Summary

Medium-throughput Screening analyser för bedömning av effekter på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänskliga spermier

Published: March 01, 2019
doi:

Summary

Här, två medium-genomströmning analyser för bedömning av effekter på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänskliga spermier beskrivs. Dessa analyser kan användas för att snabbt och enkelt skärmen stora mängder föreningar för effekter på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänskliga spermier.

Abstract

Ca2 +-signalering är nödvändig för normal spermie funktion och manlig fertilitet. Likaså är akrosomen reaktionen avgörande för möjligheten för en mänsklig spermie att penetrera zona pellucida och befrukta ägget. Det är därför av stort intresse att testa föreningar (t.ex. miljö kemikalier eller läkemedelskandidater) för sin effekt på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänskliga spermier antingen att undersöka de potentiella negativa effekterna på människors spermie funktion eller att undersöka en möjlig roll som preventivmedel. Här beskrivs två medium-kapacitet idag: 1) en fluorescens-baserad analys för bedömning av effekter på Ca2 +-signalering i mänsklig sperma och 2) en bild flödescytometrisk analys för bedömning av akrosomen reaktion i mänskliga spermier. Dessa analyser kan användas för att screena ett stort antal föreningar för effekter på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänskliga spermier. Dessutom kan analyserna användas för att generera mycket specifika dos-responskurvor för enskilda föreningar, bestämma potentiella additivitet/synergier för två eller flera föreningar, och att studera farmakologiska verkningsmekanism genom kompetitiv hämning experiment med CatSper-hämmare.

Introduction

Syftet med de två analyser som beskrivs här är att undersöka påverkan på Ca2 +-signalering och akrosomen reaktion i mänsklig sperma, som har visats för flera föreningar i flera publikationer anställa dessa analyser1,2, 3,4,5,6,7. Ca2 +-signalering och akrosomen reaktionen är både viktigt att normala mänskliga spermie funktion och manlig fertilitet.

Det övergripande målet för en mänsklig spermie är att befrukta ägget. För att kunna framgångsrikt och naturligt befrukta ägget, måste funktioner i cellen spermier regleras ordentligt under resan av spermier cellen genom den kvinnliga genitalia8,9. Många av funktionerna spermie regleras via den intracellulära Ca2 +-koncentration [Ca2 +]jag (t.ex. spermier motilitet, Kemotaxis och akrosomen reaktion)10. En mognadsprocess som kallas capacitation, som återger spermie som gödning ägget, är också delvis reglerat av [Ca2 +]jag10. Ca2 +-strängpressning Ca2 +-ATPas pumpar11 upprätthålla ett ungefärligt 20.000 gånger Ca2 +-gradient över mänskliga spermier cellmembranet, med en vilande [Ca2 +]jag 50-100 Nm. Om Ca2 + tillåts korsa cellmembranet (t.ex. genom öppnandet av Ca2 +-kanaler), ett betydande inflöde av Ca2 + uppstår, ger upphov till en höjd av [Ca2 +]jag. Dock spermie också bär intracellulära Ca2 +-butiker, som kan frigöra Ca2 + och, därför, också ger upphov en höjd av [Ca2 +]i12. Intressant, alla kanal-medierad Ca2 +-inflöde i mänskliga spermaceller har hittills konstaterats för att ske via CatSper (CatJoniska kanal SpeRM), som uttrycks endast i spermierna11. I mänskliga spermaceller, CatSper aktiveras av endogena ligander progesteron och prostaglandiner genom distinkta ligand bindande platser13,14,15, leder till en snabb Ca2 +-inflöde till cellen spermier. Två huvudsakliga källor nära ägget ger höga nivåer av dessa endogena ligander. En är den follikulära vätska som innehåller höga halter av progesteron16. Den follikulära vätskan frigörs från mogna folliklar tillsammans med ägget vid ägglossningen och mixar med vätska inom den oviducts17. Andra huvudkällan är den cumulus celler som omger ägget och släppa höga nivåer av progesteron och prostaglandiner. Progesteron-inducerad Ca2 +-inflöde i spermacellerna har visat att medla chemotaxis mot ägg9,18, kontrollera spermier motilitet19,20 och stimulera akrosomen reaktion21. Utlösning av dessa enskilda [Ca2 +]jag-reglerade spermier funktioner i rätt ordning och vid rätt tidpunkt är avgörande för befruktning av ägg8. I linje med detta, en suboptimal progesteron-inducerad Ca2 +-inflöde har hittats ska associeras med minskad fertilitet22,23,24,25,26 ,27,28,29 och funktionella CatSper är avgörande för manlig fertilitet26,30,31,32, 33,34,35,36.

