Summary

Bruk av in vivo single-fiber Recording og intakt rygg rot Ganglion med vedlagt ischias nerven til å undersøke mekanismen for Lednings feil

Published: August 27, 2019
doi:

Summary

Single-fiber opptak er en effektiv elektrofysiologisk teknikk som gjelder for den sentrale og perifere nervesystemet. Sammen med utarbeidelse av intakt DRG med vedlagte ischias nerven, er mekanismen for Lednings svikt undersøkt. Begge protokollene forbedre forståelsen av perifere nervesystemet forhold til smerte.

Abstract

Single-fiber innspillingen har vært en klassisk og effektiv elektrofysiologisk teknikk de siste ti årene på grunn av sin spesifikke anvendelse for nervefibre i den sentrale og perifere nervesystemet. Denne metoden er spesielt anvendelig på rygg rot ganglia (DRG), som er primære sensoriske neurons som viser en pseudo-Unipolare struktur av nervøse prosesser. Mønstrene og funksjonene i handlingen potensialer gått langs axons er skrivbar i disse neurons. Den nåværende studien bruker in vivo single-fiber innspillinger for å observere Lednings svikt av ischias nerver i fullstendig Freund ‘ s adjuvant (CFA)-behandlet rotter. Som den underliggende mekanismen ikke kan bli studert ved hjelp av in vivo single-fiber innspillinger, patch-Clamp-innspillinger av DRG neurons utføres på preparater av intakt DRG med vedlagte ischias nerven. Disse opptakene avslører en positiv korrelasjon mellom Lednings svikt og den stigende skråningen av hyperpolarization potensialet (AHP) av DRG neurons i CFA-behandlede dyr. Protokollen for in vivo single fiber-innspillinger gjør at klassifisering av nervefibre via måling av Lednings hastighet og overvåking av unormale forhold i nervefibre i visse sykdommer. Intakt DRG med vedlagt perifer nerve tillater observasjon av aktiviteten til DRG neurons i de fleste fysiologiske forhold. Endelig, Single-fiber opptak kombinert med elektrofysiologisk innspilling av intakt DRGs er en effektiv metode for å undersøke rollen til Lednings svikt under smertestillende prosess.

Introduction

Den normale overføring av informasjon langs nervefibre garanterer normal funksjon av nervesystemet. Unormal funksjon av nervesystemet er også reflektert i det elektriske signalet overføring av nervefibre. For eksempel kan graden av demyelinisering i sentrale demyelinisering lesjoner klassifiseres via sammenligning av endringer i nerve Lednings hastighet før og etter intervensjon søknad1. Det er vanskelig å intracellulært posten nervefibre, bortsett fra i spesielle forberedelser som blekksprut gigantiske axon2. Derfor er elektrofysiologisk aktivitet bare skrivbar via ekstracellulære innspilling av enkelt fibre. Som en av de klassiske elektrofysiologisk metoder, Single-fiber innspillingen har en lengre historie enn andre teknikker. Men færre electrophysiologists fatte denne metoden til tross for sin omfattende anvendelse. Derfor en detaljert innføring av standardprotokollen for single-fiber opptak er nødvendig for det aktuelle programmet.

Selv om ulike patch-Clamp teknikker har dominert moderne elektrofysiologisk studie, Single-fiber innspillingen fortsatt spiller en uerstattelig rolle i innspillingen av aktiviteter av nervefibre, spesielt fibre overfører perifere sensasjon med sine Sensorisk celle kroppen ligger i rygg rot Ganglion (DRG). Fordelen med å bruke single-fiber innspillingen her er at in vivo fiber innspillingen gir en lang observasjon tid med kapasitet til å registrere svar på naturlige stimuli i prekliniske modeller uten forstyrrelse av intracellulære miljø3 , firetil.

