Summary

En kreftfremkallende hepatocytter-indusert Orthotopic Mouse modell av lever Cancer som oppstår i innstillingen av hepatic betennelse og fibrose

Published: September 12, 2019
doi:

Summary

Her beskriver vi utviklingen av en klinisk relevant murine modell av leverkreft recapitulating typiske immun funksjoner av lever Cancer (HCC).

Abstract

Fraværet av en klinisk relevant dyremodell som omhandler de typiske immun egenskapene til leverkreft (HCC), har i betydelig grad hindret elucidation av de underliggende mekanismene og utviklingen av innovative immunotherapeutic strategier. For å utvikle en ideell dyremodell recapitulating menneskelige HCC, immunkompetente mannlige C57BL/6J mus først motta en karbon karbontetraklorid (CCl4) injeksjon å indusere leveren fibrose, deretter motta histologisk-normal kreftfremkallende hepatocytter fra unge mannlige SV40 T antigen (TAg)-transgene mus (MTD2) ved intra-milt (ISPL) inoculation. Androgen generert i mottaker mannlige mus i puberteten initierer TAg uttrykk under kontroll av en lever-spesifikk promoter. Som et resultat, de overførte hepatocytter blir kreftceller og danne tumor masser i innstillingen av leveren fibrose/skrumplever. Denne romanen modellen etterligner menneskelige HCC innvielse og progresjon i sammenheng med leveren fibrose/skrumplever og reflekterer de mest typiske trekk ved menneskelige HCC inkludert immun dysfunksjon.

Introduction

Lever Cancer (HCC) er den raskest økende type kreft i USA (US)1,2,3. Hvert år, ca 850 000 nye tilfeller er diagnostisert4,5 og 700 000 pasienter dør av denne dødelige sykdommen6,7,8,9,10 , noe som gjør den til den nest høyeste årsaken til kreft relaterte dødsfall over hele verden. Behandling av HCC omfatter kirurgisk reseksjon, transplantasjon, ablasjon, chemoembolization eller systemisk behandling, for eksempel sorafenib11. Tidlig diagnose og ledelse med kirurgisk reseksjon eller transplantasjon har den høyeste totale overlevelse fordel4. Dessverre, de fleste pasientene til stede på et senere stadium og krever ledelse med ablasjon, chemoembolization eller sorafenib12. Sorafenib, en reseptor tyrosin kinase inhibitor (RTKI), ble godkjent av Food and Drug Administration i 2008 som den eneste systemiske legemiddel behandlingen som er tilgjengelig for behandling av inoperabel HCC. Selv om stoffet bare gir en beskjeden økning i total overlevelse, fra 7,9 til 10,7 måneder13, det gitt en ny terapeutisk strategi som kan utnyttes til å administrere HCC.

Manipulere immunforsvaret for å eliminere etablerte kreft er et raskt voksende felt i kreftforskning14. Immun kontrollpunktet studier har betydelig avansert immunotherapeutic narkotika utvikling i kreft behandling15,16. FDA godkjente bruken av antistoffer (ABS) mot cytotoksisk T-lymfocytter antigen 4 (CTLA-4), programmert celle død protein 1 (PD-1), og dens ligand PD-L1 for behandling av melanom, lungekreft, hode og nakke kreft, og blære kreft17, 18 av år , 19 andre priser , 20. kliniske studier av monoterapi eller Kombinasjonsbehandling ved bruk av én eller flere antistoffer mot PD-1, PD-L1 eller CTLA-4 for behandling av avansert HCC pågår21,22,23, og noen prøvelser har vist gunstige resultater. I 2017, FDA innvilget akselerert godkjenning for anti-PD-1 antistoff å behandle HCC pasienter, som er motstand mot sorafenib, men den generelle responsen rate av denne behandlingen er bare 14,3%. Andre strategier har ikke blitt oversatt til klinisk praksis på dette tidspunktet24,25. Overvinne tumor-indusert dyp immun toleranse å forbedre immun kontrollpunkt terapi26; forutsi effekten av immun kontrollpunkt terapi; forebygge immunrelaterte bivirkninger; optimalisere administrasjon rute, dosering, og frekvens; og finne effektive kombinasjoner av terapier27,28,29 alle er fortsatt ekstremt utfordrende oppgaver.

