Summary

Microelectrode Impalement metode for å Record membran potensial fra en Kanylert Middle cerebral arterie

Published: July 02, 2019
doi:

Summary

Hovedmålet med denne artikkelen er å gi detaljer om hvordan å registrere membran potensial (Vm) fra midten cerebral arterien ved hjelp av microelectrode impalement metoden. Den kanylert midten cerebral arterien er equilibrated å få myogenic tone, og fartøyet veggen er Impaled ved hjelp av høy motstand microelectrodes.

Abstract

Membran potensial (Vm) av vaskulære glatte muskelceller bestemmer fartøyets tone og dermed blodstrømmen til et organ. Endringer i uttrykket og funksjon av ion kanaler og electrogenic pumper som regulerer Vm i sykdomstilstander potensielt kan endre vm, vaskulær tone, og blodstrøm. Således, en grunnleggende forståelse av elektrofysiologi og de metoder som er nødvendige for å nøyaktig registrere Vm i sunne og syke stater er avgjørende. Denne metoden vil tillate modulerende Vm bruke ulike farmakologiske midler for å gjenopprette Vm. Selv om det er flere metoder, hver med sine fordeler og ulemper, gir denne artikkelen protokoller for å spille inn Vm fra kanylert motstand fartøy som midten cerebral arterien ved hjelp av microelectrode impalement metoden. Middle cerebral arterier får lov til å få myogenic tone i en myograph kammer, og fartøyet veggen er Impaled ved hjelp av høy motstand microelectrodes. Vm signalet samles inn gjennom en electrometer, digitalisert og analysert. Denne metoden gir en nøyaktig lesning av Vm av en fartøy vegg uten å skade cellene og uten å endre membran motstanden.

Introduction

Membranen potensialet (Vm) av en celle refererer til den relative forskjellen av ioniske lade over plasma membranen og den relative permeabilitet av membranen til disse ioner. Vm er generert av differensial fordeling av ioner og vedlikeholdes av ion kanaler og pumper. Ion-kanaler som K+, na+og CL bidrar vesentlig til hvile Vm. Vaskulære glatte muskelceller (VSMCs) uttrykke mer enn fire forskjellige typer av K+ kanaler1, to typer spenning-gated ca2 + kanaler (VGCC)2, mer enn to typer CL-kanaler 3, 4 andre priser , 5, butikk-opererte ca2 + kanaler6, strekk-aktivert spesifiserer kanaler7,8, og electrogenic natrium-kalium ATPase pumper9 i sine plasma membraner, som alle kan være involvert i regulering av Vm.

Vm av VSMCs avhenger av lumen trykk. I beholdere uten trykk, varierer Vm fra-50 til-65 mv, men i trykk arterie segmenter, Vm spenner fra-37 til-47 mv10. Heving av intravaskulær trykk forårsaker VSMCs til depolarize11, reduserer TERSKELEN for VGCC åpning, og øker kalsium tilstrømningen bidra til utvikling av myogenic tone12. Tvert imot, i passive eller ikke-trykkbeholdere, membran hyperpolarization, på grunn av høy K+ kanal aktivitet, vil hindre VGCC fra å åpne, noe som resulterer i begrenset kalsium oppføring og en nedgang i intracellulære kalsium, bidrar til mindre vaskulær tone13. Dermed, Vm på grunn av endringer i lumen trykk ser ut til å spille en viktig rolle i vaskulær tone utvikling, og både VGCC og K+ kanaler spille en avgjørende rolle i regulering av Vm.

Vm varierer mellom fartøy type og art. Vm er-54 ± 1,3 mv i marsvin overlegen chrezbryzheechno arteriell strips14,-45 ± 1 mv i rotte middle cerebral arterier ved 60 mmHg lumen trykk12, og-35 ± 1 mV i rotte parenkymatøs arterier på 40 mmHg lumen trykk15. Den hviler Vm registrert i unstretched rotte lymfatisk muskel er-48 ± 2 mv16. Vm av cerebral VSMCs er mer negativ enn i perifere arterier. Til sammenligning, feline midt cerebral arterier ble rapportert å ha en Vm av ca-70 mv, mens chrezbryzheechno og koronar arterier ble rapportert å ha-49 og-58 mv, henholdsvis17,18. Forskjeller i Vm på tvers av vaskulær senger kan gjenspeile forskjellene i uttrykket og funksjon av ion kanaler og electrogenic natrium-kalium pumper.

