Summary

En antikropps matning metod för att studera glutamat-Receptorhandel i dissocierade primära hippocampal kulturer

Published: August 02, 2019
doi:

Summary

Den här artikeln presenterar en metod för att studera handel med glutamatreceptorer (GluR) i dissocierade primära Hippocampus kulturer. Med hjälp av en metod för antikropps matning för att märka endogena eller överuttryckta receptorer i kombination med farmakologiska metoder, möjliggör denna metod identifiering av molekylära mekanismer som reglerar GluR-ytans uttryck genom att modulera processer för internalisering eller återvinning.

Abstract

Cellulära svar på yttre stimuli är starkt beroende av den uppsättning av receptorer som uttrycks på cellytan vid en given tidpunkt. Följaktligen är befolkningen i ytan-uttryckta receptorer ständigt anpassar sig och omfattas av strikta mekanismer för reglering. Det paradigmatiska exemplet och en av de mest studerade människohandel händelserna i biologi är den reglerade kontrollen av det synaptiska uttrycket av glutamatreceptorer (GluRs). GluRs förmedlar de allra flesta excitatoriska neurotransmission i centralanervsystemet och kontrollera fysiologiska aktivitet-beroende funktionella och strukturella förändringar på Synaptic och neuronala nivåer (t. ex., synaptisk plasticitet). Ändringar i antal, plats och subenhet sammansättning av ytan uttryckt glurs påverkar djupt neuronala funktion och, i själva verket, förändringar i dessa faktorer är förknippade med olika neuropatier. Presenteras här är en metod för att studera GluR trafficking i dissocierade Hippocampus primära nervceller. En “antikropps matning” metod används för att Differentiellt visualisera GluR populationer uttrycks på ytan och inre membran. Genom att märka ytan receptorer på levande celler och fastställa dem vid olika tidpunkter för att möjliggöra receptorer endocytos och/eller återvinning, dessa människohandel processer kan utvärderas och selektivt studeras. Detta är ett mångsidigt protokoll som kan användas i kombination med farmakologiska metoder eller överuttryck av förändrade receptorer för att få värdefull information om stimuli och molekylära mekanismer som påverkar GluR-handeln. På samma sätt, det kan lätt anpassas för att studera andra receptorer eller ytan uttrycks proteiner.

Introduction

Celler utnyttjar den aktiva processen för människohandel för att mobilisera proteiner till specifika subcellulära lokaliseringar och utöva strikt spatiotemporal reglering över sin funktion1. Denna process är särskilt viktigt för transmembranreceptorer, som cellulära svar på olika miljömässiga stimuli förlitar sig på intracellulära kaskader utlöses av receptor aktivering. Celler kan ändra dessa svar genom att ändra täthet, lokalisering, och subenhet sammansättning av receptorer uttrycks på cellytan via receptor subcellulära människohandel regulation2. Införandet av nyligen syntetiserade receptorer i plasmamembranet, tillsammans med endocytos och återvinning av befintliga receptorer är exempel på människohandel processer som avgör nätet pool av ytan-uttryckta receptorer2. Många molekylära mekanismer samverkar för att reglera protein handel, inklusive protein-protein interaktioner och posttranslationella modifieringar såsom fosforylering, ubiquitination, eller palmitoylation2.

Regleringen av receptor handel krävs bestämt i starkt polariserade celler med högt specialiserade strukturerar. Det paradigmatiska exemplet är kontrollen av neuronala funktion genom reglerad handel med glutamatreceptorer (glurs)3,4. Glutamat, den huvudsakliga excitatoriska neurotransmittorn, binder och aktiverar ytan-uttryckte GluRs att kontrollera grundläggande fysiologiska neuronala funktioner såsom synaptisk neurotransmission och synaptisk plasticitet. Det faktum att förändrad GluR-handel har observerats i ett brett spektrum av neuropatier, alltifrån neurologiska utvecklingsstörningar till neurodegenerativa sjukdomar, belyser vikten av denna process5. Att förstå de molekylära händelser som styr GluR-trafficking är därför av intresse för många forskningsområden.

I detta protokoll, en antikropp-utfodring baserad metod används för att kvantifiera nivån på ytan-uttryckta GluRs i primära Hippocampus nervceller samt utvärdera hur förändringar i internalisering och återvinning resultera i den observerade net ytan uttryck. Användning av farmakologi och/eller överuttryck av exogena receptorer härma specifika mutationer gör detta protokoll en särskilt kraftfull metod för att studera molekylära mekanismer bakom neuronala anpassning till olika miljömässiga stimuli. Ett sista exempel på nyttan med detta protokoll är att studera hur multifaktoriella förändringar i miljön (t. ex. i en sjukdoms modell) påverkar GluR-handeln genom undersökning av ytuttryck i sådana modeller.

