Summary

Generering av en Liver Orthotopic Human uveal melanom Xenograft Platform i Immunodeficient mus

Published: November 06, 2019
doi:

Summary

Orthotopic Human lever metastatisk uveal melanom xenograft mus modeller ble opprettet ved hjelp av kirurgiske Orthotopic implantation teknikker med pasient-avledet tumor blings og nål injeksjon teknikker med kultivert menneskelig uveal melanom cellelinjer.

Abstract

I de siste ti årene, subkutant implantert pasient-avledet xenograft svulster eller kultivert menneskelige cellelinjer har blitt stadig mer anerkjent som mer representative modeller for å studere menneskelig kreft i immunodeficient mus enn tradisjonelle etablerte menneskelige celle linjer in vitro. Nylig, orthotopically implantert pasient-avledet tumor xenograft (PDX) modeller i mus har blitt utviklet for å bedre gjenskape funksjoner av pasient svulster. En lever orthotopic xenograft musen modell forventes å bli en nyttig kreften forskning plattform, skaffer innblikk i svulst Biology og bedøve terapi. Imidlertid er leveren orthotopic tumor implantation generelt komplisert. Her beskriver vi våre protokoller for orthotopic implantation av pasient-avledet lever-metastatisk uveal melanom svulster. Vi kultivert menneskelig lever metastatisk uveal melanom cellelinjer i immunodeficient mus. Protokollene kan resultere i gjennomgående høy teknisk suksess priser ved hjelp av enten en kirurgisk orthotopic implantation teknikk med biter av pasient-avledet uveal melanom tumor eller en nål injeksjon teknikk med kultivert menneskelig cellelinje. Vi beskriver også protokoller for CT skanning å oppdage interiør leversvulster og for re-implantation teknikker bruker embryo svulster å oppnå re-engraftment. Sammen, disse protokollene gir en bedre plattform for leveren orthotopic tumor mus modeller av leveren metastatisk uveal melanom i translational forskning.

Introduction

Uveal melanom er den vanligste intraokulært ondartet svulst blant voksne i den vestlige verden. I løpet av de siste 50 årene har forekomsten av uveal melanom (5,1 tilfeller per million) forblitt stabil i USA1,2. Uveal melanom oppstår fra melanocytter i Iris, ciliary kroppen, eller akkord, og det er en ekstremt dødelig sykdom når den utvikler metastasering. Dødeligheten av pasienter med uveal melanom metastasering var 80% ved 1 år og 92% ved 2 år etter første diagnostisering av metastaser. Tiden mellom diagnostisering av metastaser og død er vanligvis kort, mindre enn 6 måneder, uten hensyn til terapi3,4. Kreften sprer seg gjennom blodet og har en tendens til å nesten kun metastase til leveren (89-93%)4,5. En effektiv musemodell er et presserende behov for videre etterforskning av leveren-metastatisk uveal melanom. For translational forskning, det er et klart behov for å generere en lever-lokaliserte metastatisk uveal melanom musemodell.

En pasient-avledet tumor xenograft (PDX) musemodeller forventes å gi individualisert medisin strategier. Disse modellene kan være prediktiv av kliniske utfall, være nyttig for prekliniske narkotika evaluering, og brukes til biologiske studier av svulster6. Representative PDX-modeller er jektopicheski tumor-implantert xenograft mus, som har tumor på subkutan nettsteder. De fleste forskere kan gjøre kirurgi for subkutan implantation uten spesiell praksis7,8. De kan også overvåke subkutan svulster lett. Selv om subkutan PDX-modeller ble populære i forsknings fasen, har de noen hindringer i bevegelse til praktisk bruk. Subkutan implantation styrker pasient-avledede svulster å engraft på en annen mikromiljøet fra tumor opprinnelse, slik at det fører til engraftment svikt og langsom tumor vekst 9,10,11, 12,13,14. Orthotopic engraftment kan være en mer ideell og rasjonell tilnærming for en PDX modell fordi den bruker samme organ som den opprinnelige tumor15,16.