Økninger og reduksjoner i Vm er referert til som membran depolarization og hyperpolarization, henholdsvis. Disse endringene i Vm spiller en sentral rolle i mange fysiologiske prosesser, inkludert ion-Channel gating, celle signalering, muskel sammentrekning, og handling potensiell forplantning. På et fast trykk, mange endogene og syntetiske vasodilator forbindelser som aktiverer K+ kanaler forårsake membran hyperpolarization, noe som resulterer i vasodilatasjon1,13. Omvendt, vedvarende membran depolarization er viktig i Agonistiske-indusert eller reseptor-mediert vasokonstriksjon19. Vm er en kritisk variabel som ikke bare regulerer ca2 + tilstrømningen gjennom VGCC13 , men også påvirker utgivelsen av ca2 + fra interne butikker20,21 og ca2 +-følsomhet for kontraktile apparatet22.

Mens det er flere metoder for å spille inn Vm fra ulike celletyper, synes data innsamlet fra microelectrode impalement metode for kanylert fartøy å være mer fysiologiske enn data innhentet fra isolerte VSMCs. Når innspilt fra isolerte VSMC ved hjelp av gjeldende klemme metoder, Vm er sett på som spontan transient Hyperpolarizations i VSMCs24. Isolerte VSMCs er ikke i syncytium, og endringene i serie motstanden kan bidra til den oscillasjon atferden til Vm. På den annen side, oscillasjon atferd er ikke observert når Vm er registrert fra intakt fartøy, sannsynligvis på grunn av celle-celle kontakt mellom VSMCs som er i syncytium i arterien og er summert hele fartøyet fører til en stabil Vm 24. således er måling av Vm fra trykkbeholdere som bruker standard microelectrode impalement teknikk relativt nær de fysiologiske forholdene.

Innspilling Vm fra kanylert fartøy kunne gi viktig informasjon, siden Vm av VSMCs som er i syncytium er en av de viktigste faktorer som er avgjørende for vaskulær tone og blodstrøm, og modulering av Vm kan gi en måte å dilate eller constrict blodkar. Derfor er det viktig å forstå metodikken involvert i innspillingen Vm. Denne artikkelen beskriver intracellulære innspilling av Vm fra kanylert middels cerebral arterier (MCAs) ved hjelp av en microelectrode impalement metode. Denne protokollen beskriver hvordan du klargjør MCAs, microelectrodes, konfigurerer electrometer og utfører impalement-metoden for å registrere Vm. Også representative data, vanlige problemer som oppstod ved bruk av denne metoden og potensielle problemer, diskuteres.

Protocol

Det mannlig rotter var huset inne det dyr bekymre letter for UMMC, hvilke er anerkjent av foreningen for vurderingen og akkreditering av laboratorium dyr bekymre (AAALAC). Dyr hadde fri tilgang til mat og vann gjennom hele studien. Dyr ble opprettholdt i et kontrollert miljø med temperatur ved 24 ± 2 ° c, luftfuktighet på 60-80% og 12 h lys/mørke sykluser. Alle protokoller ble godkjent av Animal Care og use Committee of UMMC. 1. utarbeidelse av utstyr Plasser en dual Channel dif…

Representative Results

Den presenterte metoden kan være pålitelig brukes til å spille inn Vm i kanylert fartøy. En kort prosedyre som beskriver hvordan du isolerer MCA fra hjernen er presentert i figur 1a. Etter å skille hjernen fra skallen, var MCA dissekert ut og plassert i en Petri parabolen inneholder lav kalsium PSS. En del av bindevev som var festet var også dissekert sammen med MCA bruke våren saks og tang for å hindre skade på MCA under isolasjon. Forsik…

Discussion

Denne artikkelen gir de nødvendige trinnene for hvordan du bruker en skarp microelectrode impalement metode for å spille inn Vm fra en kanylert fartøy forberedelse. Denne metoden er mye brukt, og tilbyr høy kvalitet, konsekvent opptak av Vm som svarer på et bredt spekter av eksperimentelle spørsmål.

