is attenuated by overexpression of catalase targeted to mitochondria. Aging Cell. 9 (4), 536-544 (2010).
  31. Ritterhoff, J., Tian, R. Metabolism in cardiomyopathy: every substrate matters. Cardiovascular Research. 113 (4), 411-421 (2017).
  32. Uosaki, H., Taguchi, Y. H. Comparative Gene Expression Analysis of Mouse and Human Cardiac Maturation. Genomics, Proteomics & Bioinformatics. 14 (4), 207-215 (2016).
check_url/fr/59052?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Tachibana, S., Chen, C., Zhang, O. R., Schurr, S. V., Hill, C., Li, R., Manso, A. M., Zhang, J., Andreyev, A., Murphy, A. N., Ross, R. S., Cho, Y. Analyzing Oxygen Consumption Rate in Primary Cultured Mouse Neonatal Cardiomyocytes Using an Extracellular Flux Analyzer. J. Vis. Exp. (144), e59052, doi:10.3791/59052 (2019).

View Video