Nylig utviklet vi protokoller for kirurgiske orthotopic implantation teknikker av pasient-avledet lever-metastatisk uveal melanom svulster og nål injeksjon teknikker med en kultivert menneskelig lever-metastatisk uveal melanom cellelinje i NOD. CG-PrkdcscidIl2rgtm1Wjl/SzJ (nsg) mus17,18. Protokollene resulterer i gjennomgående høye tekniske suksessrater. Vi har også etablert CT-skanning teknikker som er nyttige for å oppdage interiør leverskader svulster, og vi utviklet ny implantation av embryo svulster i PDX plattform. Vi fant at uveal melanom tumor xenograft modeller opprettholde egenskapene til den opprinnelige pasienten leveren svulst, inkludert deres histopathological og molekylære funksjoner. Sammen, disse teknikkene gir en bedre plattform for leveren orthotopic tumor modeller for uveal melanom i translational forskning.

Protocol

Pasienter som deltar i studien bør gi skriftlig samtykke som tillater bruk av kasserte kirurgiske prøver for forskningsformål og genetiske studier, ifølge en institusjonell gjennomgang Board-godkjent protokoll. Denne protokollen ble utført i nøye samsvar med anbefalingene i guide for omsorg og bruk av laboratorium dyr av National Institutes of Health og godkjent av institusjonelle Animal Care og use Committee (IACUC). 1. innsamling av frisk pasient-avledet tumor vev <o…

Representative Results

Kirurgisk orthotopic implantation bruker leveren Pocket metoden kan transplantasjon menneskelig leveren metastatisk uveal melanom svulst i musen leveren med en høy suksess rate på 80% innen seks måneder. Den xenograft tumor engrafts i leveren som en ensom svulst uten datter knuter (figur 1 og figur 3a). Den kirurgiske orthotopic injeksjon teknikk i leveren bruker microneedles vellykket engrafted kultivert menneskelig lever-met…

Discussion

De nåværende orthotopic xenograft modellene er arbeidskrevende, tidkrevende og kostbart å skape. Orthotopic tumor xenograft mus modeller for leverkreft ble etablert mer enn to ti år siden19,20,21. Imidlertid er denne teknikken komplisert og krever bruk av spesialutstyr, for eksempel en mikro-nål holderen og 6-0 til 8-0 fine sting under et mikroskop. Tumor og normalt lever vev må sys opp nøye slik at Sutur ikke skader den …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige for M. Ohara, K. Saito, og M. Terai, for å ha gjennomgått manuskriptet. Forfatterne erkjenner kritisk vurdering for redaksjonelle og engelsk bistand av dette manuskriptet av Dr. R. Sato på Fox Chase Cancer Center. Arbeidet beskrevet her ble støttet av Bonnie Kroll Research Fund, The Merk Weinzierl Research Fund, Eye melanom Research Fund ved Thomas Jefferson University, The Osaka Community Foundation, og JSP KAKENHI Grant Number JP 18K15596 i Osaka City University. Studier i Dr. A. Aplin laboratorium ble støttet av NIH Grant R01 GM067893. Dette prosjektet ble også finansiert av en Dean ‘ s bearbeidet Science Award, en Thomas Jefferson University programmatisk Initiative Award.

