Summary

Stochastic Noise ansøgning om vurdering af mediale vestibulære Nucleus neuron følsomhed in vitro

Published: August 28, 2019
doi:

Summary

Galvanisk vestibulær stimulation i mennesker udviser forbedringer i vestibulære funktion. Men, det er ukendt, hvordan disse virkninger opstår. Her beskriver vi, hvordan man anvender sinusformet og stokastisk elektrisk støj og evaluerer passende stimulus amplituer i individuelle mediale vestibulære Nucleus neuroner i C57BL/6 musen.

Abstract

Galvanisk vestibulær stimulation (GVS) har vist sig at forbedre balance foranstaltninger hos personer med balance eller vestibulære nedskrivninger. Dette foreslås at være på grund af den stokastiske resonans (SR) fænomen, som er defineret som anvendelse af en lav-niveau/subthreshold stimulus til en ikke-lineær system til at øge påvisning af svagere signaler. Men, det er stadig ukendt, hvordan SR udviser sine positive virkninger på den menneskelige balance. Dette er en af de første demonstrationer af virkningerne af sinusformet og stokastisk støj på individuelle neuroner. Ved hjælp af hel-celle patch clamp Elektrofysiologi, sinusformet og stokastisk støj kan påføres direkte til individuelle neuroner i den mediale vestibulære Nucleus (MVN) af C57BL/6 mus. Her demonstrerer vi, hvordan man fastlægger tærsklen for MVN neuroner for at sikre de sinusformet og stokastiske stimuli er subthreshold og fra dette, bestemme de virkninger, som hver type støj har på MVN neuronal gevinst. Vi viser, at subthreshold sinusformet og stokastisk støj kan modulere følsomheden af individuelle neuroner i MVN uden at påvirke basal fyring satser.

Introduction

Den vestibulære (eller balance) system styrer vores følelse af balance ved at integrere auditive, proprioceptive, somatosensoriske og visuelle oplysninger. Nedbrydning af det vestibulære system har vist sig at forekomme som en funktion af alder og kan resultere i balance underskud1,2. Behandlinger, der er rettet mod driften af det vestibulære system, er imidlertid knappe.

Galvanisk vestibulær stimulation (GVS) har vist sig at forbedre balance foranstaltninger, autonom funktion og andre sensoriske metoder inden for mennesker3,4,5,6. Disse forbedringer siges at være på grund af den stokastiske resonans (SR) fænomen, som er stigningen i påvisning af svagere signaler i ikke-lineære systemer via anvendelse af under tærskel støj7,8. Disse undersøgelser har vist forbedringer i statisk9,10 og dynamisk11,12 balance, og vestibulære output tests såsom okulær Counter roll (OCR)13. Men, mange af disse undersøgelser har brugt forskellige kombinationer af stimulus parametre såsom hvid støj9, farvet støj13, forskellige stimulus frekvensområder og tærskel teknikker. Derfor er optimale stimulus parametre stadig ukendte, og denne protokol kan hjælpe med at bestemme de mest effektive parametre. Ud over stimulus parametre, typen af stimulus er også vigtigt i terapeutisk og eksperimentel effekt. Ovennævnte arbejde i mennesker blev udført ved hjælp af elektriske støj stimuli, mens meget af in vivo Animal arbejde har brugt mekaniske14,15 eller optogenetiske16 støj stimuli. Denne protokol vil bruge elektrisk støj til at undersøge virkningerne på vestibulære kerner.

Tidligere blev anvendelsen af GVS til stimulering af primære vestibulære afferenter udført in vivo i egern aber17, chinchillaer18, kyllinge embryoner15 og marsvin14. Men kun to af disse undersøgelser undersøgt effekten GVS har på gevinsten af primære vestibulære afferenter14,15. Disse eksperimenter blev udført in vivo, hvilket betød, at de præcise stimulerings mønstre, der blev pålagt vestibulære kerner, ikke kan bestemmes. Til vores viden har kun en anden undersøgelse anvendt stokastisk støj til individuelle enzymatisk dissocierede neuroner i centralnervesystemet19. Der er imidlertid ikke udført eksperimenter i de centrale vestibulære kerner for at vurdere passende stimulerings parametre og tærskel teknikker, hvilket gør denne protokol mere præcis ved fastsættelsen af stimulerende virkninger på individuelle neuroner i de vestibulære Kerner.

