Hovedmålet med denne artikkelen er å gi detaljer om hvordan å registrere membran potensial (Vm) fra midten cerebral arterien ved hjelp av microelectrode impalement metoden. Den kanylert midten cerebral arterien er equilibrated å få myogenic tone, og fartøyet veggen er Impaled ved hjelp av høy motstand microelectrodes.
Membran potensial (Vm) av vaskulære glatte muskelceller bestemmer fartøyets tone og dermed blodstrømmen til et organ. Endringer i uttrykket og funksjon av ion kanaler og electrogenic pumper som regulerer Vm i sykdomstilstander potensielt kan endre vm, vaskulær tone, og blodstrøm. Således, en grunnleggende forståelse av elektrofysiologi og de metoder som er nødvendige for å nøyaktig registrere Vm i sunne og syke stater er avgjørende. Denne metoden vil tillate modulerende Vm bruke ulike farmakologiske midler for å gjenopprette Vm. Selv om det er flere metoder, hver med sine fordeler og ulemper, gir denne artikkelen protokoller for å spille inn Vm fra kanylert motstand fartøy som midten cerebral arterien ved hjelp av microelectrode impalement metoden. Middle cerebral arterier får lov til å få myogenic tone i en myograph kammer, og fartøyet veggen er Impaled ved hjelp av høy motstand microelectrodes. Vm signalet samles inn gjennom en electrometer, digitalisert og analysert. Denne metoden gir en nøyaktig lesning av Vm av en fartøy vegg uten å skade cellene og uten å endre membran motstanden.
Membranen potensialet (Vm) av en celle refererer til den relative forskjellen av ioniske lade over plasma membranen og den relative permeabilitet av membranen til disse ioner. Vm er generert av differensial fordeling av ioner og vedlikeholdes av ion kanaler og pumper. Ion-kanaler som K+, na+og CL− bidrar vesentlig til hvile Vm. Vaskulære glatte muskelceller (VSMCs) uttrykke mer enn fire forskjellige typer av K+ kanaler1, to typer spenning-gated ca2 + kanaler (VGCC)2, mer enn to typer CL-kanaler 3, 4 andre priser , 5, butikk-opererte ca2 + kanaler6, strekk-aktivert spesifiserer kanaler7,8, og electrogenic natrium-kalium ATPase pumper9 i sine plasma membraner, som alle kan være involvert i regulering av Vm.
Vm av VSMCs avhenger av lumen trykk. I beholdere uten trykk, varierer Vm fra-50 til-65 mv, men i trykk arterie segmenter, Vm spenner fra-37 til-47 mv10. Heving av intravaskulær trykk forårsaker VSMCs til depolarize11, reduserer TERSKELEN for VGCC åpning, og øker kalsium tilstrømningen bidra til utvikling av myogenic tone12. Tvert imot, i passive eller ikke-trykkbeholdere, membran hyperpolarization, på grunn av høy K+ kanal aktivitet, vil hindre VGCC fra å åpne, noe som resulterer i begrenset kalsium oppføring og en nedgang i intracellulære kalsium, bidrar til mindre vaskulær tone13. Dermed, Vm på grunn av endringer i lumen trykk ser ut til å spille en viktig rolle i vaskulær tone utvikling, og både VGCC og K+ kanaler spille en avgjørende rolle i regulering av Vm.
Vm varierer mellom fartøy type og art. Vm er-54 ± 1,3 mv i marsvin overlegen chrezbryzheechno arteriell strips14,-45 ± 1 mv i rotte middle cerebral arterier ved 60 mmHg lumen trykk12, og-35 ± 1 mV i rotte parenkymatøs arterier på 40 mmHg lumen trykk15. Den hviler Vm registrert i unstretched rotte lymfatisk muskel er-48 ± 2 mv16. Vm av cerebral VSMCs er mer negativ enn i perifere arterier. Til sammenligning, feline midt cerebral arterier ble rapportert å ha en Vm av ca-70 mv, mens chrezbryzheechno og koronar arterier ble rapportert å ha-49 og-58 mv, henholdsvis17,18. Forskjeller i Vm på tvers av vaskulær senger kan gjenspeile forskjellene i uttrykket og funksjon av ion kanaler og electrogenic natrium-kalium pumper.
Økninger og reduksjoner i Vm er referert til som membran depolarization og hyperpolarization, henholdsvis. Disse endringene i Vm spiller en sentral rolle i mange fysiologiske prosesser, inkludert ion-Channel gating, celle signalering, muskel sammentrekning, og handling potensiell forplantning. På et fast trykk, mange endogene og syntetiske vasodilator forbindelser som aktiverer K+ kanaler forårsake membran hyperpolarization, noe som resulterer i vasodilatasjon1,13. Omvendt, vedvarende membran depolarization er viktig i Agonistiske-indusert eller reseptor-mediert vasokonstriksjon19. Vm er en kritisk variabel som ikke bare regulerer ca2 + tilstrømningen gjennom VGCC13 , men også påvirker utgivelsen av ca2 + fra interne butikker20,21 og ca2 +-følsomhet for kontraktile apparatet22.
