Summary

Fysiologiske pasient avledet 3D Spheroids for anti-neoplastic Drug screening å målrette Cancer stamceller

Published: July 05, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver generering av pasient-avledet spheroids, og nedstrøms analyse inkludert kvantifisering av spredning, cytotoksisitet testing, flyt flowcytometri, immunofluorescence farging og konfokalmikroskopi bildebehandling, for å vurdere narkotika potensielle neoplastic legemidler. Denne protokollen støtter presisjons medisin med identifisering av spesifikke medikamenter for hver pasient og stadium av sykdom.

Abstract

I denne protokollen, vi skissere fremgangsmåten for generering av tumor spheroids innen 384-vel hengende dråper for å muliggjøre høy gjennomstrømming screening av anti-kreft legemiddel selskap i en fysiologisk representant mikromiljøet. Vi skisserer dannelsen av pasienten avledet kreft stilk cellen spheroids, samt manipulering av disse spheroids for grundige analyser etter behandling. Nærmere bestemt beskriver vi innsamling av spheroid morfologi, spredning, levedyktighet, legemiddel toksisitet, celle fenotype og celle lokaliseringsdata. Denne protokollen fokuserer tungt på analyse teknikker som er lett implementeres ved hjelp av 384-godt hengende slipp plattform, noe som gjør den ideell for høy gjennomstrømming narkotika screening. Mens vi understreke viktigheten av denne modellen i eggstokkene kreft studier og kreft stilk cellen forskning, er 384-brønn plattform mottagelig for forskning av andre krefttyper og sykdom modeller, utvide nytten av plattformen til mange felt. Ved å forbedre hastigheten på personlig narkotika screening og kvaliteten på screening resultater gjennom enkelt implementert fysiologisk representative 3D-kulturer, er denne plattformen spådd til hjelp i utviklingen av nye legemiddel-og pasientspesifikke behandlings strategier, og dermed ha vidtrekkende klinisk effekt.

Introduction

Verdensomspennende kreft-relatert dødelighet nådde en toll på 9 800 000 dødsfall i 20181, fremhever behovet for utvikling av forbedrede legemiddel selskap. Dessverre, er kostnaden for å utvikle kreft narkotika økende, med utviklingen av et enkelt stoff koster ca 650 000 000 USD2 indikerer behovet for forbedrede strategier for å utvikle nye anti-kreft narkotika. Kreft stamceller (CSCs), som er preget av økt chemoresistance3, evne til å fornye seg selv, og evnen til å frø nye svulster4 antas å være ansvarlig for tumor gjentakelse4, metastasering5, og chemoresistance4,6, som alle bidrar til ondartet kapasitet av svulsten og dermed høye dødstallene. I kreft i eggstokkene finnes disse cellene beriket i den ondartede ascites væsken i bukhulen, en tilstand knyttet til dårlige kliniske utfall1. Som et resultat av den ondartede evnene til CSCs, har det vært et push å utvikle nye CSC målretting narkotika å bruke i forbindelse med tradisjonelle chemotherapies. Det er flere utfordringer som følger utviklingen av CSC målretting narkotika inkludert: 1) vanskeligheter med å utvide og vedlikeholde CSCs in vitro; 2) knapphet på pasientprøver; 3) fysiologisk relevans av kulturen plattformen; og 4) heterogenitet i legemiddel følsom het mellom pasientene. Denne protokollen skisserer implementeringen av en 3D kultur plattform med høy gjennomstrømming som kan overvinne hver av disse utfordringene. Spesielt gir dette systemet for rask narkotika screening ved hjelp av et lite antall pasient-avledet eggstokkene CSCs, og er svært mottagelig for nedstrøms analyse teknikker. Selv om det er ideelt for å studere kreft i eggstokkene og CSCs, er plattformen også verdifull når det gjelder å studere andre typer kreft og forskjellige celler i komplekse 3D-miljøer.