Et økende antall studier de siste to ti årene har undersøkt komplekse funksjoner langs nervefibre5, og Lednings svikt, som er definert som en tilstand av mislykket nerve impuls overføring langs axon, var til stede i mange forskjellige perifere nerver6,7. Tilstedeværelsen av Lednings svikt i etterforskningen vår tjente som en iboende selv hemmende mekanisme for modulering av vedvarende nociceptive innspill langs C-fibre8. Denne Lednings svikt ble betydelig svekket under forholdav hyperalgesia. Derfor, rettet mot de faktorene som er involvert i Lednings svikt kan representere en ny behandling for nevropatisk smerte. For å observere Lednings svikt, skal skyte mønsteret bli registrert og analysert på grunnlag av sekvensielt utladet pigger basert på single-fiber opptak.

For å grundig forstå mekanismen for Lednings svikt, er det nødvendig å identifisere overførings egenskapene til axon, eller mer presist, membran egenskapene til DRG neurons, basert på deres pseudo-Unipolare Anatomiske egenskaper. Mange tidligere studier på dette feltet har blitt utført på dissosiert DRG neurons10,11, som kanskje ikke er gjennomførbart for etterforskningen av Lednings svikt på grunn av to hindringer. Først er ulike mekaniske og kjemiske metoder som brukes i dissosiasjon prosessen til gratis DRG neurons, som kan resultere i usunne celler eller endre fenotype/egenskapene til neurons og forvirre funnene. For det andre, de vedlagte perifere nerver er i utgangspunktet fjernet, og Lednings svikt fenomener er ikke synlig i disse forberedelsene. Derfor har en forberedelse av intakt DRG neurons med en vedlagt nerve blitt forbedret for å unngå ovennevnte hindringer.

Protocol

Den nåværende protokollen fulgte guide for USA Public Health Service ‘ s policy på Human Care og bruk av laboratorium dyr, og komiteen for etikk Animal eksperimenter av den fjerde militære Medical University godkjent protokollen. 1. dyr Dividere 24 Sprague-Dawley rotter (4-8 ukens gamle) i to holdene. Tilvirke fullstendig Freund ‘ adjuvant (CFA) modell av intraplantar injeksjon av 100 μL av CFA inne ettall gruppe av 14 rotter og en annen gruppe av 10 rotter av handling med saltv…

Representative Results

Utfallet av single-fiber opptaks protokoll avhenger av kvaliteten på fiber disseksjon. Dyret for in vivo eksperimenter må være i en god situasjon for å holde nerve stammen frisk for enkel disseksjon (se råd i diskusjonen delen). Et medikament søknad bad er nødvendig i mange tilfeller for narkotika levering på fibre. Figur 1 illustrerer hvordan in vivo single-fiber innspillingen ble operert (figur 1a) og presenterer en klassisk innspilling fra ischias nerven av CFA-be…

Discussion

Selv om nyere studier har oppnådd kalsium Imaging av DRG neurons in vivo16, utfører in vivo patch-Clamp opptak fra individuelle DRG nociceptors fortsatt svært utfordrende. Derfor, en in vivo single-fiber tilnærming for smerten feltet er av fortsatt betydning. Single-fiber opptak i den nåværende protokollen tillater objektiv observasjon av Lednings svikt fenomener, og kombinasjonen av denne teknikken med ex vivo forberedelse utviklet i dagens studie tillater undersøkelse av underliggende mek…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av finansiering fra National Natural Science Foundation i Kina (31671089 og 81470060) og Shaanxi provinsielle Social Development Science and Technology Research Project (2016SF-250).

