Summary

Un modelo de cultivo de tejido ex vivo de remodelación del cartílago en explantes de rodilla bovinas

Published: November 03, 2019
doi:

Summary

Aquí, presentamos un protocolo que describe el aislamiento y el cultivo de explantes de cartílago de rodillas bovinas. Este método proporciona una herramienta fácil y accesible para describir los cambios de tejido en respuesta a estímulos biológicos o nuevas terapias dirigidas a la articulación.

Abstract

Los sistemas de cultivo ex vivo cubren una amplia gama de experimentos dedicados al estudio de la función tisular y celular en un entorno nativo. El cartílago es un tejido único importante para el correcto funcionamiento de la articulación sinovial y está constituido por una matriz extracelular densa (ECM), rica en proteoglicano y colágeno tipo II. Los condrocitos son el único tipo de célula presente dentro del cartílago y son generalizados y relativamente bajos en número. Los estímulos externos alterados y la señalización celular pueden conducir a cambios en la composición y el deterioro de la ECM, que son importantes señas de identidad patológicas en enfermedades como la osteoartritis (OA) y la artritis reumatoide.

Los modelos de cartílago ex vivo permiten 1) perfilar alteraciones mediadas por condrocitos de rotación de tejido de cartílago, 2) visualizar la composición del cartílago ECM y 3) reorganizar condrocitos directamente en el tejido. La elaboración de perfiles de estas alteraciones en respuesta a estímulos o tratamientos son de gran importancia en diversos aspectos de la biología del cartílago, y complementan los experimentos in vitro en condrocitos aislados, o modelos más complejos en animales vivos donde las condiciones experimentales son más difíciles de controlar.

Los explantes de cartílago presentan un método traslacional y de fácil acceso para evaluar la remodelación de tejidos en el ECM del cartílago en entornos controlables. Aquí, describimos un protocolo para aislar y cultivar explantes vivos de cartílago bovino. El método utiliza tejido de la rodilla bovina, que es fácilmente accesible desde la carnicería local. Tanto los explantas como el medio de cultivo condicionado se pueden analizar para investigar la rotación de tejidos, la composición de ECM y la función de condrocitos, lo que genera perfiles de modulación de ECM.

Introduction

Los condrocitos producen y mantienen la matriz del cartílago. Con el fin de estudiar la biología de los condrocitos y cómo ellos y el ECM circundante reaccionan a los estímulos externos, es crucial interrogarlos en su entorno nativo1,2. El estudio de la rotación del tejido del cartílago es importante para aumentar la comprensión de los mecanismos subyacentes en enfermedades articulares como la OA, una enfermedad para la que actualmente no existe un tratamiento modificador de la enfermedad. Por lo tanto, existe una necesidad significativa de mejores modelos de traducción2.

La caracterización ex vivo de los efectos celulares y tisulares es esencial para complementar otros modelos preclínicos, tanto in vitro, como cultivos monocapa de condrocitos, como in vivo, como modelos de OA inducidos por cirugía o el modelo de artritis autoinmune inducida por colágeno (CIA ). Numerosos estudios han destacado las diferencias entre cómo se comportan las células en cultivos monocapa 2D y estructuras 3D o en su tejido nativo3,4. Muchas células en capas 2D adoptan morfologías no naturales, incluyendo diferencias en la polaridad celular y la unión tisular, lo que resulta en diferencias visuales y funcionales en las células dentro de los tejidos nativos5. Las diferencias también son evidentes en la funcionalidad de las células, que pueden desplazar la expresión de proteínas, lo que conduce a patrones de diferenciación profundamente alterados, maquinaria reguladora y funcionalidad celular5,6,7 ,8.

El eCM del cartílago consiste principalmente en colágeno tipo II que proporciona un marco de matriz, y agrecan, un proteoglicano que ayuda a retener el líquido dentro del tejido. Otras moléculas de matriz como colágeno tipo IV, VI, IX, X, XI, XII, fibronectina, proteína oligomérica del cartílago (COMP), biglycan, decorin, y perlecan también están presentes9.

Mientras que la etiología de OA sigue sin estar clara10,11, la aparición de la enfermedad se cree que es causada por desequilibrios en los procesos de rotación y reparación de tejidos12,13. La degradación del cartílago articular es un sello distintivo de la OA. Los condrocitos o células residentes en el cartílago en los tejidos circundantes aumentan su liberación de citoquinas, estimulando la producción elevada de proteinasas como las metaloproteinasas matriciales (MMP) y las agresorasas, que aumentan la degradación del cartílago ECM 14. Esta degradación da lugar a la liberación de pequeños fragmentos de proteína únicos llamados neoepítos, que se pueden cuantificar en suero, orina o medio de cultivo15. Tras la formación y maduración del colágeno, también se liberan los llamados profragmentos; estos pueden cuantificarse como medida de la producción de matriz16.

