Method Article

Micro-aspiration à cellule unique comme stratégie alternative au tri cellulaire activé par fluorescence pour la séparation du mélange de virus géants

DOI:

10.3791/60148

October 27th, 2019

In This Article

Summary

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Ici, nous décrivons une méthode de micro-aspiration de cellules simples pour la séparation des amibes infectées. Afin de séparer les sous-populations virales de Vermamoeba vermiformis infectés par des Faustovirus et des virus géants inconnus, nous avons développé le protocole détaillé ci-dessous et démontré sa capacité à séparer deux nouveaux virus géants à faible abondance.

Abstract

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Pendant le processus de co-culture de l'amibe, plus d'un virus peut être isolé dans un seul puits. Nous avons précédemment résolu ce problème par dilution de point final et/ou tri activé de cellules de fluorescence (FACS) appliqué à la population virale. Cependant, lorsque les virus dans le mélange ont des propriétés morphologiques similaires et que l'un des virus se multiplie lentement, la présence de deux virus est découverte au stade de l'assemblage du génome et les virus ne peuvent pas être séparés pour une autre caractérisation. Pour résoudre ce problème, nous avons développé une procédure de micro-aspiration à cellule unique qui permet la séparation et le clonage de virus très similaires. Dans le présent travail, nous présentons comment cette stratégie alternative nous a permis de séparer les petites sous-populations virales de Clandestinovirus ST1 et Usurpativirus LCD7, virus géants qui se développent lentement et ne conduisent pas à la lyse amiale par rapport à la lytique et à croissance rapide Le Faustovirus. Le contrôle de pureté a été évalué par amplification spécifique de gène et des virus ont été produits pour davantage de caractérisation.

Introduction

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Les virus nucléocytoplasmiques de gros virus d'ADN (NCLDV) sont extrêmement divers, définis par quatre familles qui infectent des eucaryotes1. Les premiers virus décrits avec des génomes supérieurs à 300 kbp étaient Phydcodnaviridae, y compris Paramecium bursaria Chlorella virus 1 PBCV12. L'isolement et la première description de Mimivirus, a montré que la taille des virus a doublé en termes à la fois de la taille de la particule (450 nm) et la longueur du génome (1,2 Mo)3. Depuis lors, de nombreux virus géants ont été décrits, généralement isolés à l'aide d'une procédure de co-c....

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Protocol

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1. Culture Amoeba

  1. Utilisez Vermamoeba vermiformis (souche CDC19) comme support cellulaire.
  2. Ajouter 30 ml de protéase-peptone-levure extrait-glucose milieu (PYG) (tableau 1) et 3 ml d'amibes à une concentration de 1 x 106 cellules/mL dans un flacon de culture cellulaire de 75 cm2.
  3. Maintenir la culture à 28 oC.
  4. Après 48 h, quantifier les amibes à l'aide de diapositives de comptage.
  5. Pour rincer, récolter les cellules à une concentration de 1 x 106 cellules/mL et granuler les amibes par centrifugation à 720 x g pendant 10 min. Retirez le supernatant et sus....

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Results

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La micro-aspiration à cellule unique est un processus de micromanipulation optimisé dans ce manuscrit (figure 1). Cette technique permet la capture d'une amibe arrondie et infectée (figure 2A) et sa libération dans une nouvelle plaque contenant des amibes non infectées (figure 2). Il s'agit d'un prototype fonctionnel qui s'applique au système de co-culture et a réussi à isoler les virus géants non-lytiques. Cette ap.......

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Discussion

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La durée de la manipulation de micro-aspiration à cellule unique et son bon fonctionnement dépendent de l'opérateur. Les différentes étapes de l'expérience exigent de la précision. L'utilisation des composants de micromanipulation du poste de travail doit être sous contrôle constant en observant le processus de micro-aspiration et la libération de la cellule. Le suivi par observation microscopique est nécessaire pour la capture et le transfert d'une cellule. Un opérateur expérimenté peut prendre 1 à 2 h pour isoler 10 ce.......

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Disclosures

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Tous les auteurs n'ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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Les auteurs tiennent à remercier à la fois Jean-Pierre Baudoin et Olivier Mbarek pour leurs conseils et Claire Andréani pour son aide dans les corrections et les modifications en anglais. Ce travail a été soutenu par une subvention de l'Etat Français gérée par l'Agence Nationale de la Recherche dans le cadre du programme "Investissements d'avenir)" avec la référence ANR-10-IAHU-03 (Méditerranée Infection) et par Région Provence Alpes Côte d'Azur et financement européen FEDER PRIMI.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Agarose StandardEuromedexUnkownStandard PCR
AmpliTaq Gold 360 Master MixApplied Biosystems4398876Standard PCR
CellTram 4r OilEppendorf5196000030Contrôlez les cellules pendant le processus de microaspiration
Flacons de culture cellulaire Corning 150 cm2Sigma-aldrichCLS430825Culture
Fioles de culture cellulaire Corning 25 cm2Sigma-aldrichCLS430639Culture
Corning flacons de culture cellulaire 75 cm2Sigma-aldrich
Caméra DFC 425C LEICAUnkownObservation/Monitoring
Eclipse TE2000-S Microscope inverséNikonUnkownObservation/Monitoring
EZ1 avancé XLQuiagen9001874Extraction d’ADN
Glasstic Slide 10 avec grilles de comptageKova International87144EComptage cellulaire
Mastercycler nexusEppendorf6331000017Standard
PCR Microcapillaire 20 & micro ; mEppendorf5175 107.004Microaspiration et libération de cellules
Micromanipulateur InjectMan NI2Eppendorf631-0210Positionnement microcapillaire
Eau sans nucléaseThermoFischerAM9920PCR standard
Optima XPN UltracentrifugeuseBECKMAN COULTERA94469Purification du virus
Boîte de Pétri 35 mmIbidi81158Culture/observation
Filtres stériles pour seringues 5 & micro ; mSigma-aldrichSLSV025LSFiltration
SYBR vert Type IInvitrogeninconnuSondes moléculaires fluorescentes/cytométrie en flux
SYBR SafeInvitrogenS33102PCR standard ; Coloration au gel d’ADN
Tecnai G20FEIUnkownMicroscopie électronique
Type 70 Ti Rotor à angle fixe en titaneBECKMAN COULTER337922Purification du virus
Tube ultra-transparent, 25 x 89 mm2BECKMAN COULTER344058Purification du virus
CLS430641

References

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  1. Iyer, L. M., Aravind, L., Koonin, E. V. Common Origin of Four Diverse Families of Large Eukaryotic DNA Viruses. Journal of Virology. 75 (23), 11720-11734 (2001).
  2. Li, Y., et al. Analysis of 74 kb of DNA located at the right end of the 330-kb c....

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Single Cell Micro aspirationGiant Virus SeparationVirus Mixture SeparationAmoeba Co cultureCytopathic Effect ObservationMicro Capillary AspirationPCR Gene AmplificationElectron Microscopy AnalysisVermamoeba Vermiformis CultureFaustovirus Detection

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