Her beskriver vi, hvordan man anvender sinusformet og stokastisk (elektrisk) støj direkte til individuelle neuroner i den mediale vestibulære kerne (MVN), bestemme neuronal tærskel og måle ændringer i gevinst/følsomhed.

Protocol

Alle forsøgsprotokoller, der er beskrevet, blev godkendt af University of Sydney Animal etik Committee (godkendt protokolnummer: 2018/1308). 1. dyr Bemærk: Mus blev hentet fra det australske gnaver Center (ARC; Perth, Australien) og afholdt på det medicinske fundament bygning Animal facilitet på University of Sydney. Vedligehold musene på en normal 12 h lys/mørk cyklus med miljømæssig berigelse. Brug mandlig og kvindelig …

Representative Results

Indledende optagelser kan give oplysninger om de virkninger, sinusformet og stokastisk støj har på basal fyring satser af individuelle MVN neuroner og hvordan stimuli effekt gevinsten af neuroner. Figur 2 viser, at hverken sinusformet eller stokastisk støj ændre basal fyring rater af MVN neuroner i forhold til kontrol (ingen støj) optagelser. Disse oplysninger er afgørende for fastsættelsen af tærsklen for de enkelte neuroner. Under anvendelsen af galvanisk vestib…

Discussion

Virkningerne af galvanisk vestibulær stimulation (GVS) på det vestibulære system er blevet fremhævet in vivo hos mennesker3,13,23, marsvin14, gnavere18 og ikke-menneskelige primater24. Ingen af disse undersøgelser har imidlertid vurderet den direkte virkning af elektrisk støj på følsomheden af individuelle neuroner i det vestibulære system. Her demo…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SPS blev støttet af University of Sydney postgraduate Research Scholarship.

Materials

CaCl Scharlau CA01951000 Used for ACSF and sACSF
D-(+)-Glucose Sigma G8270 Used for ACSF and sACSF
EGTA Sigma E0396-25G Used for K-based intracellular solution
HEPES Sigma H3375-25G Used for K-based intracellular solution
KCl Chem-supply PA054-500G Used for ACSF, sACSF and intracellular solution
K-gluconate Sigma P1847-100G Used for K-based intracellular solution
Mg-ATP Sigma A9187-500MG Used for K-based intracellular solution
MgCl Chem-supply MA00360500 Used for ACSF and sACSF
Na3-GTP Sigma G8877-100MG Used for K-based intracellular solution
NaCl Chem-supply SO02270500 Use for ACSF and intracellular solution
NaH2PO4.2H2O Ajax AJA471-500G Used for ACSF and sACSF
NaHCO3 Sigma S5761-1KG Used for ACSF and sACSF
Sucrose Chem-supply SA030-500G Used for sACSF
Isoflurane Henry Schein 1169567762 Used for anaesthetising mice
EQUIPMENT
Borosilicate glass capillaries Warner instruments GC150T-7.5 1.5mm OD, 1.16mm ID, 7.5cm length
Data acquisition software Axograph Used for electrophysiology and analysis
Friedmen-Pearson Rongeurs World precision instruments 14089 Used for dissection
Micropipette puller Narishige PP-830 Used for micropipette
Multiclamp amplifier Axon instruments 700B Used for electrophysiology
pH meter Sper scientific 860033 Used for internal solution
Standard pattern scissors FST 14028-10 Used for dissection
Sutter micromanipulator Sutter MP-225/M Used for electrophysiology
Upright microscope Olympus BX51WI Used for electrophysiology
Vibratome Leica VT1200 Used for slicing brain tissue