Noen kritiske hensyn og feilsøkingstrinn er beskrevet her for å sikre suksess av metoden. Kvaliteten på microelectrode (dens skarphet og motstand) og mobilnettet pro…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet delvis av tilskudd fra intramural støtte forskningsprogram (IRSP) fra UMMC, AHA forsker Development Grant (13SDG14000006) tildelt Mallikarjuna R. Pabbidi.

Materials

Dissection instruments
Aneshetic Vaporiser Parkland scientific V3000PK
Dissection microscope Nikon Instruments Inc., NY Eclipse Ti-S
Kleine Guillotine Type 7575 Harvard Apparatus, MA 73-198
Littauer Bone Cutter Fine science tools 16152-15
Moria MC40 Ultra Fine Forceps Fine science tools 11370-40
Surgical scissors Sharp-Blunt Fine science tools 14008-14
Suture Harvard Apparatus 72-3287
Vannas Spring Scissors Fine science tools 15018-10
Electrophysiology Instruments
Charge-coupled device camera Qimaging, , BC Retiga 2000R
Differential electrometer amplifier WPI FD223A
In-line pressure transducer Harvard Apparatus, MA MA1 72-4496
Micromanipulator Thor labs PCS-5400
Microelectrodes Warner Instruments LLC, CT G200-6,
Micro Fil (Microfiber syringe) WPI MF28G67-5
Microelectrode holder WPI MEH1SF
Myograph Living Systems Instrumentation, VT CH-1-SH
Puller Sutter Instrument, San Rafael, CA P-97
Vibration-free table TMC 3435-14
Softwares
Clampex 10 Molecular devices
p Clamp 10 Molecular devices
Imaging software Nikon, NY NIS-elements
Chemicals
NaCl Sigma S7653
KCl Sigma P4504
MgSO4 Sigma M7506
CaCl2 Sigma C3881
HEPES Sigma H7006
Glucose Sigma G7021
NaH2PO4 Sigma S0751
NaHCO3 Sigma S5761

