Denne protokol beskriver generering af patient afledte sfæroider og downstream-analyse, herunder kvantificering af proliferation, cytotoksicitets test, flow cytometri, immunofluorescens farvning og konfokale billeder, med henblik på at vurdere Kandidaternes potentiale som anti-neoplastisk terapi. Denne protokol understøtter præcisionsmedicin med identifikation af specifikke lægemidler for hver patient og sygdomsstadie.
I denne protokol skitserer vi proceduren for generering af tumor sfæroider inden for 384-godt hængende dråber for at give mulighed for høj gennemløb screening af anti-cancer Therapeutics i en fysiologisk repræsentative mikromiljø. Vi skitserer dannelsen af patient afledte kræft stamceller sfæroider, samt, manipulation af disse sfæroider til grundig analyse efter narkotikabehandling. Specifikt, vi beskriver indsamling af sfæide morfologi, proliferation, levedygtighed, lægemiddeltoksicitet, celle fænotype og celle lokaliseringsdata. Denne protokol fokuserer stærkt på analyseteknikker, der let implementeres ved hjælp af 384-godt hængende drop platform, hvilket gør den ideel til høj gennemstrømning Drug screening. Mens vi understrege betydningen af denne model i ovariecancer undersøgelser og kræft stamcelleforskning, den 384-Well platform er modtagelig for forskning af andre kræfttyper og sygdomsmodeller, udvide nytten af platformen til mange områder. Ved at forbedre hastigheden af personlig Drug screening og kvaliteten af screening resultater gennem let implementeret fysiologisk repræsentative 3D-kulturer, denne platform er forudsagt til at støtte i udviklingen af nye lægemidler og patient-specifikke behandlingsstrategier og har dermed vidtrækkende klinisk virkning.
Verdensomspændende kræft relateret dødelighed nåede en vejafgift på 9.800.000 dødsfald i 20181, hvilket understreger behovet for udvikling af forbedrede terapeutiske. Desværre, omkostningerne ved at udvikle kræftmedicin er stigende, med udviklingen af et enkelt stof koster ca 650.000.000 USD2 angiver behovet for forbedrede strategier til at udvikle nye anti-cancer narkotika. Kræft stamceller (CSCs), som er karakteriseret ved øget chemoresistance3, evnen til at selv forny, og evnen til at frø nye tumorer4 menes at være ansvarlig for tumor recidiv4, metastase5, og chemoresistance4,6, som alle bidrager til den maligne kapacitet af tumoren og dermed den høje dødstal. I kræft i æggestokkene, disse celler er fundet beriget i den maligne ascites væske i bughulen, en tilstand forbundet med dårlige kliniske resultater1. Som et resultat af de ondartede kapaciteter af CSCs, har der været et skub til at udvikle nye CSC målretning narkotika til brug i forbindelse med traditionelle kemoterapeutika. Der er flere udfordringer, der ledsager udviklingen af CSC målretning narkotika herunder: 1) vanskeligheder med at udvide og vedligeholde CSCs in vitro; 2) mangel på patientprøver; 3) den fysiologiske relevans af kultur platformen; og 4) heterogenitet i lægemiddel følsomhed mellem patienter. Denne protokol skitserer gennemførelsen af en høj gennemløb 3D kultur platform, der kan overvinde hver af disse udfordringer. Dette system giver især mulighed for hurtig lægemiddel screening ved hjælp af et lille antal patient afledte ovarie-CSCs og er meget modtagelig for downstream-analyseteknikker. Mens ideel til at studere kræft i æggestokkene og CSCs, vores platform er også værdifuldt i at studere andre kræftformer og differentierede celletyper i komplekse 3D-miljøer.
Komplekse 3-dimensionelle (3D) modeller er afgørende for at studere tumor mikromiljø (TME), som er en 3D niche består af kræftceller, ikke-kræft støtte celler, og ekstracellulære matrix (ECM) proteiner4. Dette 3D-miljø resulterer i unikke celle morfologi, celle celle-og cellematrix interaktioner, Celledifferentiering, celle migration, celletæthed og diffusions gradienter sammenlignet med traditionel 2D-cellekultur in vitro4. Alle disse faktorer kulminerede i differentiallægemiddel respons inden for 3D-kulturer, udviser øget resistens over for lægemidler og fysiologisk relevans7,8. På grund af den rolle 3D TME i CSC differentiering og chemoresistance, er det vigtigt at screene for CSC målretning narkotika i fysiologisk mikromiljøer. Forbedring af den fysiologiske relevans af CSC Drug screening platforme har potentiale til at forbedre patientspecifikke Drug screening, narkotika udvikling, formulering af behandlingsstrategier, og i sidste ende kliniske resultater. Det er lige så vigtigt, at platformen anvendes til Drug screening være høj gennemløb og kompatibel med downstream analysemetoder til at minimere omkostninger, tid og klinisk oversættelse tid af lovende narkotika9.