Som spermacellerna nå ägget, ett händelseförlopp måste äga rum för befruktning att inträffa: (1) spermacellerna måste penetrera det omgivande cumulus celllagrar, 2) binder till zona pellucida, 3) exocytose acrosomal innehåll, så kallade akrosomen reaktionen 37, 4) penetrera zona pellucida och 5) säkring med ägg membranet att slutföra befruktning38. För att kunna gå igenom dessa steg och befrukta ägget, måste spermie först genomgå capacitation11, som börjar som spermacellerna lämnar sädesvätskan som innehåller ”decapacitating” faktorer39 och simma in i vätskorna av kvinnliga fortplantningsorganen med höga nivåer av bikarbonat och albumin37. Capacitation återger spermacellerna kan genomgå en överaktivering, en form av motilitet med kraftig stryk av Flagellen och akrosomen reaktion37. Hyperactivated motilitet krävs för genomträngningen av zona pellucida40, och akrosomen innehåller olika Hydrolytiska enzymer som stöd denna penetration processen41. Dessutom återger akrosomen reaktionen spermacellerna kan fusing med ägg genom att exponera specifika membranproteiner på spermier ytan krävs för sperma-ägg fusion42. Möjligheten att genomgå överaktivering och akrosomen reaktion är följaktligen båda krävs för framgångsrik befruktning av ägg40,42. Tvärtemot vad har setts för mus sädesceller43,44,45, kan endast mänskliga spermaceller som är akrosomen-intakt binda till de zona pellucida46. När de mänskliga spermacellerna är bundna till zona pellucida måste de genomgå akrosomen reaktionen både penetrera zona pellucida41 och att exponera specifika membranproteiner som behövs för att fusionen med det ägg38. Tidpunkten för akrosomen reaktionen i mänskliga spermier är således avgörande för befruktning ska ske.

Som beskrivits ovan, Ca2 +-signalering är avgörande för normala spermier cell funktion8, och det är därför av stort intresse att kunna skärmen ett stort antal föreningar för effekter på Ca2 +-signalering i mänskliga spermaceller. På samma sätt som bara mänskliga spermaceller som genomgår akrosomen reaktion vid rätt tid och plats kan penetrera zona pellucida och gödsla den ägg46,47, är det också av stort intresse för att kunna testa föreningar för sin förmåga att påverka akrosomen reaktionen i mänskliga spermier. I detta syfte beskrivs två medium-throughput screening analyser: 1) test för effekter på Ca2 +-signalering i mänskliga spermaceller, och 2) test för förmågan att inducera akrosomen reaktion i mänskliga spermaceller.

Analys 1 är en medium-genomströmning Ca2 +-signalering assay. Denna fluorescens plate reader-baserad teknik övervakar ändringar i fluorescens som funktion av tiden samtidigt i flera brunnar. Den Ca2 +-känsliga fluorescerande färgämne, Fluo-4 har en K-d för Ca2 +≈ 335 nM och är cell-diffusionskoefficient i AM (acetoximetyl) ester form. Med Fluo-4, är det möjligt att mäta förändringar i [Ca2 +]i över tid och efter tillsats av föreningar av intresse för spermacellerna. Analysen har utvecklats av labbet av Timo Strünker 201113 och har sedan använts i flera studier att skärmen föreningar för effekter på Ca2 +-signalering i mänskliga spermier1,2,3, 4,5. En liknande metod har också använts till skärmen flera drog kandidater48. Dessutom är denna analys också användbart för att bedöma på farmakologiska verkningssätt åtgärd1,2,3,4,5, DOS-respons kurvor1, 2,3,4,5, kompetitiv hämning1,2, additivitet1,2och synergism3 av föreningar av intresse.

Analysen 2 är en medium-genomströmning akrosomen reaktion analysen. Denna bild cytometer-baserad teknik mäter mängden livskraftig akrosomen reagerade sädesceller i ett prov, med tre fluorescerande färger: propidium jodid (PI), FITC-kopplade lektin Pisum sativum (FITC-PSA) och Hoechst-33342. Analysens ändrades från ett liknande flöde flödescytometri-baserade metoden av Zoppino et al.49 och har använts i flera studier6,7. När det gäller de Ca2 +-signalering assay, denna akrosomen reaktion analys kunde också användas för att bedöma dos-responskurvor, hämning, additivitet och synergier av föreningar av intresse.