Med hjälp av specifika exempel, det är initialt visat hur en farmakologisk manipulation imitera fysiologiska synaptisk stimulering [kemisk ltp (cltp)] ökar ytan uttrycket av endogena GluA1 subenhet av AMPA-typ av glurs (ampars) 6. handeln med en överuttryckt Phospho-mimetic form av GluN2B subenhet av NMDA-typ av glurs (nmdars) analyseras också för att exemplifiera hur detta protokoll kan användas för att studera regleringen av Glur-handel med specifika posttranslationella Ändringar. Även om dessa specifika exempel används, detta protokoll kan lätt appliceras på andra GluRs och andra receptorer och proteiner som besitter antigen extracellulära domäner. I det fall att det inte finns några antikroppar tillgängliga för extracellulära domäner, överuttryck av extracellulära Epitope-märkta (t. ex., flagga-, MYC-, GFP-märkta, etc.) proteiner kan bistå i protein märkning.

Det nuvarande protokollet innehåller anvisningar för att kvantifiera specifik GluR subtypdensitet och människohandel med hjälp av specifika antikroppar. Detta protokoll kan utnyttjas för att studera 1) totalt GluR ytuttryck, 2) GluR Internalization, och 3) GluR återvinning. För att studera varje enskild process bör man börja med avsnitten 1 och 2 och fortsätta med antingen avsnitt 3, 4 eller 5. I samtliga fall, avsluta med avsnitten 6 och 8 (figur 1).

Protocol

Arbete som hänför sig till Hippocampus primär kultur beredning granskades och godkändes av Northwestern University djuromsorg och användning kommittén (protokoll #IS00001151). 1. Förberedelser före märkning Beredning och underhåll av primära Hippocampus kulturer Förbered primära Hippocampus kulturer vid en densitet av 150 000 celler pläterade på Poly-D-lysin-belagda (0,1 mg/ml) 18 mm täckglas. Utmärkta guider för dissocierad neuronala kul…

Representative Results

Detta protokoll för att studera handel med glutamatreceptorer bygger på differential märkning av receptorer uttryckta på cellytan och de som uttrycks i inre membran. Segregering uppnås genom märkning receptorerna före och efter membran permeabilization, med samma primära antikropp men en sekundär antikropp konjugerat till en annan fluorophore. I enlighet med de frivilliga åtgärder som ingår i protokollet är detta en mycket mångsidig metod för förhör av olika processer fö…

Discussion

Samspelet mellan en cell och dess omgivning (t. ex. kommunikation med andra celler, respons på olika stimuli, etc.), är starkt beroende av det korrekta uttrycket av receptorer på cellytan. Den snabba och finjusterade regleringen i ytan-uttryckt receptor innehåll möjliggör korrekt cellulära svar på en ständigt föränderlig miljö. I det särskilda fallet av nervceller, förändringar i antalet, lokalisering, och subenhet sammansättning synaptically uttryckt receptorer starkt påverkar synaptisk kommunikation, s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Northwestern Center för avancerad mikroskopi för användning av Nikon a1 konfokala Mikroskop och deras hjälp med att planera och analysera experimenten. Denna forskning stöddes av NIGMS (T32GM008061) (A. M. C.), och NIA (R00AG041225) och ett NARSAD Young Investigator Grant från hjärnan & beteende Research Foundation (#24133) (A. S.-C.).