Komplekse 3-dimensjonale (3D) modeller er avgjørende i å studere tumor mikromiljøet (TME), som er en 3D nisje bestående av kreftceller, ikke-kreft støtte celler, og ekstracellulære matrise (ECM) proteiner4. Denne 3D-miljø resulterer i unike celle morfologi, celle-celle og celle-matrise interaksjoner, celle differensiering, celle migrasjon, celle tetthet, og diffusjon graderinger sammenlignet med tradisjonelle 2D cellekultur in vitro4. Alle disse faktorene kulminere i differensial narkotika respons i 3D-kulturer, viser økt resistens og fysiologiske relevans7,8. På grunn av rollen til 3D TME i CSC differensiering og chemoresistance, er det viktig å skjermen for CSC målretting narkotika i fysiologiske microenvironments. Forbedre fysiologiske relevansen av CSC narkotika screening plattformer har potensial til å forbedre pasientens spesifikke narkotika screening, narkotika utvikling, formulering av behandlings strategier, og til slutt kliniske utfall. Det er like viktig at plattformen som brukes for narkotika screening være høy gjennomstrømming og kompatibel med nedstrøms analysemetoder for å minimere kostnader, tid og klinisk oversettelse tid lovende narkotika9.

Foreløpig er det komplekse TME best vedlikeholdt for narkotika screening applikasjoner gjennom in vivo modeller som murine syngeneic tumor modeller, cellelinje-avledet xenotransplantater, og pasient-avledet xenograft (PDX) modeller12, som de gir fysiologiske Forhold. Men den lave gjennomstrømningen natur disse modellene, samt, kostnaden, tid og tekniske ferdigheter som de krever begrenser deres nytte i rask, høy gjennomstrømming narkotika screening programmer13. Som alternativ til disse in vivo-modellene har mange in vitro 3D-modeller som bruker hydrogeler8, kultur innen mikrovæskebasert enheter eller ‘ organ-on-a-chip ‘-enheter10,14, og ikke-tilhenger kulturer3,8 har også blitt utviklet, på grunn av deres lave barriere til oppføring i form av kostnader, tid og nødvendige skillset.

Hydrogel kultur plattformer er fordelaktig i fin kontroll by over matrisen sammensetning, mekaniske egenskaper, og matrise struktur15; men de kan hemme høy tetthet cellekultur14. I tillegg kan høsting celler fra hydrogeler komplisere nedstrøms analyse, på grunn av potensielt skadelige effekter av høsting metoder15. Mikrovæskebasert enheter, derimot, er Mikroskala enheter som tillater for utdata deteksjon innenfor samme enhet og for cellekultur på fysiologisk relevante skalaer med minimalt forbruk av reagenser, redusert reaksjonstid, minimert avfall, og rask diffusjon14. Disse egenskapene gjør dem lovende plattformer for å undersøke medikament toksisitet, effekt og farmakokinetikken. Utfordringene med effektiv, målbar, reproduserbar og brukervennlig 3D cellekultur, samt, store og kostbare pumpesystemer har begrenset mikrovæskebasert applikasjoner i høy gjennomstrømming forskning10. Effektiv deteksjon oppsett og potensielt vanskelig implementering på tvers av felt har også hindret utbredt adopsjon av mikrovæskebasert systemer10.

Contrarily, spheroids generert i ikke-tilhenger forhold i roterende miksere (nutators), ultra-lav festeplater, og hengende dråper inkluderer ikke brukerdefinerte matrise-komponenter. Disse metodene er spesielt relevant for å studere eggstokkene kreft som ikke-tilhenger forholdene er representative for forholdene der spheroids vokser i bukhulen5. Innenfor disse ikke-tilhenger kultur metoder, nutator og hengende drop spheroids har vist å vise høyere komprimering, remodeling, og chemoresistance sammenlignet med spheroids generert i Ultra-Low vedlegg plater, noe som tyder på økt fysiologiske relevans16,17,18,19. På grunn av økt kapasitet for screening med høy gjennomstrømming fra mindre brønn størrelser og minimalt nødvendige celle tall, er spheroid generasjon i hengende dråpe plater en ideell plattform for narkotika screening. Her presenterer vi en tunable 3D fysiologiske plattform i 384-vel hengende drop plater, som er lett å implementere og svært mottagelig for nedstrøms analyse, noe som gjør den ideell for høy gjennomstrømning narkotika screening av eggstokkene kreft og eggstokkene CSCs.