I øjeblikket, den komplekse TME er bedst vedligeholdt for Drug screening applikationer gennem in vivo modeller såsom murine og tumormodeller, celle line-afledte xenografts, og patient-afledte xenograft (PDX) modeller12, da de giver fysiologisk Betingelser. Men den lave-gennemløb karakter af disse modeller, samt, de omkostninger, tid, og tekniske færdigheder, som de kræver begrænser deres nytte i hurtige, høj gennemløb Drug screening applikationer13. Som alternativer til disse in vivo modeller, mange in vitro 3D-modeller udnytter silicagelrogeler8, kultur inden for mikrofluidisk enheder eller ‘ orgel-on-a-chip ‘ enheder10,14, og ikke-tilhængere kulturer3,8 er også blevet udviklet på grund af deres lave adgangsbarriere i form af omkostninger, tid og krævede skillset.
Hydrogel kultur platforme er fordelagtige i den fine kontrol, der ydes over matrix sammensætning, mekaniske egenskaber, og matrixstruktur15; Men, de kan hæmme høj densitet cellekultur14. Desuden, høst celler fra silicagelrogeler kan komplicere downstream analyse, på grund af potentielt skadelige virkninger af høstmetoder15. Microfluidic-enheder er på den anden side mikroskala anordninger, der giver mulighed for output detektering inden for samme enhed og for cellekultur på fysiologisk relevante skalaer med minimal indtagelse af reagenser, nedsat reaktionstid, minimeret spild og hurtig diffusion14. Disse egenskaber gør dem lovende platforme for at undersøge lægemiddeltoksicitet, virkning og farmakokinetik. Men udfordringerne ved effektiv, kvantificerbar, reproducerbare og brugervenlig 3D-cellekultur samt, voluminøse og dyre pumpesystemer har begrænsede mikrofluidiske applikationer i forskning med høj gennemløb10. Effektive detekterings opsætninger og potentielt vanskelige gennemførelse på tværs af felter har også forhindret udbredt anvendelse af mikrofluidisk-systemer10.
I modsat, sfæroider genereret i ikke-vedhængende forhold i roterende blandere (nutatorer), ultra-lav vedhæftnings plader og hængende dråber omfatter ikke brugerdefinerede matrixkomponenter. Disse metoder er især relevante for studiet af kræft i æggestokkene, da de ikke-overliggende betingelser er repræsentative for de tilstande, hvor sfæroider vokser inden for bughulen5. Inden for disse ikke-vedhængende dyrkningsmetoder har nutator og hængende dråbe sfæroider vist sig at udvise højere komprimering, remodeling og chemoresistance sammenlignet med sfæroider genereret i ultra-lave fastgørelses plader, hvilket tyder på øget fysiologisk relevans16,17,18,19. På grund af øget kapacitet til høj gennemløbs screening fra mindre brønd størrelser og minimale påkrævede cellenumre er sfæroide-generering i hængende dråbe plader en ideel platform til lægemiddel screening. Her præsenterer vi en tunable 3D fysiologisk platform i 384-godt hængende dråbe plader, der er let at implementere og meget modtagelig for downstream analyse, hvilket gør det ideelt til høj gennemløb Drug screening af kræft i æggestokkene og æggestokkene CSCs.
Vores 3D fysiologisk platform giver alle fordelene ved 3D-kultur, herunder fysiologiske celle celle kontakter, diffusions gradienter, celle tætheder og naturligt producerede ECM-proteiner, som kan bidrage til realistiske lægemiddel responser16, 17,18,19. Desuden, ved at generere disse sfæroider med patient-afledte CSCs, vi er i stand til at bestemme patientens specifikke respons på narkotika1 med mange tekniske replikater samtidig, at overvinde heterogenitet, der kan findes inden patient tumor prøver20. Desuden, 3D kultur har vist sig at øge vedligeholdelsen af CSC populationer3,16 og dermed er repræsentativ for beriget CSC populationer i ascites7. Dette kombineret med let downstream analyse, herunder flow flowcytometri analyse af levedygtighed og CSC proportioner giver mulighed for optimal evaluering af CSC målretning Drug effekt. Endelig er denne fysiologiske platform kompatibel med billeddannelse på flere tidspunkter under eksperimentet, evaluering af celledød og-spredning, celle organisering og morfologi med immun histokemi, opløselig signalering med ELISA på konditioneret mellem, celle fænotyper med flow cytometri og genekspression efter PCR.
384-godt hængende drop Plate platform til 3D sfæroide formation er et let implementeret værktøj til enhver cellebiologi eller cancerbiologi Labs. Denne fysiologiske platform muliggør studiet af cellelinjer, samt, primære patientprøver inden for fysiologisk relevante 3D-kulturer samtidig giver mulighed for høj gennemstrømning Drug screening. Platformen sikrer også, at kultur forholdene er meget tunbare, hvilket muliggør stram kontrol over plating tætheder, celle Co-kultur nøgletal, ekstracellulære komponente…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde støttes primært af DOD OCRP Early Career investigators Award W81XWH-13-1-0134 (GM), DOD pilot Award W81XWH-16-1-0426 (GM), DOD investigator initieret Award W81XWH-17-OCRP-IIRA (GM), Rivkin Center for ovariecancer og Michigan ovariecancer Alliance. Forskning rapporteret i denne publikation blev støttet af National Cancer Institute i National Institutes of Health under tildeling nummer P30CA046592. CMN er understøttet af National Science Foundation Graduate Research Fellowship i henhold til Grant No. 1256260. MEB støttes af Department of Education graduate assistance i områder af national Need (GAANN) Fellowship.