Materials

Materials, tissues and animals
Buprenorphine
CO2 tank
Cryomedium
Exitron nano 12000 (Alkaline earth metal-based nanoparticle contrast agent) Miltenyl Biotec 130-095-700
HBSS 1X, with calcium & magnesium Corning 21-020-CM
Human liver metastatic uveal melanoma cell line
Human uveal melanoma tissue in the liver All tissue handling should be done in a Biosafety Level 2 hood. Be careful when working with human tissue; always use gloves and avoid direct skin contact. Assume patients may have been infected with HIV or other highly transmissible organisms. Do not process samples known to carry infections.
Iodine
Isoflurane Purdue Products 67618-150-17
Isopropanol Fisher scientific A416-1 Avoid direct contact to skin and eye and inhalation of anesthetic agent.
Liquid nitrogen
Matrigel HC BD 354248
NOD.Cg-PrkdcscidIl2rgtm1Wjl/SzJ (NSG) mice Jackson Lab 5557 4 to 8 weeks old
PBS 1X, without calcium and magnesium Corning 21-031-CM
RPMI 1640 Corning 10-013-CV
Sterile alcohol prep pad (70% isopropyl alcohol) Nice-Pak products B603
4% paraformaldehyde phosphate buffer solution Wako 163-20145
70% Ethyl alcohol solution Fisher Scientific 04-355-122
Name Company Catalog Number Comments
Equipments
Absorbable hemostat Johnson and Johnson 63713-0019-61
Autoclave
Body weight measure
Cautery Bovie Medical MC-23009
Cell counter
Centrifuzer
Cotton swab
Cryo freezing container NALGENE 5100-0001
Cryotube SARSTEDT 72.379
Curved scissors World Precision Instruments 503247
Curved ultrafine forceps World Precision Instruments 501302
Fabric sheet
Freezer
F/AIR Filter Canister Harvard Apparatus 600979
Heating pad
Isoflurane vaporizer Artisan Scientific 66317-1
Liquid nitrogen
Liquid nitrogen jar Thermo Fisher Scientific 2123
Micro-CT scan Siemens
Needle holder World Precision Instruments 501246
Petri dishes Fisher Scientific FB0875713
Pipette
Spray bottle
Sterile hood Biosafety level 2 cabinet
Sterile No.11 scalpel AD Surgical A300-11-0
Straight forceps World Precision Instruments 14226
Surgical drape
Tail vein restrainer Braintree Scientific TV-150-STD
Water bath
1 ml TB syringe with 27-gauge needle BD 309623
1.7 ml tube Bioexpress C-3260-1
5-0 PDO Suture AD Surgical S-D518R13
15 mL conical tubes AZER SCIENTIFIC ES-9152N
27-gauge needle BD 780301
27-gauge needle Hamilton 7803-01
50 mL conical tubes AZER SCIENTIFIC ES-9502N
50 µl micro syringe BD 80630
50 µl micro syringe Hamilton 7655-01
100 mL container Fisher Scientific 12594997
200μl tip