Det er flere konvensjonelle tilnærminger som brukes til å indusere HCC i musemodeller for tiden og benyttes avhengig av etterforsker spesielle spørsmål30. Kjemisk-indusert HCC mus modeller med gentoksisk forbindelser etterligne skade-indusert kreft. Xenograft modeller gjennom enten utenfor livmoren eller orthotopic implantation av HCC cellelinjer er egnet for narkotika screening. En rekke genmodifiserte mus er konstruert for å undersøke patofysiologi til HCC. Transgene mus uttrykker viral gener, oncogenes og/eller vekstfaktorer tillate identifisering av trasé involvert i hepatocarcinogenesis. På grunn av iboende begrensninger, disse modellene ikke recapitulate de typiske immun egenskaper sett i menneskets HCC, som har betydelig hindret elucidation av underliggende mekanismer og utvikling av innovative immunotherapeutic strategier14 ,15. Vi har nylig opprettet en klinisk relevant murine modell. Denne romanen modellen ikke bare etterligner menneskelige HCC innvielse og progresjon, men også reflekterer de fleste typiske trekk ved menneskelig sykdom, inkludert immun dysfunksjon. Vi har preget sine biologiske og immunologiske egenskaper. Utnytte denne romanen modellen, har vi utforsket ulike immunotherapeutic strategier for å behandle HCC31,32,33,34,35,36, 37. denne unike plattformen tillater oss å studere mekanismer av tumor-indusert immunotolerance og å utvikle proof-of-Concept terapeutiske strategier for HCC mot eventuell klinisk oversettelse.

Protocol

Merk: all prosedyren inkludert dyr har blitt godkjent av IACUC ved University of Missouri. Alle mus fikk Human omsorg i henhold til kriteriene skissert i “guide for omsorg og bruk av Laboratoriedyr”. Følgende prosedyre for celle isolering og inoculation bør utføres i en hette. Alle utøvere bør bruke standard personlig verneutstyr for håndtering av mus og vev. 1. induksjon av leveren fibrose og skrumplever med IP-injeksjon av Carbon Karbontetraklorid (CCl4) <p class="jove_con…

Representative Results

Kreftfremkallende hepatocytter isolert fra TAg-transgene mus (figur 2) ble sådd i leveren av ville type mus ved intra-milt injeksjon (Figur 3). Den transplanterte hepatocytter vellykket og pålitelig vokste orthotopic HCC svulster (Figur 4) med tumor spesifikke antigen SV40 TAg (figur 5) i innstillingen av hepatic betennelser og fibrose (figur 1). <img alt="Figure 1" class="xf…

Discussion

Med denne protokollen har vi etablert en pålitelig og reproduserbar murine modell av HCC som etterligner menneskets HCC innvielse og progresjon. Klinisk, mange risikofaktorer suksessivt induserer leverskade, leveren fibrose, skrumplever og den siste fasen av HCC. I vår protokoll, IP-injeksjon av CCl4 brukes til å først produsere leveren fibrose i vill type mus, som gjør at den påfølgende kreftfremkallende hepatocytter å danne svulster i innstillingen av leveren fibrose. Vi fant at tumor formasjon skjed…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet av NIH/NCI R01 CA164335-01A1 (K. F. Staveley-O ‘ Carroll, PI) og NIH/NCI R01CA208396 (Markus Kester, Guangfu Li, Kevin F. Staveley-O ‘ Carroll).