Mens det er flere metoder for å spille inn Vm fra ulike celletyper, synes data innsamlet fra microelectrode impalement metode for kanylert fartøy å være mer fysiologiske enn data innhentet fra isolerte VSMCs. Når innspilt fra isolerte VSMC ved hjelp av gjeldende klemme metoder, Vm er sett på som spontan transient Hyperpolarizations i VSMCs24. Isolerte VSMCs er ikke i syncytium, og endringene i serie motstanden kan bidra til den oscillasjon atferden til Vm. På den annen side, oscillasjon atferd er ikke observert når Vm er registrert fra intakt fartøy, sannsynligvis på grunn av celle-celle kontakt mellom VSMCs som er i syncytium i arterien og er summert hele fartøyet fører til en stabil Vm 24. således er måling av Vm fra trykkbeholdere som bruker standard microelectrode impalement teknikk relativt nær de fysiologiske forholdene.
Innspilling Vm fra kanylert fartøy kunne gi viktig informasjon, siden Vm av VSMCs som er i syncytium er en av de viktigste faktorer som er avgjørende for vaskulær tone og blodstrøm, og modulering av Vm kan gi en måte å dilate eller constrict blodkar. Derfor er det viktig å forstå metodikken involvert i innspillingen Vm. Denne artikkelen beskriver intracellulære innspilling av Vm fra kanylert middels cerebral arterier (MCAs) ved hjelp av en microelectrode impalement metode. Denne protokollen beskriver hvordan du klargjør MCAs, microelectrodes, konfigurerer electrometer og utfører impalement-metoden for å registrere Vm. Også representative data, vanlige problemer som oppstod ved bruk av denne metoden og potensielle problemer, diskuteres.
Denne artikkelen gir de nødvendige trinnene for hvordan du bruker en skarp microelectrode impalement metode for å spille inn Vm fra en kanylert fartøy forberedelse. Denne metoden er mye brukt, og tilbyr høy kvalitet, konsekvent opptak av Vm som svarer på et bredt spekter av eksperimentelle spørsmål.
Noen kritiske hensyn og feilsøkingstrinn er beskrevet her for å sikre suksess av metoden. Kvaliteten på microelectrode (dens skarphet og motstand) og mobilnettet pro…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet delvis av tilskudd fra intramural støtte forskningsprogram (IRSP) fra UMMC, AHA forsker Development Grant (13SDG14000006) tildelt Mallikarjuna R. Pabbidi.
Dissection instruments | |||
Aneshetic Vaporiser | Parkland scientific | V3000PK | |
Dissection microscope | Nikon Instruments Inc., NY | Eclipse Ti-S | |
Kleine Guillotine Type 7575 | Harvard Apparatus, MA | 73-198 | |
Littauer Bone Cutter | Fine science tools | 16152-15 | |
Moria MC40 Ultra Fine Forceps | Fine science tools | 11370-40 | |
Surgical scissors Sharp-Blunt | Fine science tools | 14008-14 | |
Suture | Harvard Apparatus | 72-3287 | |
Vannas Spring Scissors | Fine science tools | 15018-10 | |
Electrophysiology Instruments | |||
Charge-coupled device camera | Qimaging, , BC | Retiga 2000R | |
Differential electrometer amplifier | WPI | FD223A | |
In-line pressure transducer | Harvard Apparatus, MA | MA1 72-4496 | |
Micromanipulator | Thor labs | PCS-5400 | |
Microelectrodes | Warner Instruments LLC, CT | G200-6, | |
Micro Fil (Microfiber syringe) | WPI | MF28G67-5 | |
Microelectrode holder | WPI | MEH1SF | |
Myograph | Living Systems Instrumentation, VT | CH-1-SH | |
Puller | Sutter Instrument, San Rafael, CA | P-97 | |
Vibration-free table | TMC | 3435-14 | |
Softwares | |||
Clampex 10 | Molecular devices | ||
p Clamp 10 | Molecular devices | ||
Imaging software | Nikon, NY | NIS-elements | |
Chemicals | |||
NaCl | Sigma | S7653 | |
KCl | Sigma | P4504 | |
MgSO4 | Sigma | M7506 | |
CaCl2 | Sigma | C3881 | |
HEPES | Sigma | H7006 | |
Glucose | Sigma | G7021 | |
NaH2PO4 | Sigma | S0751 | |
NaHCO3 | Sigma | S5761 |