Protocol

Insamling och analys av human sädesvätska prover i protokollen följer riktlinjerna i den forskningsetisk kommitté av Danmarks huvudstad regionen. Alla sperma prov har erhållits efter informerat samtycke från frivilliga givare. Efter leverans, var proverna helt anonymiserade. Varje givare fått en avgift på 500 DKK (ca $75 US-dollar) per prov för sina besvär. Proverna analyseras samma dag som leverans och sedan förstöras omedelbart efter laboratorieförsök. Obs: Medium genomströmni…

Representative Results

Representativa resultat från experiment testa effekten av 4 föreningar (A, B, C och D) tillsammans med en positiv (progesteron) och negativa (buffert) kontroll på [Ca2 +]jag i mänskliga spermier med hjälp av medium-genomströmning Ca2 +-signalering analysen kan ses i figur 4a. I figur 4bvisas en dos-responskurva av progesteron, som härrörde från peak ΔF/F0 (%) data som inducera…

Discussion

Den medelstora genomströmning Ca2 + signalering analysen baseras på mätningar av fluorescens från enda mikrobrunnar varje innehållande omkring 250.000 sädesceller. Fångade signalen är i genomsnitt från alla enskilda sädesceller i brunnen. Analysen ger således ingen rumslig information om var specifikt i den spermie [Ca2 +]jag har ändrats, i hur stor andel av de spermier som en förändring i [Ca2 +]jag äger rum, eller hur heterogena svar är mellan de en…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill erkänna labbet av Timo Strünker för övervakning av AR och DLE under sina vistelser på hans labb. Dessutom vill vi tacka våra kolleger på avdelningen för tillväxt och reproduktion, Köpenhamn universitetssjukhus, Rigshospitalet för deras hjälp med att sätta upp dessa två analyser. Detta arbete stöds av bidrag från Innovationsfonden Danmark (grant nummer 005-2010-3 och 14-2013-4).

Materials

0.2 µm pore filter Thermo Fisher Scientific, USA 296-4545
1 L measuring cylinder Thermo Fisher Scientific, USA 3662-1000
1,4 and 2 mL plastic tubes Eppendorf, Germany 30120086 and 0030120094
12-channel pipette Eppendorf, Germany 4861000813
384 multi-well plates Greiner Bio-One, Germany 781096
15 and 50 mL platic tubes Eppendorf, Germany 0030122151 and 30122178
A2-slide ChemoMetec, Denmark 942-0001
Automatic repeater pipette Eppendorf, Germany 4987000010
CaCl2
Centrifuge
Clean wide-mouthed plastic container for semen sample
Dimethyl sulfoxide (DMSO)
FITC-coupled lectin of Pisum sativum (FITC-PSA) Sigma-Aldrich, Germany L0770
Fluo-4 AM Thermo Fisher Scientific, USA F14201
FLUOstar OMEGA fluorescence microplate reader BMG Labtech, Germany
Glucose anhydrous
HEPES
Hoechst-33342 ChemoMetec, Denmark 910-3015
Human serum albumin (HSA) Irvine Scientific 9988 For addition to HTF+
Immobilizing solution containing 0.6 M NaHCO3 and 0.37% (v/v) formaldehyde in distilled water
Incubator
KCl
KH2PO4
Magnetic stirrer
MgSO4
Na-Lactate
NaCl
NaHCO3
NC-3000 image cytometer ChemoMetec, Denmark 970-3003
Pipettes and piptting tips
propidium iodide (PI) ChemoMetec, Denmark 910-3002
Purified water
Rack for placing 50 mL plastic tubes in 45° angle
S100 buffer ChemoMetec, Denmark 910-0101
SP1-cassette ChemoMetec, Denmark 941-0006
Volumetric flasks of appropriate sizes
Vortexer