Vår 3D fysiologiske-plattform gir alle fordelene med 3D-kultur, inkludert fysiologiske celle kontakter, diffusjon graderinger, celle tetthet og naturlig produserte ECM-proteiner, som kan bidra til realistiske narkotika responser16, 17,18,19. I tillegg, ved å generere disse spheroids med pasient-avledet CSCs, er vi i stand til å bestemme pasientens konkrete tiltak mot narkotika1 med mange tekniske replikerer samtidig, for å overvinne heterogenitet som kan finnes i pasientens svulst prøvene20. Videre har 3D-kultur vist å øke vedlikeholdet av CSC populasjoner3,16 og dermed er representativt for beriket CSC populasjoner i ascites7. Dette kombinert med enkel nedstrøms analyse, inkludert flyt flowcytometri analyse av levedyktighet og CSC proporsjoner gir optimal evaluering av CSC målretting narkotika effekt. Til slutt, denne fysiologiske plattform er forenlig med tenkelig for mangfoldig tid meningene under eksperiment, bedømmelse av cellen død og spredning, cellen organisasjon og morfologi med immunhistokjemi, løselig signal med ELISA opp på betinget medium, celle fenotyper med Flow flowcytometri, og genuttrykk etter PCR.

Protocol

Alle pasientprøver er samlet under en godkjent IRB protokoll fra samtykkende pasienter, hvis prøvene er de-identifisert etter tumor “debulking” og ascites samling. 1. generering av Spheroids fra små celle tall i 384-brønn hengende drop plater Plasser den hengende dråpe platen i en sonicator fylt med sterilt deionisert (DI) vann og sonikere i 20 min. Med en hansker hånd fjerner du platen fra sonicator og vasker den med rennende DI vann. La platen til å sitte…

Representative Results

Spheroids dannet med cellelinjer eller pasient-avledet CSCs kan dannes med en rekke små celle tall innenfor hengende dråper (figur 2a). Spheroids skjema pålitelig med så få som 10 celler per brønn, noe som gir mulighet for bevaring av sjeldne pasientprøver. Celler innenfor disse spheroids er omgitt av andre celler i 3 dimensjoner som de ville være i Vivo, slik at for fysiologiske celle-celle-kontakter og diffusjon priser. Tumor celler i spheroids sprer seg forårsaker at spheroids ut…

Discussion

Den 384-godt hengende drop plate plattform for 3D spheroid formasjon er en lett implementert verktøy for enhver cellebiologi eller kreft biologi laboratorier. Denne fysiologiske plattformen gjør det mulig å studere cellelinjer, i tillegg til primær pasientprøver innen fysiologisk relevante 3D-kulturer, samtidig som det gir høy gjennomstrømming for narkotika screening. Plattformen sikrer også at kultur forholdene er svært tunable, noe som gir tett kontroll over plating tetthet, celle co-kultur prosenter, ekstrace…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet hovedsakelig av DOD OCRP tidlig karriere etterforsker Award W81XWH-13-1-0134 (GM), DOD pilot Award W81XWH-16-1-0426 (GM), DOD etterforsker initiert prisen W81XWH-17-OCRP-IIRA (GM), Rivkin Center for eggstokkene kreft og Michigan eggstokkene Cancer Alliansen. Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av National Cancer Institute of National Institutes of Health under pris nummer P30CA046592. CMN er støttet av National Science Foundation Graduate Research Fellowship under Grant no. 1256260. MEB støttes av Department of Education Graduate Assistance i områder av National Need (GAANN) Fellowship.

