Summary

स्ट्रेप्टोकॉकस म्यूटान में एक उच्च आण्विक द्रव्यमान प्रोटीन की शुद्धि

Published: September 14, 2019
doi:

Summary

यहाँ वर्णित स्ट्रेप्टोकॉकस म्यूटानमें जीन उत्पाद की शुद्धि के लिए एक सरल विधि है . इस तकनीक प्रोटीन की शुद्धि में फायदेमंद हो सकता है, विशेष रूप से झिल्ली प्रोटीन और उच्च आणविक बड़े पैमाने पर प्रोटीन, और विभिन्न अन्य जीवाणु प्रजातियों के साथ इस्तेमाल किया जा सकता है.

Abstract

एक जीन के समारोह के स्पष्टीकरण आम तौर पर जंगली प्रकार उपभेदों और उपभेदों जिसमें ब्याज के जीन बाधित किया गया है के phenotypic लक्षण की तुलना शामिल है. जीन व्यवधान के बाद कार्य की हानि बाद में बाधित जीन के उत्पाद के बहिर्जात योग द्वारा बहाल की जाती है। यह जीन के कार्य को निर्धारित करने में मदद करता है। एक विधि पहले वर्णित एक gtfC जीन-विघटित Streptococus mutans तनाव पैदा करना शामिल है. यहाँ, एक unmanding विधि जीन व्यवधान के बाद नव उत्पन्न एस mutans तनाव से gtfC जीन उत्पाद को शुद्ध करने के लिए वर्णित है. यह ब्याज की जीन के 3 “अंत में एक polyhistidine-कोडिंग अनुक्रम के अलावा शामिल है, जो स्थिर धातु आत्मीयता क्रोमैटोग्राफी का उपयोग जीन उत्पाद के सरल शुद्धि की अनुमति देता है. पीसीआर के अलावा कोई एंजाइमी प्रतिक्रियाओं इस विधि में आनुवंशिक संशोधन के लिए आवश्यक हैं। जीन विघटन के बाद exogenous इसके अलावा द्वारा जीन उत्पाद की बहाली जीन समारोह है, जो भी विभिन्न प्रजातियों के लिए अनुकूलित किया जा सकता है निर्धारित करने के लिए एक कुशल तरीका है.

Introduction

एक जीन के समारोह के विश्लेषण आमतौर पर जिसमें ब्याज के जीन बाधित किया गया है उपभेदों के लिए जंगली प्रकार उपभेदों के phenotypic लक्षण की तुलना शामिल है. एक बार जीन-विक्षिंघरित तनाव का उत्पादन किया जाता है, जीन उत्पाद के exogenous इसके अलावा कार्यात्मक बहाली की अनुमति देता है.

बाद में बहाली परख के लिए आवश्यक शुद्ध जीन उत्पादों को प्राप्त करने के लिए सबसे आम तरीका एस्चेरीचिया कोली1में हेटेरोलॉगस अभिव्यक्ति प्रदर्शन करना है . हालांकि, झिल्ली प्रोटीन या उच्च आणविक द्रव्यमान प्रोटीन की अभिव्यक्ति अक्सर इस प्रणाली1का उपयोग कर मुश्किल है. इन मामलों में, लक्ष्य प्रोटीन आमतौर पर कोशिकाओं है कि natively कदम है, जो जीन उत्पाद के नुकसान के लिए नेतृत्व कर सकते हैं की एक जटिल श्रृंखला के माध्यम से प्रोटीन संश्लेषित से अलग है. इन मुद्दों को दूर करने के लिए, एक सरल प्रक्रिया जीन व्यवधान विधि के बाद जीन उत्पाद शुद्धिकरण के लिए विकसित किया गया है2, पीसीआर आधारित डीएनए splicing विधि3 (नामित दो कदम संलयन पीसीआर), और आनुवंशिक के लिए electroporation स्ट्रेप्टोकॉकस म्यूटमेंसमें रूपांतरण | जीन उत्पाद के सी-टर्मिनस में पॉलीहिसिडीन टैग (उसका टैग) के अलावा धातु संबंध क्रोमैटोग्राफी (आईएमए) द्वारा अपनी शुद्धि की सुविधा प्रदान करता है।

उनके टैग-expressing तनाव को अलग करने के लिए, ब्याज की जीन के पूरे जीनोमिक डीएनए (इस अपने टैग में-विघ्वित जीन-विघनी तनाव) एक एंटीबायोटिक प्रतिरोधी मार्कर जीन के साथ बदल दिया है. उनके टैग-अपशसन तनाव उत्पन्न करने की प्रक्रिया लगभग एक जीन-विघनी विकृति उत्पन्न करने के समान है जैसा कि पहले वर्णित4,5. इसलिए, जीन व्यवधान और जीन उत्पाद अलगाव के लिए तरीकों कार्यात्मक विश्लेषण के लिए सीरियल प्रयोगों के रूप में प्रदर्शन किया जाना चाहिए.