References

  1. Schiffer, C., et al. Direct action of endocrine disrupting chemicals on human sperm. EMBO reports. , (2014).
  2. Rehfeld, A., Dissing, S., Skakkebæk, N. E. Chemical UV Filters Mimic the Effect of Progesterone on Ca(2+) Signaling in Human Sperm Cells. Endocrinology. 157 (11), 4297-4308 (2016).
  3. Brenker, C., et al. Synergistic activation of CatSper Ca2+ channels in human sperm by oviductal ligands and endocrine disrupting chemicals. Human Reproduction (Oxford, England). 33 (10), 1915-1923 (2018).
  4. Brenker, C., et al. The CatSper channel: a polymodal chemosensor in human sperm. The EMBO Journal. 31 (7), 1654-1665 (2012).
  5. Brenker, C., et al. Action of steroids and plant triterpenoids on CatSper Ca2+ channels in human sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), E344-E346 (2018).
  6. Rehfeld, A., et al. Chemical UV filters can affect human sperm function in a progesterone-like manner. Endocrine Connections. , (2017).
  7. Egeberg Palme, D. L., et al. Viable acrosome-intact human spermatozoa in the ejaculate as a marker of semen quality and fertility status. Human Reproduction. , (2018).
  8. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  9. Publicover, S. J., et al. Ca2+ signalling in the control of motility and guidance in mammalian sperm. Frontiers in Bioscience. 13, 5623-5637 (2008).
  10. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  11. Lishko, P. V., et al. The control of male fertility by spermatozoan ion channels. Annual Review Of Physiology. 74, 453-475 (2012).
  12. Morris, J., et al. Cell-penetrating peptides, targeting the regulation of store-operated channels, slow decay of the progesterone-induced [Ca2+]i signal in human sperm. Molecular Human Reproduction. 21 (7), 563-570 (2015).
  13. Strünker, T., et al. The CatSper channel mediates progesterone-induced Ca2+ influx in human sperm. Nature. 471 (7338), 382-386 (2011).
  14. Lishko, P. V., Botchkina, I. L., Kirichok, Y. Progesterone activates the principal Ca2+ channel of human sperm. Nature. 471 (7338), 387-391 (2011).
  15. Miller, M. R., et al. Unconventional endocannabinoid signaling governs sperm activation via the sex hormone progesterone. Science (New York, N.Y.). 352 (6285), 555-559 (2016).
  16. Revelli, A., et al. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reproductive Biology And Endocrinology RB&E. 7, 40 (2009).
  17. Lyons, R. A., Saridogan, E., Djahanbakhch, O. The effect of ovarian follicular fluid and peritoneal fluid on Fallopian tube ciliary beat frequency. Human Reproduction. 21 (1), 52-56 (2006).
  18. Eisenbach, M., Giojalas, L. C. Sperm guidance in mammals – an unpaved road to the egg. Nature reviews. Molecular Cell Biology. 7 (4), 276-285 (2006).
  19. Alasmari, W., et al. The clinical significance of calcium-signalling pathways mediating human sperm hyperactivation. Human Reproduction. 28 (4), 866-876 (2013).
  20. Alasmari, W., et al. Ca2+ signals generated by CatSper and Ca2+ stores regulate different behaviors in human sperm. The Journal of Biological Chemistry. 288 (9), 6248-6258 (2013).
  21. Tamburrino, L., et al. The CatSper calcium channel in human sperm: relation with motility and involvement in progesterone-induced acrosome reaction. Human Reproduction. 29 (3), 418-428 (2014).
  22. Krausz, C., et al. Intracellular calcium increase and acrosome reaction in response to progesterone in human spermatozoa are correlated with in-vitro fertilization. Human Reproduction. 10 (1), 120-124 (1995).
  23. Oehninger, S., et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia. Fertility and Sterility. 61 (2), 349-354 (1994).
  24. Shimizu, Y., Nord, E. P., Bronson, R. A. Progesterone-evoked increases in sperm [Ca2+]i correlate with the egg penetrating ability of sperm from fertile but not infertile men. Fertility and Sterility. 60 (3), 526-532 (1993).
  25. Falsetti, C., et al. Decreased responsiveness to progesterone of spermatozoa in oligozoospermic patients. Journal of Andrology. 14 (1), 17-22 (1993).
  26. Williams, H. L., et al. Specific loss of CatSper function is sufficient to compromise fertilizing capacity of human spermatozoa. Human Reproduction. 30 (12), 2737-2746 (2015).
  27. Forti, G., et al. Effects of progesterone on human spermatozoa: clinical implications. Annales d’Endocrinologie. 60 (2), 107-110 (1999).
  28. Krausz, C., et al. Two functional assays of sperm responsiveness to progesterone and their predictive values in in-vitro fertilization. Human Reproduction. 11 (8), 1661-1667 (1996).