References

  1. Nelson, M. T., Quayle, J. M. Physiological roles and properties of potassium channels in arterial smooth muscle. American Journal of Physiology. 268, C799-C822 (1995).
  2. Hughes, A. D. Calcium channels in vascular smooth muscle cells. Journal of Vascular Research. 32 (6), 353-370 (1995).
  3. Large, W. A., Wang, Q. Characteristics and physiological role of the Ca(2+)-activated Cl- conductance in smooth muscle. American Journal of Physiology. 271 (2 Pt 1), C435-C454 (1996).
  4. Nelson, M. T., Conway, M. A., Knot, H. J., Brayden, J. E. Chloride channel blockers inhibit myogenic tone in rat cerebral arteries. Journal of Physiology. 502 (Pt 2), 259-264 (1997).
  5. Yamazaki, J., et al. Functional and molecular expression of volume-regulated chloride channels in canine vascular smooth muscle cells. Journal of Physiology. 507 (Pt 3), 729-736 (1998).
  6. Gibson, A., McFadzean, I., Wallace, P., Wayman, C. P. Capacitative Ca2+ entry and the regulation of smooth muscle tone. Trends in Pharmacol Sciences. 19 (7), 266-269 (1998).
  7. Davis, M. J., Donovitz, J. A., Hood, J. D. Stretch-activated single-channel and whole cell currents in vascular smooth muscle cells. American Journal of Physiology. 262 (4 Pt 1), C1083-C1088 (1992).
  8. Setoguchi, M., Ohya, Y., Abe, I., Fujishima, M. Stretch-activated whole-cell currents in smooth muscle cells from mesenteric resistance artery of guinea-pig. Journal of Physiology. 501 (Pt 2), 343-353 (1997).
  9. Shelly, D. A., et al. Na(+) pump alpha 2-isoform specifically couples to contractility in vascular smooth muscle: evidence from gene-targeted neonatal mice. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 286 (4), C813-C820 (2004).
  10. Coca, A., Garay, R. . Ionic Transport in Hypertension New Perspectives. , (1993).
  11. Harder, D. R. Pressure-dependent membrane depolarization in cat middle cerebral artery. Circulation Research. 55 (2), 197-202 (1984).
  12. Knot, H. J., Nelson, M. T. Regulation of arterial diameter and wall [Ca2+] in cerebral arteries of rat by membrane potential and intravascular pressure. Journal of Physiology. 508 (Pt 1), 199-209 (1998).
  13. Nelson, M. T., Patlak, J. B., Worley, J. F., Standen, N. B. Calcium channels, potassium channels, and voltage dependence of arterial smooth muscle tone. American Journal of Physiology. 259, C3-C18 (1990).
  14. Harder, D. R., Sperelakis, N. Action potentials induced in guinea pig arterial smooth muscle by tetraethylammonium. American Journal of Physiology. 237 (1), C75-C80 (1979).
  15. Nystoriak, M. A., et al. Fundamental increase in pressure-dependent constriction of brain parenchymal arterioles from subarachnoid hemorrhage model rats due to membrane depolarization. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 300 (3), H803-H812 (2011).
  16. Yvonder Weid, P., Lee, S., Imtiaz, M. S., Zawieja, D. C., Davis, M. J. Electrophysiological properties of rat mesenteric lymphatic vessels and their regulation by stretch. Lymphatic Research and Biology. 12 (2), 66-75 (2014).
  17. Harder, D. R. Comparison of electrical properties of middle cerebral and mesenteric artery in cat. American Journal of Physiology. 239 (1), C23-C26 (1980).
  18. Harder, D. R. Heterogeneity of membrane properties in vascular muscle cells from various vascular beds. Federation Proceedings. 42 (2), 253-256 (1983).
  19. Cogolludo, A., et al. Serotonin inhibits voltage-gated K+ currents in pulmonary artery smooth muscle cells: role of 5-HT2A receptors, caveolin-1, and KV1.5 channel internalization. Circulation Research. 98 (7), 931-938 (2006).
  20. Ganitkevich, V., Isenberg, G. Membrane potential modulates inositol 1,4,5-trisphosphate-mediated Ca2+ transients in guinea-pig coronary myocytes. Journal of Physiology. 470, 35-44 (1993).
  21. Yamagishi, T., Yanagisawa, T., Taira, N. K+ channel openers, cromakalim and Ki4032, inhibit agonist-induced Ca2+ release in canine coronary artery. Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 346 (6), 691-700 (1992).
  22. Okada, Y., Yanagisawa, T., Taira, N. BRL 38227 (levcromakalim)-induced hyperpolarization reduces the sensitivity to Ca2+ of contractile elements in caninse coronary artery. Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 347 (4), 438-444 (1993).
  23. Xia, J., Little, T. L., Duling, B. R. Cellular pathways of the conducted electrical response in arterioles of hamster cheek pouch in vitro. American Journal of Physiology. 269 (6 Pt 2), H2031-H2038 (1995).
  24. Jaggar, J. H., Porter, V. A., Lederer, W. J., Nelson, M. T. Calcium sparks in smooth muscle. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 278 (2), C235-C256 (2000).
check_url/fr/59072?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Reed, J. T., Sontakke, S. P., Pabbidi, M. R. Microelectrode Impalement Method to Record Membrane Potential from a Cannulated Middle Cerebral Artery. J. Vis. Exp. (149), e59072, doi:10.3791/59072 (2019).

View Video