वर्तमान कार्य में, एक polyhistidine-कोडिंग अनुक्रम gtfC के 3 “अंत से जुड़ा हुआ है (GenBank टिड्डी टैग SMU $1005) जीन, एन्कोडिंग glucosyltransferase-SI (GTF-SI) S. mutans6में . फिर, एक स्ट्रेप्टोकोकल प्रजातियों में अभिव्यक्ति अध्ययन प्रदर्शन किया गया. ई. कोलाई द्वारा विषमजीवी gtfC अभिव्यक्ति प्राप्त करना मुश्किल है, GTF-SI के उच्च आणविक द्रव्यमान के कारण होने की संभावना है। इस विकृति का नाम एस मटान उनका-gtfC है। एक योजनाबद्ध चित्रण gtfC और spectinomycin प्रतिरोध जीन कैसेट के संगठन का चित्रण (एसपीसीआर)7 वाइल्ड-टाइप एस mutans में loci (एस mutans WT) और उसके डेरिवेटिव में दिखाया गया है चित्र 1| GTF-SI एक स्रावी प्रोटीन है कि कैरिओजेनिक दंत बायोफिल्म6के विकास के लिए योगदान देता है। सुक्रोज की उपस्थिति में डब्ल्यूटी एस म्यूटन्स स्ट्रेन में कांच की चिकनी सतह पर एक अनुशीलन बायोफिल्म देखी जाती है, लेकिन एस म्यूटन्स जीटीएफसीमें नहीं – बाधित तनाव (एस. म्यूटन्स ]gtfC)2,5 . बायोफिल्म गठन एस mutans में बहाल किया जाता है –जी.टी.एफ.सी. पुनः संयोजक GTF-SI के exogenous इसके अलावा पर. तनाव, एस mutans उसकीgtfC,तो पुनः संयोजक GTF-SI का उत्पादन करने के लिए प्रयोग किया जाताहै.

Protocol

नोट: S. mutans का उत्पादन -gtfC, जिसमें gtfC जीन के पूरे कोडन क्षेत्र spcr के साथ बदल दिया है, इन प्रोटोकॉल प्रदर्शन करने से पहले पूरा किया जाना चाहिए. पीढ़ी5पर विवरण के लिए प्रकाशित लेख…

Representative Results

चित्र 3 प्रथम PCR (चित्र 3क) तथा द्वितीय PCR ( चित्र 3ख ) से प्रत्येक प्रतक्षेप का आकारदर्शाता है। प्रत्येक प्रप्लिकन का आकार अनुमानित आकार के अनुरूप होता है, जैसा…

Discussion

प्राइमर के डिजाइन प्रोटोकॉल में सबसे महत्वपूर्ण कदम है. gtfC-रिवर्स और एसपीसीआर-फॉरवर्डप्राइमर के अनुक्रम ों का निर्धारण gtfC के 3 के अंत क्षेत्र और एसपीसीआरके 5 के अंत क्षेत्र दोनों क?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम विज्ञान के संवर्धन के लिए जापान सोसायटी (JSPS) (संख्या 16K15860 और 19K10471 टी एम, 17K12032 से एम.आई., और 18K09926 एन एच) और SECOM विज्ञान और प्रौद्योगिकी फाउंडेशन (SECOM) (अनुदान 2018.00) द्वारा समर्थित किया गया था.