Materials

18 mm dia. #1.5 thick coverglasses Neuvitro GG181.5
Alexa 555-conjugated goat anti-mouse secondary Life Technologies A21424
Alexa 555-conjugated goat anti-rabbit secondary Life Technologies A21429
Alexa 647-conjugated goat anti-mouse secondary Life Technologies A21236
Alexa 647-conjugated goat anti-rabbit secondary Life Technologies A21245
B27 Gibco 17504044
CaCl2 Sigma C7902
Corning Costar Flat Bottom Cell Culture Plates Corning 3513
Dynasore Tocris 2897
Glucose Sigma G8270
Glycine Tocris 0219
Goat anti-rabbit Fab fragments Sigma SAB3700970
HEPES Sigma H7006
KCl Sigma P9541
L-Glutamine Sigma G7513
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668019
Mouse anti-GluA1 antibody Millipore MAB2263
NaCl Sigma S6546
Neurobasal Media Gibco 21103049
NGS Abcam Ab7481
Parafilm Bemis PM999
PBS Gibco 10010023
Pelco BioWave Ted Pella 36500
PFA Alfa Aesar 43368
Picrotoxin Tocris 1128
Poly-D-lysine hydrobromide Sigma P7280
ProLong Gold Antifade Mountant Life Technologies P36934
Rabbit anti-GFP antibody Invitrogen A11122
Rabbit anti-PSD-95 antibody Cell Signaling 2507
Strychnine Tocris 2785
Sucrose Sigma S0389
Superfrost plus microscope slides Fisher 12-550-15
Triton X-100 Sigma X100
TTX Tocris 1078

References

  1. Enns, C. Overview of protein trafficking in the secretory and endocytic pathways. Current Protocols in Cell Biology. , (2001).
  2. Bedford, F. K., Binder, M. D., Hirokawa, N., Windhorst, U. . Encyclopedia of Neuroscience. , 3385-3389 (2009).
  3. Diering, G. H., Huganir, R. L. The AMPA Receptor Code of Synaptic Plasticity. Neuron. 100 (2), 314-329 (2018).
  4. Lussier, M. P., Sanz-Clemente, A., Roche, K. W. Dynamic Regulation of N-Methyl-d-aspartate (NMDA) and alpha-Amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic Acid (AMPA) Receptors by Posttranslational Modifications. The Journal of Biological Chemistry. 290 (48), 28596-28603 (2015).
  5. Traynelis, S. F., et al. Glutamate receptor ion channels: structure, regulation, and function. Pharmacological Reviews. 62 (3), 405-496 (2010).
  6. Molnar, E. Long-term potentiation in cultured hippocampal neurons. Seminars in Cell & Developmental Biology. 22 (5), 506-513 (2011).
  7. Seibenhener, M. L., Wooten, M. W. Isolation and culture of hippocampal neurons from prenatal mice. Journal of Visualized Experiments. (65), (2012).
  8. Nunez, J. Primary Culture of Hippocampal Neurons from P0 Newborn Rats. Journal of Visualized Experiments. (19), (2008).
  9. Lu, W., et al. Activation of synaptic NMDA receptors induces membrane insertion of new AMPA receptors and LTP in cultured hippocampal neurons. Neuron. 29 (1), 243-254 (2001).
  10. Sanz-Clemente, A., Nicoll, R. A., Roche, K. W. Diversity in NMDA Receptor Composition: Many Regulators, Many Consequences. The Neuroscientist: A Review Journal Bringing Neurobiology, Neurology and Psychiatry. 19 (1), 62-75 (2013).
  11. Tham, D. K. L., Moukhles, H. Determining Cell-surface Expression and Endocytic Rate of Proteins in Primary Astrocyte Cultures Using Biotinylation. Journal of Visualized Experiments. (125), (2017).
  12. Bermejo, M. K., Milenkovic, M., Salahpour, A., Ramsey, A. J. Preparation of Synaptic Plasma Membrane and Postsynaptic Density Proteins Using a Discontinuous Sucrose Gradient. Journal of Visualized Experiments. (91), e51896 (2014).
  13. Makino, H., Malinow, R. AMPA receptor incorporation into synapses during LTP: the role of lateral movement and exocytosis. Neuron. 64 (3), 381-390 (2009).
  14. Bailey, D. M., Kovtun, O., Rosenthal, S. J. Antibody-Conjugated Single Quantum Dot Tracking of Membrane Neurotransmitter Transporters in Primary Neuronal Cultures. Methods in Molecular Biology. 1570, 165-177 (2017).
  15. Trussell, L. Recording and analyzing synaptic currents and synaptic potentials. Current Protocols in Neuroscience. Chapter 6, Unit. , (2001).
  16. Barreto-Chang, O. L., Dolmetsch, R. E. Calcium Imaging of Cortical Neurons using Fura-2 AM. Journal of Visualized Experiments. (23), e1067 (2009).
check_url/fr/59982?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Chiu, A. M., Barse, L., Hubalkova, P., Sanz-Clemente, A. An Antibody Feeding Approach to Study Glutamate Receptor Trafficking in Dissociated Primary Hippocampal Cultures. J. Vis. Exp. (150), e59982, doi:10.3791/59982 (2019).

View Video