References

  1. Aronow, M. E., Topham, A. K., Singh, A. D. Uveal Melanoma: 5-Year Update on Incidence, Treatment, and Survival (SEER 1973-2013). Ocular Oncology and Pathology. 4 (3), 145-151 (2018).
  2. Krantz, B. A., Dave, N., Komatsubara, K. M., Marr, B. P., Carvajal, R. D. Uveal melanoma: epidemiology, etiology, and treatment of primary disease. Clinical Ophthalmology. 11, 279-289 (2017).
  3. Gragoudas, E. S., et al. Survival of patients with metastases from uveal melanoma. Ophthalmology. 98 (3), 383-389 (1991).
  4. Diener-West, M., et al. Development of metastatic disease after enrollment in the COMS trials for treatment of choroidal melanoma: Collaborative Ocular Melanoma Study Group Report No. 26. Archives of Ophthalmology. 123 (12), 1639-1643 (2005).
  5. Collaborative Ocular Melanoma Study Group. Assessment of metastatic disease status at death in 435 patients with large choroidal melanoma in the Collaborative Ocular Melanoma Study (COMS): COMS report no. 15. Archives of Ophthalmology. 119 (5), 670-676 (2001).
  6. Hidalgo, M., et al. Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research. Cancer Discovery. 4 (9), 998-1013 (2014).
  7. Kim, M. P., et al. Generation of orthotopic and heterotopic human pancreatic cancer xenografts in immunodeficient mice. Nature Protocols. 4 (11), 1670-1680 (2009).
  8. Némati, F., et al. Establishment and characterization of a panel of human uveal melanoma xenografts derived from primary and/or metastatic tumors. Clinical Cancer Research. 16 (8), 2352-2362 (2010).
  9. Wilmanns, C., et al. Modulation of Doxorubicin sensitivity and level of p-glycoprotein expression in human colon-carcinoma cells by ectopic and orthotopic environments in nude-mice. International Journal of Oncology. 3 (3), 413-422 (1993).
  10. Kang, Y., et al. Proliferation of human lung cancer in an orthotopic transplantation mouse model. Experimental and Therapeutic. 1 (3), 471-475 (2010).
  11. Fichtner, I., et al. Establishment of patient-derived non-small cell lung cancer xenografts as models for the identification of predictive biomarkers. Clinical Cancer Research. 14 (20), 6456-6468 (2008).
  12. Marangoni, E., et al. A new model of patient tumor-derived breast cancer xenografts for preclinical assays. Clinical Cancer Research. 13 (13), 3989-3998 (2007).
  13. Bergamaschi, A., et al. Molecular profiling and characterization of luminal-like and basal-like in vivo breast cancer xenograft models. Molecular Oncology. 3 (5-6), 469-482 (2009).
  14. Ho, K. S., Poon, P. C., Owen, S. C., Shoichet, M. S. Blood vessel hyperpermeability and pathophysiology in human tumour xenograft models of breast cancer: a comparison of ectopic and orthotopic tumours. BMC Cancer. 12, 579 (2012).
  15. Hoffman, R. M. Patient-derived orthotopic xenografts: better mimic of metastasis than subcutaneous xenografts. Nature Reviews Cancer. 15 (8), 451-452 (2015).
  16. Rubio-Viqueira, B., Hidalgo, M. Direct in vivo xenograft tumor model for predicting chemotherapeutic drug response in cancer patients. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 85 (2), 217-221 (2009).
  17. Ozaki, S., et al. Establishment and Characterization of Orthotopic Mouse Models for Human Uveal MelanomaHepatic Colonization. American Journal of Pathology. 186 (1), 43-56 (2016).
  18. Kageyama, K., et al. Establishment of an orthotopic patient-derived xenograft mouse model using uveal melanomahepatic metastasis. Journal of Translational Medicine. 15 (1), 145 (2017).
  19. Fu, X. Y., Besterman, J. M., Monosov, A., Hoffman, R. M. Models of human metastatic colon cancer in nude mice orthotopically constructed by using histologically intact patient specimens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (20), 9345-9349 (1991).
  20. Rashidi, B., et al. An orthotopic mouse model of remetastasis of human colon cancer liver metastasis. Clinical Cancer Research. 6 (6), 2556-2561 (2000).
  21. Fan, Z. C., et al. Real-time monitoring of rare circulating hepatocellular carcinoma cells in an orthotopic model by in vivo flow cytometry assesses resection on metastasis. Recherche en cancérologie. 72 (10), 2683-2691 (2012).
  22. Jacob, D., Davis, J., Fang, B. Xenograftictumor modelsinmiceforcancer research, atechnical review. Gene Therapy and Molecular Biology. 8, 213-219 (2004).
  23. Ahmed, S. U., et al. Generation of subcutaneous and intrahepatic human hepatocellular carcinoma xenografts in immunodeficient mice. Journal of Visualized Experiments. 25 (79), e50544 (2013).
  24. Kim, M., et al. Generation of humanized liver mouse model by transplant of patient-derived fresh human hepatocytes. Transplantation Proceedings. 46 (4), 1186-1190 (2014).
  25. Lavender, K. J., Messer, R. J., Race, B., Hasenkrug, K. J. Production of bone marrow, liver, thymus (BLT) humanized mice on the C57BL/6 Rag2(-/-)γc(-/-)CD47(-/-) background. Journal of Immunological Methods. 407, 127-134 (2014).
  26. Boll, H., et al. Micro-CT based experimental liver imaging using a nanoparticulate contrast agent: a longitudinal study in mice. PLoS One. 6 (9), e25692 (2011).
  27. Zhao, X., et al. Global gene expression profiling confirms the molecular fidelity of primary tumor-based orthotopic xenograft mouse models of medulloblastoma. Neuro-Oncology. 14 (5), 574-583 (2012).
  28. Rubio-Viqueira, B., et al. An in vivo platform for translational drug development in pancreatic cancer.Clinical. Recherche en cancérologie. 12 (15), 4652-4661 (2006).
  29. Siolas, D., Hannon, G. J. Patient-derived tumor xenografts: transforming clinical samples into mouse models. Recherche en cancérologie. 73 (17), 5315-5319 (2013).
  30. Alkema, N. G., et al. Biobanking of patient and patient-derived xenograft ovarian tumour tissue: efficient preservation with low and high fetal calf serum based methods. Scientific Reports. 6 (5), 14495 (2015).
check_url/fr/59941?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Kageyama, K., Ozaki, S., Sato, T. Generation of a Liver Orthotopic Human Uveal Melanoma Xenograft Platform in Immunodeficient Mice. J. Vis. Exp. (153), e59941, doi:10.3791/59941 (2019).

View Video