Materials

0.25% trypsin-EDTA Gibco ILT25200056
10 mL serological pipet Fisher Scientific 13-678-11E
10,000 cSt Si oil Millipore Sigma 63148-62-9 Used to coat spheroid array mold to facilitate removal of tissue processing gels, like Histogel, from the mold.
100 mm tissue culture dish Thermo Scientific 130182
15 ml conical tube Celltreat FL4021
1X DMEM for Serum Free Medium Gibco 11965-092
1X F12 for Serum Free Medium Gibco 11765-054
1X phosphate buffered saline (PBS) Gibco ILT10010023
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Thermo Fisher D1306
40 µm filter Fisher Scientific 22363547
6-well plate Fisher Scientific 353046
Accutase Innovative Cell Technologies Inc. 1449 A gentle cell detachment enzyme composed of proteolytic and collagenolytic enzymes.
ACK Lysing Buffer Thermo Scientific A1049201
alamarBlue Invitrogen DAL1025 Resazurin dye used to measure viability and proliferation of cells based on their ability to reduce resazurin to resorufin, which is highly fluorescent.
ALDEFLUOR assay kit Stem Cell Tech 1700 Kit to identify stem and progenitor cells that express high levels of aldehyde dehydrogenase , an indicator of cancer stem cells. The kit is composed of ALDEFLUOR Reagent, DEAB, Hydrochloric Acid, Dimethylsulphoxide, and ALDEFLUOR Assay Buffer.
ALDEFLUOR Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) Stem Cell Tech 1705 Diethylaminobenzaldehyde (DEAB) is an inhibitor of ALDH isozymes, used to determine non-specific ALDH staining.
Andor iXon x3 CCD Camera Oxford Instruments
Antibiotics and Antimycotics Gibco 15240-062
APC-isotype IgG2b Miltenyi biotec 130-092-217 Isotype control to quantify non-specific staining of IgG2b antibodies.
B27 Supplement Gibco 17504044
basic Fibroblast Growth Factor Stem Cell Technologies 78003.1
BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes Fisher Scientific 14-826-79
BioTek Synergy HT Microplate Reader BioTek 7091000
CD133-APC Miltenyi biotec 130-113-184 Fluorescent antibody targeting CD133, a cancer stem cell marker.
cellSens Dimension Software Olympus
Cisplatin Sigma-Aldrich P4394 Platinum based chemotherapy agent that functions as an alkylating agent that disrupts DNA.
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Invitrogen D1306
Epidermal Growth Factor Gibco PHG0311
EVOS XL Core Cell Imaging System Life Technologies AME3300
Fetal Bovine Serum – premium (FBS) Atlanta Biologicals S11150
Ficoll 400 Sigma-Aldrich F4375
Hemacytometer Hausser Scientific 1490
Histogel Thermo Scientific HG-4000-012 Tissue processing gel that can penetrate and hold the specimen within the gel while preventing discoloration around the specimen upon staining.
Human Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells Lonza PT-5006
Human Microvascular Endothelial Cells Lonza CC2543
Insulin-Transferrin-Selenium Supplement Gibco 51500-056
Live/Dead viability kit Invitrogen L3224 Kit for the fluorescence based detection of live (calcein-AM) and dead cells (Ethidium Homodimer-1).
MEM Non-essential Amino Acids Gibco 11140-050
MetaMorph 7.8 Software Molecular Devices
Olympus IX81 Inverted Confocal Microscope Olympus
Olympus IX83 Research Inverted Microscope Olympus
Parafilm M Thomas Scientific 7315D35 Thermoplastic polymer strips that serve to limit droplet evaporation in hanging drop plates while still allowing for gas exchange.
Perfecta 3D 384 Well Hanging Drop Plates 3D Biomatrix HDP1384-8 Available through Sigma-Aldrich
phalloidin AlexaFluor488 Invitrogen A12379 Phalloidin is a peptide to fluorescently label F-actin in fixed cells.
ProJet 3500 HD Max 3D Systems 3D printer
Sterile DI water Fisher Scientific 353046
Trypan Blue Gibco 15250061 Azo dye used to differentiate between live and dead cells based on its ability to pass through the damaged membrane of dead cells, but not the intact membrane of live cells.
VisiJet M3 Crystal 3D Systems A biocompatible polymer material for 3D printing.
Yokogawa CSU-X1 Confocal Scanner Unit Yokogawa

