Summary

Tumorsphere härledning och behandling från primära tumörceller isolerade från mus Rhabdomyosarcomas

Published: September 13, 2019
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver en reproducerbar metod för isolering av mus rabdomyosarkom primära celler, tumorsphere formation och behandling, och transplantatavstötning transplantation från tumorspheres kulturer.

Abstract

Rhabdomyosarcoma (RMS) är den vanligaste mjukdelssarkom hos barn. Även om betydande insatser har möjliggjort identifiering av vanliga mutationer i samband med RMS och tillåten diskriminering av olika RMS-subtyper, finns det fortfarande stora utmaningar för utvecklingen av nya behandlingar för att ytterligare förbättra prognosen. Även identifieras genom uttrycket av myogena markörer, det finns fortfarande betydande kontrovers om huruvida RMS har Myogenic eller icke-Myogenic ursprung, som cellen ursprung är fortfarande dåligt förstått. I den aktuella studien finns en tillförlitlig metod för tumorsphere-analysen för mus RMS. Analysen är baserad på funktionella egenskaper tumörceller och gör det möjligt att identifiera sällsynta populationer i tumören med tumörframkallande funktioner. Beskrivs också är procedurer för att testa rekombinanta proteiner, integrera transfektion protokoll med tumorsphere assay, och utvärdera kandidat gener involverade i tumörutveckling och tillväxt. Beskrivs vidare är ett förfarande för transplantatavstötning transplantation av tumorspheres till mottagar möss att validera tumörframkallande funktion in vivo. Sammantaget ger den beskrivna metoden tillförlitlig identifiering och testning av sällsynta RMS-tumorigena populationer som kan tillämpas på RMS som uppstår i olika sammanhang. Slutligen kan protokollet utnyttjas som en plattform för läkemedels screening och framtida utveckling av Therapeutics.

Introduction

Cancer är en heterogen sjukdom; Dessutom, samma typ av tumör kan presentera olika genetiska mutationer hos olika patienter, och inom en patient en tumör består av flera populationer av celler1. Heterogenitet utgör en utmaning i identifieringen av celler som ansvarar för att initiera och sprida cancer, men deras karakterisering är avgörande för utvecklingen av effektiva behandlingar. Begreppet tumör föröknings celler (TPC), en sällsynt population av celler som bidrar till tumörutveckling, har tidigare utförligt granskats2. Trots det faktum att tpcs har karakteriserats i flera typer av cancer, är identifieringen av markörer för deras pålitliga isolering en utmaning för flera tumörtyper3,4,5,6 , 7 , 8 , 9. sålunda, en metod som inte förlitar sig på molekylära markörer utan snarare på TPC funktionella egenskaper (hög självförnyelse och förmågan att växa i låg-tillbehör villkor), känd som tumorsphere formation assay, kan tillämpas i stor utsträckning för identifiering av TPCs från de flesta tumörer. Viktigt, denna analys kan också användas för utbyggnad av tpcs och därmed direkt tillämpas på cancer Drug screening och studier om cancer resistens1,10.

Rhabdomyosarcoma (RMS) är en sällsynt form av mjukdelssarkom vanligast hos små barn11. Althoug RMS kan histologiskt identifieras genom bedömning av uttrycket av myogena markörer, har RMS-cellen av ursprung inte univokala kännetecknas på grund av de multipla tumör subtyper och hög heterogenitet av tumörutveckling stimuli. Nyligen genomförda studier har genererat en betydande vetenskaplig diskussion om huruvida RMS är av myogent eller icke-myogent ursprung, vilket tyder på att RMS kan härledas från olika celltyper beroende på sammanhanget12,13, fjorton , 15 , 16 , 17. ett flertal studier på RMS cellinjer har utförts med hjälp av tumorsphere formation analys för identifiering av vägar som är involverade i tumörutveckling och karakterisering av markörer i samband med mycket självförnyelse populationer 18 , 19 , 20 , 21.