Materials

Anesthesia machine VETEQUIP IMPAC6 anesthesia machine for surgery
Butterfly needle BD 8122963 Needle used for liver perfusion
C57BL/6 mice Jackson Lab 000664  mice used in prototol
Carprofen CRESCENT CHEMICAL 20402 carprofen for pain release
Cell Strainer  CORNING REF 431751 Cell strainer, 70µm, for hepatocytes isolation
Centrifuge Beckman Coulter Allegra X-30R centrifuge for cell isolation
Clips  Teleflex Medical REF 523700 Titanium Clips for spleen
Microscope Zeiss Primovert  microscope for cell observation
Mtd2 mice N/A Gift from Dr. William A Held at roswell Park Cancer Institute in 2002, maintained in our lab
Needle BD REF 305109 BD precisionglide needle, 27G x 1/2 (0.4mm x 13mm)
Suture ETHICON J303H coated VICRYL suture
SV40 T Ag antibody Abcam ab16879 anti-SV40 T-antigen antibody for IHC
Syringe BD REF 309626 1 mL TB syringe for cell injection
Trypan blue SIGMA T 8154 Trypan blue solution for cell viability test
Wound clips Reflex reflex9, Part. No. 201-1000 stainless steel wound clips for wound close

References

  1. O’Connor, S., Ward, J. W. Hepatocellular carcinoma – United States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 59, 517-520 (2010).
  2. Petrick, J., Kelly, S., Altekruse, S., McGlynn, K., Rosenberg, P. Future of Hepatocellular Carcinoma Incidence in the United States Forecast Through 2030. Journal of clinical oncology: official journal of the American Society of Clinical Oncology. 34, 1787-1794 (2016).
  3. Greten, T., Lai, C., Li, G., Staveley-O’Carroll, K. Targeted and Immune-based Therapies for Hepatocellular Carcinoma. Gastroenterology. 156, 510-524 (2019).
  4. Llovet, J., Zucman-Rossi, J., Pikarsky, E., Sangro, B., Schwartz, M., Sherman, M., Gores, G. Hepatocellular Carcinoma. Nature reviews. Disease primers. 2, 16018 (2016).
  5. Ding, X., et al. Precision medicine for hepatocellular carcinoma: driver mutations and targeted therapy. Oncotarget. 8, 55715-55730 (2017).
  6. Colombo, M., Maisonneuve, P. Controlling liver cancer mortality on a global scale: still a long way to go. Journal of Hepatology. 67, 216-217 (2017).
  7. Llovet, J., Burroughs, A., Bruix, J. Hepatocellular carcinoma. Lancet. 362, 1907-1917 (2003).
  8. Parkin, D., Bray, F., Ferlay, J., Pisani, P. Estimating the world cancer burden: Globocan 2000. International Journal of Cancer. 94, 153-156 (2001).
  9. Thomas, M., Zhu, A. Hepocellular carcinoma: the need for progress. Journal of Clinical Oncology. 23, 2892-2899 (2005).
  10. Llovet, J., Bruix, J. Molecular targeted therapies in hepatocellular carcinoma. Hepatology. 48, 1312-1327 (2008).
  11. Bruix, J., Sherman, M. Management of hepatocellular carcinoma: an update. Hepatology. 53, 1020-1022 (2011).
  12. Pang, T., Lam, V. Surgical management of hepatocellular carcinoma. World Journal of Hepatology. 7, 245-252 (2015).
  13. Llovet, J., et al. Design and endpoints of clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of the National Cancer Institution. 100, 698-711 (2008).
  14. Mueller, K. Cancer immunology and immunotherapy. Realizing the promise. Introduction. Science. 348, 54-55 (2015).
  15. Gajewski, T., Schreiber, H., Fu, Y. Innate and adaptive immune cells in the tumor microenvironment. Nature Immunology. 14, 1014-1022 (2013).
  16. Ribas, A., Wolchok, J. Combining cancer immunotherapy and targeted therapy. Current Opinion in Immunology. 25, 291-296 (2013).
  17. Postow, M., Callahan, M., Wolchok, J. Immune checkpoint blockade in cancer therapy. Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology. 33, 1974-1982 (2015).
  18. Gao, J., et al. VISTA is an inhibitory immune checkpoint that is increased in ipilimumab therapy in patients with prostate cancer. Nature Medicine. 23, 551-555 (2017).