References

  1. Amiridis, I. G., Hatzitaki, V., Arabatzi, F. Age-induced modifications of static postural control in humans. Neuroscience Letters. 350 (3), 137-140 (2003).
  2. Iwasaki, S., Yamasoba, T. Dizziness and imbalance in the elderly: age-related decline in the vestibular system. Aging and disease. 6 (1), (2015).
  3. Fujimoto, C., et al. Noisy galvanic vestibular stimulation induces a sustained improvement in body balance in elderly adults. Scientific Reports. 6, 37575 (2016).
  4. Breen, P. P., et al. Peripheral tactile sensory perception of older adults improved using subsensory electrical noise stimulation. Medical Engineering & Physics. 38 (8), 822-825 (2016).
  5. Yamamoto, Y., Struzik, Z. R., Soma, R., Ohashi, K., Kwak, S. Noisy vestibular stimulation improves autonomic and motor responsiveness in central neurodegenerative disorders. Annals of Neurology. 58 (2), 175-181 (2005).
  6. Soma, R., Nozaki, D., Kwak, S., Yamamoto, Y. 1/f noise outperforms white noise in sensitizing baroreflex function in the human brain. Physical Review Letters. 91 (7), 078101 (2003).
  7. Wiesenfeld, K., Moss, F. Stochastic resonance and the benefits of noise: from ice ages to crayfish and SQUIDs. Nature. 373 (6509), 33-36 (1995).
  8. Moss, F., Ward, L. M., Sannita, W. G. Stochastic resonance and sensory information processing: a tutorial and review of application. Clinical Neurophysiology. 115 (2), 267-281 (2004).
  9. Goel, R., et al. Using low levels of stochastic vestibular stimulation to improve balance function. PloS one. 10 (8), e0136335 (2015).
  10. Inukai, Y., et al. Effect of noisy galvanic vestibular stimulation on center of pressure sway of static standing posture. Brain Stimulation: Basic, Translational, and Clinical Research in Neuromodulation. 11 (1), 85-93 (2018).
  11. Mulavara, A. P., et al. Using low levels of stochastic vestibular stimulation to improve locomotor stability. Frontiers in Systems Neuroscience. 9, 117 (2015).
  12. Iwasaki, S., et al. Noisy vestibular stimulation increases gait speed in normals and in bilateral vestibulopathy. Brain stimulation. 11 (4), 709-715 (2018).
  13. Serrador, J. M., Deegan, B. M., Geraghty, M. C., Wood, S. J. Enhancing vestibular function in the elderly with imperceptible electrical stimulation. Scientific Reports. 8 (1), 336 (2018).
  14. Kim, J., Curthoys, I. S. Responses of primary vestibular neurons to galvanic vestibular stimulation (GVS) in the anaesthetised guinea pig. Brain Research Bulletin. 64 (3), 265-271 (2004).
  15. Flores, A., et al. Stochastic resonance in the synaptic transmission between hair cells and vestibular primary afferents in development. Neurosciences. 322, 416-429 (2016).
  16. Huidobro, N., et al. Brownian Optogenetic-Noise-Photostimulation on the Brain Amplifies Somatosensory-Evoked Field Potentials. Frontiers in Neuroscience. 11, 464-464 (2017).
  17. Goldberg, J., Ferna, C., Smith, C. Responses of vestibular-nerve afferents in the squirrel monkey to externally applied galvanic currents. Brain Research. 252 (1), 156-160 (1982).
  18. Baird, R., Desmadryl, G., Fernandez, C., Goldberg, J. The vestibular nerve of the chinchilla. II. Relation between afferent response properties and peripheral innervation patterns in the semicircular canals. Journal of Neurophysiology. 60 (1), 182-203 (1988).
  19. Remedios, L., et al. Effects of Short-Term Random Noise Electrical Stimulation on Dissociated Pyramidal Neurons from the Cerebral Cortex. Neurosciences. 404, 371-386 (2019).
  20. Paxinos, G., Franklin, K. B. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2004).
  21. Camp, A. J., Callister, R. J., Brichta, A. M. Inhibitory synaptic transmission differs in mouse type A and B medial vestibular nucleus neurons in vitro. Journal of Neurophysiology. 95 (5), 3208-3218 (2006).
  22. Camp, A., et al. Attenuated glycine receptor function reduces excitability of mouse medial vestibular nucleus neurons. Neurosciences. 170 (1), 348-360 (2010).
  23. Iwasaki, S., et al. Effect of Noisy Galvanic Vestibular Stimulation on Ocular Vestibular-Evoked Myogenic Potentials to Bone-Conducted Vibration. Front in Neurology. 8, 26 (2017).
  24. Goldberg, J., Smith, C. E., Fernandez, C. Relation between discharge regularity and responses to externally applied galvanic currents in vestibular nerve afferents of the squirrel monkey. Journal of Neurophysiology. 51 (6), 1236-1256 (1984).
check_url/fr/60044?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Stefani, S. P., Breen, P. P., Serrador, J. M., Camp, A. J. Stochastic Noise Application for the Assessment of Medial Vestibular Nucleus Neuron Sensitivity In Vitro. J. Vis. Exp. (150), e60044, doi:10.3791/60044 (2019).

View Video