Men trots tumorsphere formation assay potential för att identifiera RMS-celler ursprung, en tillförlitlig metod som kan användas på primära RMS-celler har ännu inte beskrivits. I detta sammanhang, en nyligen studie från vår grupp anställd en optimerad tumorsphere formation analys för identifiering av RMS-celler ursprung i en Duchennes muskeldystrofi (DMD) musmodell22. Flera pre-tumorigena celltyper, isolerade från muskelvävnad, testas för sin förmåga att växa i låg-tillbehör villkor, så att identifieringen av muskelstamceller som celler av ursprung för RMS i dystrofa sammanhang. Beskrivs här är ett reproducerbart och tillförlitligt protokoll för tumorsphere formation assay (figur 1), som har framgångsrikt använts för identifiering av extremt sällsynta cellpopulationer som är ansvariga för mus RMS utveckling.

Protocol

Hus, behandling och uppoffring av möss utfördes efter det godkända IACUC-protokollet från Sanford Burnham Prebys Medical Discovery Institute. 1. beredning av reagens Förbered 100 mL cell isoleringsmaterial: F10 medium kompletterat med 10% häst serum (HS). Bered 50 mL av kollagenastyp II-lösning: Lös upp 1 g kollagenastyp II-pulver i 50 mL cell isoleringsmaterial (notera enzymets enheter per 1 mL media, eftersom antalet enheter ändras beroende på partiet). Alikvot …

Representative Results

Tumorspheres upptäcktCell isolering optimerades för att få maximal heterogenitet av cellpopulationer som finns i tumörvävnad. Först, eftersom isolerade vävnader presenteras morfologiskt olika områden, för att öka chanserna att isolera enhetliga sällsynta cellpopulationer, provtagning utfördes från flera områden av tumören (figur 1a, första panelen till vänster). För det andra utfördes mekanisk dissociation av skördade …

Discussion

Flera metoder har använts för isolering och karakterisering av tpcs från tumör heterogena cellpopulationer: tumör klonogena assays, FACS isolering och tumorsphere formation assay. Tumören klonogena analysen beskrevs första gången i 1971, används för stamcells studier, och först därefter tillämpas på cancerbiologi29,30. Denna metod är baserad på cancer stamcells inneboende egenskapen att expandera utan begränsningar i mjuka geler kulturer<sup clas…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Ellison Medical Foundation Grant AG-NS-0843-11, och NIH pilot Grant inom NCI Cancer Center support Grant P30CA030199 till A.S.

Materials

Accutase cell dissociation reagent Gibco A1110501 Detach adherent cells and dissociate tumorspheres
Celigo Nexcelom Celigo Microwell plate based image cytometer for adherent and suspension cells
Collagenase, Type II Life Technologies 17101015 Tissue digestion enzyme
Dispase II, protease Life Technologies 17105041 Tissue digestion enzyme
DMEM high glucose media Gibco 11965092 Component of tumor cells media
DMEM/F12 Media Gibco 11320033 Component of tumosphere media
EDTA ThermoFisher S312500 Component of FACS buffer
EGF recombinant mouse protein Gibco PMG8041 Component of tumosphere media
FACSAria II Flow Cytometry BD Biosciences 650033 Fluorescent activated cell sorter
Fetal Bovine Serum Omega Scientific FB-11 Component of tumor cells media
Fluriso (Isofluornae) anesthetic agent MWI Vet Supply 502017 Anesthetic reagent for animals
FxCycle Violet Stain Life Technologies F10347 Discriminate live and dead cells
Goat Serum Life Technologies 16210072 Component of FACS buffer
Ham's F10 Media Life Technologies 11550043 Component of FACS buffer
Horse Serum Life Technologies 16050114 Component of cell isolation media
Lipofectamine 3000 transfection reagent ThermoFisher L3000015 Transfection Reagent
Matrigel membrane matrix Corning CB40234 Provides support to trasplanted cells
N-2 Supplemtns (100X) Gibco 17502048 Component of tumosphere media
Neomycin-Polymyxin B Sulfates-Bacitracin Zinc Ophthalmic Ointment MWI Vet Supply 701008 Eyes ointment
PBS Gibco 10010023 Component of FACS buffer and used for washing cells
pEGFP-C1 Addgene 6084-1 GFP plasmid
Penicillin – Streptomyocin Life Technologies 15140163 Component of tumosphere and tumor cells media
Recombinant Human βFGF-basic Peprotech 10018B Component of tumosphere media
Recombinant mouse Flt-3 Ligand Protein R&D Systems 427-FL-005 Recombinant protein
Trypan blue ThermoFisher 15250061 Discriminate live and dead cells