Materials

Instruments and software used in single fiber recording
Amplifier Nihon kohden MEZ-8201 Amplification of the electrophysiological signals
Bioelectric amplifier monitor ShangHai JiaLong Teaching instrument factory SZF-1 Monitor firing process via sound which is transformed from physiological discharge signal
Data acquisition and analysis system CED Spike-2 Software for data acquisition and analysis
Electrode manipulator Narishige SM-21 Contro the movement of the electrode as required
Hairspring tweezers A.Dumont 5# Separate the single fiber
Isolator Nihon kohden SS-220J
Memory oscilloscope Nihon kohden VC-9 Display recorded discharge during
experiment
Stereomicroscope ZEISS SV-11 Have clear observation when separate the local tissue and single fiber
Stimulator Nihon kohden SEZ-7203 Delivery of the electrical stimuli
Von Frey Hair Stoelting accompany Delivery of the mechanical stimuli
Water bath Scientz biotechnology Co., Ltd. SC-15 Heating paroline to maintain at 37oC
Instruments and software used in patch clamp recording
Amplifier Axon Instruments Multiclamp 700B Monitors the currents flowing through the recording electrode and also controls the stimuli by sending a signal to the electrode
Anti-vibration table Optical Technology Co., Ltd. Isolates the recording system from vibrations induced by the environment
Camera Olympus TH4-200 See the neurons in bright field; the controlling software allows to take pictures and do live camera image to monitor the approach of the electrode to the cell
Clampex Axon Clampex 9.2 Software for data acquisition and delivery of stimuli
Clampfit Axon Clampfit 10.0 Software for data analysis
Electrode puller Sutter P-97 Prepare recording pipettes of about 2μm diameter with resistance about 5 to 8 MΩ
Glass pipette Sutter BF 150-75-10
Micromanipulator Sutter MP225 Give a precise control of the microelectrode
Microscope Olympus BX51WI Upright microcope equipped with epifluorescence for clearly observe the cells which would be patched
Origin Origin lab Origin 8 Software for drawing picture
Perfusion Pump BaoDing LanGe Co., Ltd. BT100-1J Perfusion of DRG in whole-cell patch clamp
Other instruments
Electronic balance Sartorius BS 124S Weighing reagent
pH Modulator Denver Instrument UB7 Adjust pH to 7.4
Solutions/perfusion/chemicals
Calcium chloride Sigma-Aldrich C5670 Extracellular solution
Chloralose Shanghai Meryer Chemical Technology Co., Ltd. M07752 Mixed solution for Anesthesia
Collagenase Sigma-Aldrich SLBQ1885V Enzyme used for clearing the surface of DRG
D (+) Glucose Sigma-Aldrich G7528 Extracellular solution
Liquid Paraffin TianJin HongYan Reagent Co., Ltd. Maintain fiber wetting
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M7506 Extracellular solution
Potassium chloride Sigma-Aldrich P3911 Extracellular solution
Protease Sigma-Aldrich 62H0351 Enzyme used for clearing the surface of DRG
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5671 Extracellular solution
Sodium chloride Sigma-Aldrich S5886 Extracellular solution
Sodium phosphate monobasic Sigma-Aldrich S0751 Extracellular solution
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 Extracellular solution
Urethane Sigma-Aldrich U2500 Mixed solution for Anesthesia