Materials

Agarose Nippon Genetics NE-AG02 For agarose gel electrophoresis
Anaeropack Mitsubishi Gas Chemical A-03 Anaerobic culture system
Anti-His-Tag monoclonal antibody MBL D291-7 HRP-conjugated
BCA protein assay kit Thermo Fisher Scientific 23227 Measurement of protein concentration
Brain heart infusion broth Becton, Dickinson 237500 Bacterial culture medium
CBB R-250 Wako 031-17922 For biofilm staining
Centrifugal ultrafiltration unit Sartorius VS2032 Buffer replacement and protein concentration
Centrifuge Kubota 7780II
Chromatographic column Bio-Rad 7321010 For IMAC
Dialysis membrane clamp Fisher brand 21-153-100
Dialysis tubing As One 2-316-06
DNA polymerase Takara R045A High-fidelity DNA polymerase
DNA sequencing Eurofins Genomics
ECL substrate Bio-Rad 170-5060 For western blotting
EDTA (0.5 M pH 8.0) Wako 311-90075 Tris-EDTA buffer preparation
Electroporation cuvette Bio-Rad 1652086 0.2 cm gap
Electroporator Bio-Rad 1652100
EtBr solution Nippon Gene 315-90051 For agarose gel electrophoresis
Gel band cutter Nippon Genetics FG-830
Gel extraction kit Nippon Genetics FG-91202 DNA extraction from agarose gel
Imager GE Healthcare 29083461 For SDS-PAGE and western blotting
Imidazole Wako 095-00015 Binding buffer and elution buffer preparation
Incubator Nippon Medical & Chemical Instruments EZ-022 Temperature setting: 4 °C
Incubator Nippon Medical & Chemical Instruments LH-100-RDS Temperature setting: 37 °C
Membrane filter Merck Millipore JGWP04700 0.2 µm diameter
Microcentrifuge Kubota 3740
NaCl Wako 191-01665 Preparation of binding buffer and elution buffer
NaH2PO4·2H2O Wako 192-02815 Preparation of binding buffer and elution buffer
NaOH Wako 198-13765 Preparation of binding buffer and elution buffer
(NH4)2SO4 Wako 015-06737 Ammonium sulfate precipitation
Ni-charged resin Bio-Rad 1560133 For IMAC
PCR primers Eurofins Genomics Custom-ordered
Protein standard Bio-Rad 161-0381 For SDS-PAGE and western blotting
Solvent filtration apparatus As One FH-1G
Spectinomycin Wako 195-11531 Antibiotics; use at 100 μg/mL
Sterile syringe filter Merckmillipore SLGV004SL 0.22 µm diameter
Streptococus mutans ΔgtfC Stock strain in the lab. gtfC replaced with spcr
Streptococus mutans UA159 Stock strain in the lab. S. mutans ATCC 700610, Wild-type strain
Sucrose Wako 196-00015 For biofilm development
TAE (50 × ) Nippon Gene 313-90035 For agarose gel electrophoresis
Thermal cycler Bio-Rad PTC-200
Tris-HCl (1 M, pH 8.0) Wako 314-90065 Tris-EDTA buffer preparation

References

  1. Sambrook, J., Russell, D. W. . Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3rd Edition. , (2001).
  2. Murata, T., Ishikawa, M., Shibuya, K., Hanada, N. Method for functional analysis of a gene of interest in Streptococcus mutans: gene disruption followed by purification of a polyhistidine-tagged gene product. Journal of Microbiological Methods. 155, 49-54 (2018).
  3. Horton, R. M., Cai, Z., Ho, S. M., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. Biotechniques. 54 (3), 129-133 (2013).
  4. Murata, T., Hanada, N. Contribution of chloride channel permease to fluoride resistance in Streptococcus mutans. FEMS Microbiology Letters. 363 (11), 101 (2016).
  5. Murata, T., Okada, A., Matin, K., Hanada, N. Generation of a gene-disrupted Streptococcus mutans strain without gene cloning. Journal of Visualized Experiments. (128), (2017).
  6. Hanada, N., Kuramitsu, H. K. Isolation and characterization of the Streptococcus mutansgtfC gene, coding for synthesis of both soluble and insoluble glucans. Infection and Immunity. 56 (8), 1999-2005 (1988).
  7. LeBlanc, D. J., Lee, L. N., Inamine, J. M. Cloning and nucleotide base sequence analysis of a spectinomycin adenyltransferase AAD(9) determinant from Enterococcus faecalis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 35 (9), 1804-1810 (1991).
  8. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. Journal of Visualized Experiments. (63), e3998 (2012).
  9. Database, J. S. E. PCR: The Polymerase Chain Reaction. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  10. Database, J. S. E. DNA Gel Electrophoresis. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  11. Database, J. S. E. Gel Purification. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  12. Wingfield, P. T. Protein precipitation using ammonium sulfate. Current Protocols in Protein Science. 84 (1), (2016).
  13. Database, J. S. E. Separating Protein with SDS-PAGE. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  14. Database, J. S. E. The Western Blot. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  15. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical Biochemistry. 150 (1), 76-85 (1985).
  16. Perry, D., Wondrack, L. M., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of putative cariogenic properties in Streptococcus mutans. Infection and Immunology. 41 (2), 722-727 (1983).
  17. Lau, P. C., Sung, C. K., Lee, J. H., Morrison, D. A., Cvitkovitch, D. G. PCR ligation mutagenesis in transformable streptococci: application and efficiency. Journal of Microbiological Methods. 49 (2), 193-205 (2002).
  18. Ge, X., Xu, P. Genome-wide gene deletions in Streptococcus sanguinis by high throughput PCR. Journal of Visualized Experiments. (69), (2012).
check_url/fr/59804?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Murata, T., Yamashita, M., Ishikawa, M., Shibuya, K., Hanada, N. Purification of a High Molecular Mass Protein in Streptococcus mutans. J. Vis. Exp. (151), e59804, doi:10.3791/59804 (2019).

View Video