References

  1. Dagogo-Jack, I., Shaw, A. T. Tumour heterogeneity and resistance to cancer therapies. Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (2), 81-94 (2018).
  2. Wicha, M. S., Liu, S., Dontu, G. Cancer stem cells: an old idea–a paradigm shift. Recherche en cancérologie. 66 (4), 1883-1890 (2006).
  3. Al-Hajj, M., Wicha, M. S., Benito-Hernandez, A., Morrison, S. J., Clarke, M. F. Prospective identification of tumorigenic breast cancer cells. Proceedings National Academy of Science of the United States of America. 100 (7), 3983-3988 (2003).
  4. Oishi, N., Yamashita, T., Kaneko, S. Molecular biology of liver cancer stem cells. Liver Cancer. 3 (2), 71-84 (2014).
  5. Crous, A. M., Abrahamse, H. Lung cancer stem cells and low-intensity laser irradiation: a potential future therapy. Stem Cell Research & Therapy. 4 (5), 129 (2013).
  6. Tomao, F., et al. Investigating molecular profiles of ovarian cancer: an update on cancer stem cells. Journal of Cancer. 5 (5), 301-310 (2014).
  7. Zhan, H. X., Xu, J. W., Wu, D., Zhang, T. P., Hu, S. Y. Pancreatic cancer stem cells: new insight into a stubborn disease. Cancer Letters. 357 (2), 429-437 (2015).
  8. Sharpe, B., Beresford, M., Bowen, R., Mitchard, J., Chalmers, A. D. Searching for prostate cancer stem cells: markers and methods. Stem Cell Reviews and Reports. 9 (5), 721-730 (2013).
  9. Lapidot, T., et al. A cell initiating human acute myeloid leukaemia after transplantation into SCID mice. Nature. 367 (6464), 645-648 (1994).
  10. Lee, C. -. H., Yu, C. -. C., Wang, B. -. Y., Chang, W. -. W. Tumorsphere as an effective in vitro platform for screening anti- cancer stem cell drugs. Oncotarget. 7 (2), 1215-1226 (2015).
  11. Sultan, I., Qaddoumi, I., Yaser, S., Rodriguez-Galindo, C., Ferrari, A. Comparing adult and pediatric rhabdomyosarcoma in the surveillance, epidemiology and end results program. Journal of Clinical Oncology. 27 (20), 3391-3397 (1973).
  12. Blum, J. M., et al. Distinct and overlapping sarcoma subtypes initiated from muscle stem and progenitor cells. Cell Reports. 5 (4), 933-940 (2013).
  13. Rubin, B. P., et al. Evidence for an unanticipated relationship between undifferentiated pleomorphic sarcoma and embryonal rhabdomyosarcoma. Cancer Cell. 19 (2), 177-191 (2011).
  14. Keller, C., et al. Alveolar rhabdomyosarcomas in conditional Pax3:Fkhr mice: cooperativity. of Ink4a/ARF and Trp53 loss of function. Genes & Development. 18 (21), 2614-2626 (2004).
  15. Tremblay, A. M., et al. The Hippo transducer YAP1 transforms activated satellite cells and is a potent effector of embryonal rhabdomyosarcoma formation. Cancer Cell. 26 (2), 273-287 (2014).
  16. Hatley, M. E., et al. A mouse model of rhabdomyosarcoma originating from the adipocyte lineage. Cancer Cell. 22 (4), 536-546 (2012).
  17. Drummond, C. J., et al. Hedgehog Pathway Drives Fusion-Negative Rhabdomyosarcoma Initiated From Non-myogenic Endothelial Progenitors. Cancer Cell. 33 (1), 108-124 (2018).
  18. Almazan-Moga, A., et al. Hedgehog Pathway Inhibition Hampers Sphere and Holoclone Formation in Rhabdomyosarcoma. Stem Cells International. , (2017).