References

  1. Koski, C. L., et al. Derivation and validation of diagnostic criteria for chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Journal of the Neurological Sciences. 277 (1-2), 1-8 (2009).
  2. Allen, T. J., Knight, D. E. The use of intracellular dialysis to study signal transduction coupling in the squid giant axon. Journal of Neuroscience Methods. 42 (3), 169-174 (1992).
  3. Schafers, M., Cain, D. Single-fiber recording: in vivo and in vitro preparations. Methods in Molecular Medicine. 99, 155-166 (2004).
  4. Sun, W., et al. Reduced conduction failure of the main axon of polymodal nociceptive C-fibres contributes to painful diabetic neuropathy in rats. Brain. 135, 359-375 (2012).
  5. Debanne, D. Information processing in the axon. Nature Reviews Neuroscience. 5 (4), 304-316 (2004).
  6. De Col, R., Messlinger, K., Carr, R. W. Conduction velocity is regulated by sodium channel inactivation in unmyelinated axons innervating the rat cranial meninges. Journal of Physiology. 586 (4), 1089-1103 (2008).
  7. Debanne, D., Campanac, E., Bialowas, A., Carlier, E., Alcaraz, G. Axon physiology. Physiological Reviews. 91 (2), 555-602 (2011).
  8. Zhu, Z. R., et al. Conduction failures in rabbit saphenous nerve unmyelinated fibers. Neurosignals. 17 (3), 181-195 (2009).
  9. Wang, X., et al. A novel intrinsic analgesic mechanism: the enhancement of the conduction failure along polymodal nociceptive C-fibers. Pain. 157 (10), 2235-2247 (2016).
  10. Smith, T., Al Otaibi, M., Sathish, J., Djouhri, L. Increased expression of HCN2 channel protein in L4 dorsal root ganglion neurons following axotomy of L5- and inflammation of L4-spinal nerves in rats. Neurosciences. 295, 90-102 (2015).
  11. Zhang, X. L., Albers, K. M., Gold, M. S. Inflammation-induced increase in nicotinic acetylcholine receptor current in cutaneous nociceptive DRG neurons from the adult rat. Neurosciences. 284, 483-499 (2015).
  12. Zhu, Z. R., et al. Modulation of action potential trains in rabbit saphenous nerve unmyelinated fibers. Neurosignals. 21 (3-4), 213-228 (2013).
  13. Djouhri, L., Bleazard, L., Lawson, S. N. Association of somatic action potential shape with sensory receptive properties in guinea-pig dorsal root ganglion neurones. Journal of Physiology. 513, 857-872 (1998).
  14. Fang, X., McMullan, S., Lawson, S. N., Djouhri, L. Electrophysiological differences between nociceptive and non-nociceptive dorsal root ganglion neurones in the rat in vivo. Journal of Physiology. 565, 927-943 (2005).
  15. Young, G. T., Emery, E. C., Mooney, E. R., Tsantoulas, C., McNaughton, P. A. Inflammatory and neuropathic pain are rapidly suppressed by peripheral block of hyperpolarisation-activated cyclic nucleotide-gated ion channels. Pain. 155 (9), 1708-1719 (2014).
  16. Kim, Y. S., et al. Coupled Activation of Primary Sensory Neurons Contributes to Chronic Pain. Neuron. 91 (5), 1085-1096 (2016).
  17. Fan, N., Donnelly, D. F., LaMotte, R. H. Chronic compression of mouse dorsal root ganglion alters voltage-gated sodium and potassium currents in medium-sized dorsal root ganglion neurons. Journal of Neurophysiology. 106 (6), 3067-3072 (2011).
  18. Ma, C., et al. Similar electrophysiological changes in axotomized and neighboring intact dorsal root ganglion neurons. Journal of Neurophysiology. 89 (3), 1588-1602 (2003).
  19. Boucher, T. J., et al. Potent analgesic effects of GDNF in neuropathic pain states. Science. 290 (5489), 124-127 (2000).
  20. Ma, C., Greenquist, K. W., Lamotte, R. H. Inflammatory mediators enhance the excitability of chronically compressed dorsal root ganglion neurons. Journal of Neurophysiology. 95 (4), 2098-2107 (2006).
  21. Gong, K., Ohara, P. T., Jasmin, L. Patch Clamp Recordings on Intact Dorsal Root Ganglia from Adult Rats. Journal of Visualized Experiments. (115), (2016).
  22. Schoenen, J., Delree, P., Leprince, P., Moonen, G. Neurotransmitter phenotype plasticity in cultured dissociated adult rat dorsal root ganglia: an immunocytochemical study. Journal of Neuroscience Research. 22 (4), 473-487 (1989).
  23. Zheng, J. H., Walters, E. T., Song, X. J. Dissociation of dorsal root ganglion neurons induces hyperexcitability that is maintained by increased responsiveness to cAMP and cGMP. Journal of Neurophysiology. 97 (1), 15-25 (2007).
  24. Hanani, M. Satellite glial cells: more than just rings around the neuron. Neuron Glia Biology. 6 (1), 1-2 (2010).
check_url/fr/59234?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Mao, H., Wang, X., Chen, W., Liu, F., Wan, Y., Hu, S., Xing, J. Use of In Vivo Single-fiber Recording and Intact Dorsal Root Ganglion with Attached Sciatic Nerve to Examine the Mechanism of Conduction Failure. J. Vis. Exp. (150), e59234, doi:10.3791/59234 (2019).

View Video