References

  1. . . All cancers Source: Globocan. , (2018).
  2. Prasad, V., Mailankody, S. Research and Development Spending to Bring a Single Cancer Drug to Market and Revenues After Approval. JAMA Internal Medicine. 177, 1569-1575 (2017).
  3. Raghavan, S., et al. Personalized Medicine Based Approach to Model Patterns of Chemoresistance and Tumor Recurrence Using Ovarian Cancer Stem Cell Spheroids. Clinical Cancer Research. 23 (22), 6934-6945 (2017).
  4. Jordan, C. T., Guzman, M. L., Noble, M. Cancer Stem Cells. New England Journal of Medicine. 355, 1253-1261 (2006).
  5. Ishiguro, T., et al. Establishment and Characterization of an In Vitro Model of Ovarian Cancer Stem-like Cells with an Enhanced Proliferative Capacity. Recherche en cancérologie. 76, 150-160 (2016).
  6. Páez, D., et al. Cancer Dormancy: A Model of Early Dissemination and Late Cancer Recurrence. Clinical Cancer Research. 18, 645-653 (2012).
  7. Ahmed, N., Stenvers, K. L. Getting to Know Ovarian Cancer Ascites: Opportunities for Targeted Therapy-Based Translational Research. Frontiers in Oncology. 3, (2013).
  8. Pradhan, S., Clary, J. M., Seliktar, D., Lipke, E. A. A three-dimensional spheroidal cancer model based on PEG-fibrinogen hydrogel microspheres. Biomaterials. 115, 141-154 (2017).
  9. Varna, M., Bertheau, P., Legrès, L. Tumor Microenvironment in Human Tumor Xenografted Mouse Models. Journal of Analytical Oncology. 3, 159-166 (2014).
  10. Huang, S. B., et al. An integrated microfluidic cell culture system for high-throughput perfusion three-dimensional cell culture-based assays: Effect of cell culture model on the results of chemosensitivity assays. Lab on a Chip. 13, 1133-1143 (2013).
  11. Zang, R., Li, D., Tang, I. C., Wang, J., Yang, S. T. Cell-Based Assays in High-Throughput Screening for Drug Discovery. International Journal of Biotechnology for Wellness Industries. , (2012).
  12. Murphy, B., et al. Evaluation of alternative in vivo drug screening methodology: a single mouse analysis. Recherche en cancérologie. 76, 5798-5809 (2016).
  13. Hidalgo, M., et al. Patient-derived Xenograft models: An emerging platform for translational cancer research. Cancer Discovery. 4, 998-1013 (2014).
  14. Damiati, S., Kompella, U. B., Damiati, S. A., Kodzius, R. Microfluidic devices for drug delivery systems and drug screening. Genes. 9, (2018).
  15. Caliari, S. R., Burdick, J. A. A Practical Guide to Hydrogels for Cell Culture. Nature Methods. 14, 69-81 (2016).
  16. Mehta, G., Hsiao, A. Y., Ingram, M., Luker, G. D., Takayama, S. Opportunities and challenges for use of tumor spheroids as models to test drug delivery and efficacy. Journal of Control Release. , (2012).
  17. Mehta, P., Novak, C., Raghavan, S., Ward, M., Mehta, G., Papaccio, G., Desiderio, V. Self-Renewal and CSCs In Vitro Enrichment: Growth as Floating Spheres. Cancer Stem Cells: Methods and Protocols. , 61-75 (2018).
  18. Raghavan, S., et al. Formation of stable small cell number three-dimensional ovarian cancer spheroids using hanging drop arrays for preclinical drug sensitivity assays. Gynecologic Oncology. 138, 181-189 (2015).
  19. Raghavan, S., et al. Comparative analysis of tumor spheroid generation techniques for differential in vitro drug toxicity. Oncotarget. 7, 16948-16961 (2016).
  20. Kim, S., et al. Evaluating Tumor Evolution via Genomic Profiling of Individual Tumor Spheroids in a Malignant Ascites. Scientific Reports. 8, 1-11 (2018).
  21. Silva, I. A., et al. Aldehyde dehydrogenase in combination with CD133 defines angiogenic ovarian cancer stem cells that portend poor patient survival. Recherche en cancérologie. 71, 3991-4001 (2011).
  22. Pulaski, H. L., et al. Identifying alemtuzumab as an anti-myeloid cell antiangiogenic therapy for the treatment of ovarian cancer. Journal of Translational Medicine. 7, 49 (2009).
  23. Jager, L. D., et al. Effect of enzymatic and mechanical methods of dissociation on neural progenitor cells derived from induced pluripotent stem cells. Advances in Medical Sciences. 61, 78-84 (2016).
  24. Ivanov, D. P., Grabowska, A. M. Spheroid arrays for high-throughput single-cell analysis of spatial patterns and biomarker expression in 3D. Scientific Reports. 7, 41160 (2017).
check_url/fr/59696?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bregenzer, M. E., Davis, C., Horst, E. N., Mehta, P., Novak, C. M., Raghavan, S., Snyder, C. S., Mehta, G. Physiologic Patient Derived 3D Spheroids for Anti-neoplastic Drug Screening to Target Cancer Stem Cells. J. Vis. Exp. (149), e59696, doi:10.3791/59696 (2019).

View Video