  19. Walter, D., et al. CD133 positive embryonal rhabdomyosarcoma stem-like cell population is enriched in rhabdospheres. PLoS One. 6 (5), (2011).
  20. Ciccarelli, C., et al. Key role of MEK/ERK pathway in sustaining tumorigenicity and in vitro radioresistance of embryonal rhabdomyosarcoma stem-like cell population. Molecular Cancer. 15, (2016).
  21. Deel, M. D., et al. The Transcriptional Coactivator TAZ Is a Potent Mediator of Alveolar Rhabdomyosarcoma Tumorigenesis. Clinical Cancer Research. 24 (11), 2616-2630 (2018).
  22. Boscolo Sesillo, F., Fox, D., Sacco, A. Muscle Stem Cells Give Rise to Rhabdomyosarcomas in a Severe Mouse Model of Duchenne Muscular Dystrophy. Cell Reports. 26 (3), 689-701 (2019).
  23. Chamberlain, J. S., Metzger, J., Reyes, M., Townsend, D., Faulkner, J. A. Dystrophin-deficient mdx mice display a reduced life span and are susceptible to spontaneous rhabdomyosarcoma. The FASEB Journal. 21 (9), 2195-2204 (2007).
  24. Kessel, S., et al. High-Throughput 3D Tumor Spheroid Screening Method for Cancer Drug Discovery Using Celigo Image Cytometry. SLAS Technology. 22 (4), 454-465 (2017).
  25. Johnson, S., Chen, H., Lo, P. K. In vitro Tumorsphere Formation Assays. Bio-Protocol. 3 (3), (2013).
  26. Zhu, Z. W., et al. A novel three-dimensional tumorsphere culture system for the efficient and low-cost enrichment of cancer stem cells with natural polymers. Experimental and Therapeutic. 15 (1), 85-92 (2018).
  27. Takahashi, S. Downstream molecular pathways of FLT3 in the pathogenesis of acute myeloid leukemia: biology and therapeutic implications. Jornal of Hematology and Oncology. 4, (2011).
  28. Laouar, Y., Welte, T., Fu, X. Y., Flavell, R. A. STAT3 is required for Flt3L-dependent dendritic cell differentiation. Immunity. 19 (6), 903-912 (2003).
  29. Ogawa, M., Bergsagel, D. E., McCulloch, E. A. Differential effects of melphalan on mouse myeloma (adj. PC-5) and hemopoietic stem cells. Recherche en cancérologie. 31 (12), 2116-2119 (1971).
  30. Hamburger, A. W., Salmon, S. E. Primary bioassay of human tumor stem cells. Science. 197 (4302), 461-463 (1977).
  31. Hamburger, A. W. The human tumor clonogenic assay as a model system in cell biology. The International Journal of Cell Cloning. 5 (2), 89-107 (1987).
  32. Jimenez-Hernandez, L. E., et al. NRP1-positive lung cancer cells possess tumor-initiating properties. Oncology Reports. 39 (1), 349-357 (2018).
  33. Singh, S. K., et al. Identification of human brain tumour initiating cells. Nature. 432 (7015), 396-401 (2004).
  34. Kimlin, L. C., Casagrande, G., Virador, V. M. In vitro three-dimensional (3D) models in cancer research: an update. Molecular Carcinogenesis. 52 (3), 167-182 (2013).
  35. Salerno, M., et al. Sphere-forming cell subsets with cancer stem cell properties in human musculoskeletal sarcomas. International Journal of Oncology. 43 (1), 95-102 (2013).
check_url/fr/59897?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Boscolo Sesillo, F., Sacco, A. Tumorsphere Derivation and Treatment from Primary Tumor Cells Isolated from Mouse Rhabdomyosarcomas. J. Vis. Exp. (151), e59897, doi:10.3791/59897 (2019).

View Video