0.25% trypsin-EDTA | Gibco | ILT25200056 | |
10 mL serological pipet | Fisher Scientific | 13-678-11E | |
10,000 cSt Si oil | Millipore Sigma | 63148-62-9 | Used to coat spheroid array mold to facilitate removal of tissue processing gels, like Histogel, from the mold. |
100 mm tissue culture dish | Thermo Scientific | 130182 | |
15 ml conical tube | Celltreat | FL4021 | |
1X DMEM for Serum Free Medium | Gibco | 11965-092 | |
1X F12 for Serum Free Medium | Gibco | 11765-054 | |
1X phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | ILT10010023 | |
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Thermo Fisher | D1306 | |
40 µm filter | Fisher Scientific | 22363547 | |
6-well plate | Fisher Scientific | 353046 | |
Accutase | Innovative Cell Technologies Inc. | 1449 | A gentle cell detachment enzyme composed of proteolytic and collagenolytic enzymes. |
ACK Lysing Buffer | Thermo Scientific | A1049201 | |
alamarBlue | Invitrogen | DAL1025 | Resazurin dye used to measure viability and proliferation of cells based on their ability to reduce resazurin to resorufin, which is highly fluorescent. |
ALDEFLUOR assay kit | Stem Cell Tech | 1700 | Kit to identify stem and progenitor cells that express high levels of aldehyde dehydrogenase , an indicator of cancer stem cells. The kit is composed of ALDEFLUOR Reagent, DEAB, Hydrochloric Acid, Dimethylsulphoxide, and ALDEFLUOR Assay Buffer. |
ALDEFLUOR Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) | Stem Cell Tech | 1705 | Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) is an inhibitor of ALDH isozymes, used to determine non-specific ALDH staining. |
Andor iXon x3 CCD Camera | Oxford Instruments | – | |
Antibiotics and Antimycotics | Gibco | 15240-062 | |
APC-isotype IgG2b | Miltenyi biotec | 130-092-217 | Isotype control to quantify non-specific staining of IgG2b antibodies. |
B27 Supplement | Gibco | 17504044 | |
basic Fibroblast Growth Factor | Stem Cell Technologies | 78003.1 | |
BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes | Fisher Scientific | 14-826-79 | |
BioTek Synergy HT Microplate Reader | BioTek | 7091000 | |
CD133-APC | Miltenyi biotec | 130-113-184 | Fluorescent antibody targeting CD133, a cancer stem cell marker. |
cellSens Dimension Software | Olympus | ||
Cisplatin | Sigma-Aldrich | P4394 | Platinum based chemotherapy agent that functions as an alkylating agent that disrupts DNA. |
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) | Invitrogen | D1306 | |
Epidermal Growth Factor | Gibco | PHG0311 | |
EVOS XL Core Cell Imaging System | Life Technologies | AME3300 | |
Fetal Bovine Serum – premium (FBS) | Atlanta Biologicals | S11150 | |
Ficoll 400 | Sigma-Aldrich | F4375 | |
Hemacytometer | Hausser Scientific | 1490 | |
Histogel | Thermo Scientific | HG-4000-012 | Tissue processing gel that can penetrate and hold the specimen within the gel while preventing discoloration around the specimen upon staining. |
Human Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells | Lonza | PT-5006 | |
Human Microvascular Endothelial Cells | Lonza | CC2543 | |
Insulin-Transferrin-Selenium Supplement | Gibco | 51500-056 | |
Live/Dead viability kit | Invitrogen | L3224 | Kit for the fluorescence based detection of live (calcein-AM) and dead cells (Ethidium Homodimer-1). |
MEM Non-essential Amino Acids | Gibco | 11140-050 | |
MetaMorph 7.8 Software | Molecular Devices | – | |
Olympus IX81 Inverted Confocal Microscope | Olympus | – | |
Olympus IX83 Research Inverted Microscope | Olympus | ||
Parafilm M | Thomas Scientific | 7315D35 | Thermoplastic polymer strips that serve to limit droplet evaporation in hanging drop plates while still allowing for gas exchange. |
Perfecta 3D 384 Well Hanging Drop Plates | 3D Biomatrix | HDP1384-8 | Available through Sigma-Aldrich |
phalloidin AlexaFluor488 | Invitrogen | A12379 | Phalloidin is a peptide to fluorescently label F-actin in fixed cells. |
ProJet 3500 HD Max | 3D Systems | – | 3D printer |
Sterile DI water | Fisher Scientific | 353046 | |
Trypan Blue | Gibco | 15250061 | Azo dye used to differentiate between live and dead cells based on its ability to pass through the damaged membrane of dead cells, but not the intact membrane of live cells. |
VisiJet M3 Crystal | 3D Systems | – | A biocompatible polymer material for 3D printing. |
Yokogawa CSU-X1 Confocal Scanner Unit | Yokogawa | – |