El objetivo de este protocolo es establecer un modelo de cartílago ex vivo para comparar el efecto de la estimulación y/o el tratamiento farmacológico en la rotación de tejido SCM. La rotación del cartílago se perfila midiendo biomarcadores de neoepitopos derivados de la matriz directamente en el medio de cultivo condicionado utilizando ELISA: AGNx1 (que refleja la actividad de la agresorasa), C2M (que refleja la actividad de MMP de matriz) y ProC2 (reflejando colágeno tipo II formación). Los hallazgos pueden ser verificados por la tinción histológica del ECM, que también visualiza la organización de los condrocitos en los explantes individuales. El protocolo descrito se puede utilizar para probar el efecto de nuevos tratamientos sobre la función de condrocitos y la rotación de ECM de cartílago. Varios estudios han utilizado explantes de cartílago para describir procesos biológicos o el efecto de la intervención en explantes con problemas de citoquinas utilizando enfoques histológicos o inmunohistoquímicos cuantitativos, ARNm, expresión de proteínas o proteómica2 ,17,18. Sin embargo, estos protocolos están fuera del alcance del manuscrito actual.

Protocol

1. Aislamiento de tejidos Abastecimiento de tejidos Realice toda la sección de abastecimiento de tejido fuera de una campana de flujo laminar en un entorno aséptico. Del matadero local, obtenga una articulación entera de rodilla tibiofemoral bovina fresca de terneros entre 1,5 y 2 años de edad. Disecciona suavemente la rodilla de la pantorrilla eliminando primero el exceso de carne, descubriendo los cóndilos, el menisco, los tendones y la membrana sinovial. Cortar los tendones…

Representative Results

Los explantes bovinos a profundidad fueron aislados, cultivados y tratados durante 3 semanas(Figura 1). El medio de cultivo se cambió con la adición de tratamiento 3 veces por semana. Una vez por semana, la actividad metabólica se midió mediante el ensayo de resazurina. Los biomarcadores de la rotación de ECM se midieron en el sobrenadante cosechado de la placa de cultivo 3 veces por semana. Los explantas se dividieron en 4 grupos para el tratamiento: 1) Oncostatin M y TNF (O+T); 2) O+T…

Discussion

El protocolo presentado aquí para la elaboración de perfiles de rotación de tejido de cartílago en explantas de cartílago bovino se puede utilizar para caracterizar los efectos del tratamiento de muchos tipos de fármacos, incluidos los inhibidores de las vías intracelulares inflamatorias, los inhibidores de enzimas proteolíticas, o factores de crecimiento anabólicos.

En este protocolo se describieron dos configuraciones diferentes: una configuración anabólica en la que se estimularo…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen al personal técnico de Nordic Bioscience el apoyo de laboratorio, así como a la Fundación Danesa de Investigación por el apoyo general a nuestra investigación.

Materials

45% Iron(III) chloride solution Sigma-Aldrich 12322
Acetic acid Merck 1.00056.2500
Alamar Blue Life tech Invitrogen DAL1100
Biopsy processing cassettes – green IHCWORLD BC-0109G
Biopsy punch W/Plunger (3 mm) Scandidat MTP-33-32
Bovine cartilage (Bovine knees) Local slaughterhouse
C2M Nordic Bioscience Fee for service
Corning 96-well plate Sigma-Aldrich CLS7007
Cover Glass Ø 13 mm VWR 631-0150P
DMEM/F12-GlutaMAX Dulbecco's Modified Eagle Medium/Nutrient Mixture F-12) without HEPES Gibco 31331-028
Ethanol ≥96% VWR 83804.36
Ethanol absolute ≥99.5% VWR 83813.36
exAGNx1 Nordic Bioscience Fee for service
exPRO-C2 Nordic Bioscience Fee for service
Fast green Sigma-Aldrich F7252
Formaldehyde solution 4% Merck 1004965000
GM6001 Sigma-Aldrich M5939-5MG
Hematoxylin Sigma-Aldrich H3136
Hydrochloric acid Merck 30721-M
IGF-1 Sigma-Aldrich I3769-50UG
Oncostatin M Sigma-Aldrich O9635-10UG
Penicillin-streptomycin (P/S) Sigma-Aldrich P4333
Pertex (mounting medium for light microscopy) HistoLab 811
Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich D8537
Safranin O Sigma-Aldrich S2255
Sterile Standard Scalpels Integra Miltex 12-460-451
Sulfuric acid Sigma-Aldrich 30743
SUPERFROST PLUS Adhesion Microscope Slides Thermo scientific J1800AMNT
TNF-alpha R&D Systems 210-TA-100
Toluene Merck 1.08327.2500
Vacuum Filtration "rapid"-Filtermax TPP 99955

References

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Citer Cet Article
Thudium, C. S., Engstrom, A., Groen, S. S., Karsdal, M. A., Bay-Jensen, A. An Ex Vivo Tissue Culture Model of Cartilage Remodeling in Bovine Knee Explants. J. Vis. Exp. (153), e59467, doi:10.3791/59467 (2019).

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