  19. Hahn, A., Gill, D., Pal, S., Agarwal, N. The future of immune checkpoint cancer therapy after PD-1 and CTLA-4. Immunotherapy. 9, 681-692 (2017).
  20. Remon, J., Besse, B. Immune checkpoint inhibitors in first-line therapy of advanced non-small cell lung cancer. Current Opinion in Oncology. 29, 97-104 (2017).
  21. Kudo, M. Immune checkpoint blockade in hepatocellular carcinoma: 2017 update. Liver Cancer. 6, 1-12 (2017).
  22. Kudo, M. Immune checkpoint inhibition in hepatocellular carcinoma: Basics and ongoing clinical trials. Oncology. 92, 50-62 (2017).
  23. Breous, E., Thimme, R. Potential of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 54, 830-834 (2011).
  24. Sprinzl, M., Galle, P. Facing the dawn of immunotherapy for hepatocellular carcinoma. Journal of Hepatology. 59, 9-10 (2013).
  25. Liu, D., Staveley-O’Carroll, K., Li, G. Immune-based therapy clinical trials in hepatocellular carcinoma. Journal of Clinical Cell Immunology. 6, 376 (2015).
  26. Greten, T., Wang, X., Korangy, F. Current concepts of immune based treatments for patients with HCC: from basic science to novel treatment approaches. Gut. 64, 842-848 (2015).
  27. Koster, B., de Gruijl, T., van den Eertwegh, A. Recent developments and future challenges in immune checkpoint inhibitory cancer treatment. Current Opinion in Oncology. 27, 482-488 (2015).
  28. Johnson, D., Sullivan, R., Menzies, A. Immune checkpoint inhibitors in challenging populations. Cancer. 123, 1904-1911 (2017).
  29. Li, H., et al. Programmed cell death-1 (PD-1) checkpoint blockade in combination with an mTOR inhibitor restrains hepatocellular carcinoma growth induced by hepatoma cell-intrinsic PD-1. Hepatology. 66, 1920-1933 (2017).
  30. Heindryckx, F., Colle, I., van Vlierberghe, H. Experimental mouse models for hepatocellular carcinoma research. International Journal of Experimental Pathology. 90, 367-386 (2009).
  31. Qi, X., et al. Development of inCVAX, in situ cancer vaccine, and its immune response in mice with hepatocellular cancer. Journal of Clinical and Cellular Immunology. 7, 438 (2016).
  32. Qi, X., et al. Development of a radiofrequency ablation platform in a clinically relevant murine model of hepatocellular cancer. Cancer Biology and Therapy. 16, 1812-1819 (2015).
  33. Liu, D., et al. Sunitinib represses regulatory T cells to overcome immunotolerance in a murine model of hepatocellular cancer. Oncoimmunology. 7, 1372079 (2017).
  34. Staveley-O’Carroll, K., et al. In vivo ligation of CD40 enhances priming against the endogenous tumor antigen and promotes CD8+ T cell effector function in SV40 T antigen transgenic mice. Journal of Immunology. 171, 697-707 (2003).
  35. Avella, D., et al. Regression of established hepatocellular carcinoma is induced by chemoimmunotherapy in an orthotopic murine model. Hepatology. 55, 141-152 (2012).
  36. Li, G., et al. Successful chemoimmunotherapy against hepatocellular cancer in a novel murine model. Journal of Hepatology. 66, 75-85 (2017).
  37. Li, G., et al. Nanoliposome C6-ceramide increases the anti-tumor immune response and slows growth of liver tumors in ice. Gastroenterology. 154, 1024-1036 (2018).
  38. Held, W., et al. T antigen expression and tumorigenesis in transgenic mice containing a mouse major urinary protein/SV40 T antigen hybrid gene. EMBO Journal. 8, 183-191 (1989).
  39. Hanahan, D., Weinber, R. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
check_url/fr/59368?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Qi, X., Schepers, E., Avella, D., Kimchi, E. T., Kaifi, J. T., Staveley-O’Carroll, K. F., Li, G. An Oncogenic Hepatocyte-Induced Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Cancer Arising in the Setting of Hepatic Inflammation and Fibrosis. J. Vis. Exp. (151), e59368, doi:10.3791/59368 (2019).

View Video