  29. Kelly, M. C., et al. Single-cell analysis of [Ca2+]i signalling in sub-fertile men: characteristics and relation to fertilization outcome. Human Reproduction. 33 (6), 1023-1033 (2018).
  30. Brown, S. G., et al. Homozygous in-frame deletion in CATSPERE in a man producing spermatozoa with loss of CatSper function and compromised fertilizing capacity. Human Reproduction. 33 (10), 1812-1816 (2018).
  31. Avenarius, M. R., et al. Human male infertility caused by mutations in the CATSPER1 channel protein. American Journal of Human Genetics. 84 (4), 505-510 (2009).
  32. Smith, J. F., et al. Disruption of the principal, progesterone-activated sperm Ca2+ channel in a CatSper2-deficient infertile patient. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (17), 6823-6828 (2013).
  33. Hildebrand, M. S., et al. Genetic male infertility and mutation of CATSPER ion channels. European Journal of Human Genetics. 18 (11), 1178-1184 (2010).
  34. Avidan, N., et al. CATSPER2, a human autosomal nonsyndromic male infertility gene. European Journal of Human Genetic. 11 (7), 497-502 (2003).
  35. Zhang, Y., et al. Sensorineural deafness and male infertility: a contiguous gene deletion syndrome. BMJ Case Reports. 2009, (2009).
  36. Jaiswal, D., Singh, V., Dwivedi, U. S., Trivedi, S., Singh, K. Chromosome microarray analysis: a case report of infertile brothers with CATSPER gene deletion. Gene. 542 (2), 263-265 (2014).
  37. Visconti, P. E., Krapf, D., de la Vega-Beltrán, J. L., Acevedo, J. J., Darszon, A. Ion channels, phosphorylation and mammalian sperm capacitation. Asian Journal of Andrology. 13 (3), 395-405 (2011).
  38. Wassarman, P. M., Jovine, L., Litscher, E. S. A profile of fertilization in mammals. Nature Cell Biology. 3 (2), E59-E64 (2001).
  39. Leahy, T., Gadella, B. M. Sperm surface changes and physiological consequences induced by sperm handling and storage. Reproduction. 142 (6), 759-778 (2011).
  40. Suarez, S. S. Control of hyperactivation in sperm. Human Reproduction Update. 14 (6), 647-657 (2008).
  41. Liu, D. Y., Baker, H. W. Inhibition of acrosin activity with a trypsin inhibitor blocks human sperm penetration of the zona pellucida. Biology of Reproduction. 48 (2), 340-348 (1993).
  42. Okabe, M. The cell biology of mammalian fertilization. Development. 140 (22), 4471-4479 (2013).
  43. Inoue, N., Satouh, Y., Ikawa, M., Okabe, M., Yanagimachi, R. Acrosome-reacted mouse spermatozoa recovered from the perivitelline space can fertilize other eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (50), 20008-20011 (2011).
  44. Jin, M., et al. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12), 4892-4896 (2011).
  45. Hirohashi, N., Yanagimachi, R. Sperm acrosome reaction: its site and role in fertilization. Biology of Reproduction. 99 (1), 127-133 (2018).
  46. Liu, D. Y., Garrett, C., Baker, H. W. G. Acrosome-reacted human sperm in insemination medium do not bind to the zona pellucida of human oocytes. International Journal of Andrology. 29 (4), 475-481 (2006).
  47. Overstreet, J. W., Hembree, W. C. Penetration of the zona pellucida of nonliving human oocytes by human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 27 (7), 815-831 (1976).
  48. Martins da Silva, S. J., et al. Drug discovery for male subfertility using high-throughput screening: a new approach to an unsolved problem. Human Reproduction. , 1-11 (2017).
  49. Zoppino, F. C. M., Halón, N. D., Bustos, M. A., Pavarotti, M. A., Mayorga, L. S. Recording and sorting live human sperm undergoing acrosome reaction. Fertility and Sterility. 97 (6), 1309-1315 (2012).
  50. Mata-Martínez, E., et al. Measuring intracellular Ca2+ changes in human sperm using four techniques: conventional fluorometry, stopped flow fluorometry, flow cytometry and single cell imaging. Journal of Visualized Experiments. (75), e50344 (2013).
  51. Egeberg, D. L., et al. Image cytometer method for automated assessment of human spermatozoa concentration. Andrology. 1 (4), 615-623 (2013).
  52. Nash, K., et al. Techniques for imaging Ca2+ signaling in human sperm. Journal of Visualized Experiments. (40), (2010).
check_url/fr/59212?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Rehfeld, A., Egeberg Palme, D. L., Almstrup, K., Juul, A., Skakkebaek, N. E. Medium-throughput Screening Assays for Assessment of Effects on Ca2+-Signaling and Acrosome Reaction in Human Sperm. J. Vis. Exp. (145), e59212, doi:10.3791/59212 (2019).

View Video