Summary

Implantation og overvåking av PET/CT av en Orthotopic modell av Human pleural mesothelioma i Athymic mus

Published: December 21, 2019
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver generering av en orthotopic mus modell av menneskelig pleural mesothelioma av implantation av H2052/484 Mesothelioma celler inn i pleural hulrom immunsupprimerte athymic mus. Den langsgående overvåking av utviklingen av intrapleural svulster ble vurdert av ikke-invasiv multimodal [18F] -2-fluoro-2-Deoxy-D-glukose positron utslipp tomografi og beregnede tomografi Imaging.

Abstract

Ondartet pleural mesothelioma (MPM) er en sjelden og aggressiv svulst som oppstår i Mesothelium som dekker lungene, hjertet og bryst hulen. MPM utvikling er i hovedsak knyttet til asbest. Behandlinger gir bare beskjeden overlevelse siden median overlevelse gjennomsnittet er 9 – 18 måneder fra tidspunktet for diagnosen. Derfor må mer effektive behandlinger identifiseres. De fleste data som beskriver nye terapeutiske mål, ble innhentet fra in vitro-eksperimenter og må valideres i pålitelige in vivo prekliniske-modeller. Denne artikkelen beskriver en slik pålitelig MPM orthotopic modell innhentet etter injeksjon av en menneskelig MPM cellelinje H2052/484 i pleural hulrom immunodeficient athymic mus. Transplantasjon i orthotopic området kan studere progresjon av tumor i det naturlige in vivo miljø. Positron utslipps tomografi/beregnet tomografi (PET/CT) molekyl avbildning ved hjelp av klinisk [18f] -2-fluoro-2-Deoxy-D-glukose ([18F] FDG) radiotracer er diagnose metoden som er valgt for å undersøke pasienter med MPM. Følgelig [18F] FDG-pet/CT ble brukt til å lengderetningen overvåke sykdomsprogresjon av H2052/484 orthotopic modell. Denne teknikken har en høy 3R potensial (reduce antall dyr, refine å minske smerte og ubehag, og rErstatt dyr eksperimentering med alternativer) siden tumor utvikling kan overvåkes ikke-invasivt og antall dyr som kreves kan bli betydelig redusert.

Denne modellen viser en høy utviklings rate, en rask tumor vekst, er kostnadseffektiv og gir mulighet for rask klinisk oversettelse. Ved å bruke denne orthotopic xenograft MPM-modellen kan forskerne vurdere biologiske svar på en pålitelig MPM-modell etter terapeutiske intervensjoner.

Introduction

Ondartet pleural mesothelioma (MPM) er en kreft som oftest assosiert med eksponering for asbest fiber1,2,3. Selv om asbest har vært forbudt i de fleste vestlige land4,5,6, forekomsten av MPM er fortsatt økende7,8. Nylig, antyder eksponering av mus til Carbon nanorør at de kan føre til betydelig helserisiko hos mennesker9,10. Dataene tyder på at eksponering for disse produktene kan indusere kroniske betennelser og molekylære endringer (f. eks, tap av tumor-Suppressor trasé) som ligger til grunn progresjon til ondartet mesothelioma. For tiden er multiwall Carbon nanorør en av de viktigste produktene av nanoteknologi og er i økende grad innarbeidet i ulike produkter som kompositter, energi lagrings materialer, medisin, elektronikk og miljømessige Utbedring materialer.

MPM er en kreft med dårlig prognose, og de fleste pasientene dør innen to år etter diagnosen på grunn av en begrenset effekt av gjeldende behandlingsmetoder11. Valget av behandling for MPM avhenger av kreft fasen. For de fleste tidlig stadium MPM (trinn 1 og muligens noen trinn 2 eller 3 svulster), klinisk tilnærming er en multimodal terapi inkludert kirurgisk reseksjon av svulster, knyttet til strålebehandling og kjemoterapi12. En kombinert kjemoterapi med Cisplatin og pemetreksed er indisert for behandling av de fleste pasienter diagnostisert med avansert lokalt invasiv sykdom, som ikke er mottagelig for kirurgiske reseksjon, eller som ellers ikke kandidater til helbredende kirurgi13,14. Det er derfor et presserende behov for å utvikle mer effektive behandlinger for MPM pasienter. Men, det er få validerte in vivo dyremodeller som reflekterer den kliniske relevansen av MPM. Flere murine MPM modeller har blitt utviklet, men de fleste av dem ikke trofast recapitulate de komplekse aspektene av MPM tumor mikromiljøet15,16,17,18. Bruken av asbest-indusert MPM i mus, genetisk konstruerte MPM musemodeller, eller modeller av syngeneic transplantasjon av murine MPM cellelinjer er begrenset av grunnleggende fenotypiske og funksjonelle forskjeller, og følgelig dårlig oversette nye funn til klinikken. Andre prekliniske murine MPM-modeller er mest avhengige av subkutan eller xenotransplantater av humane cellelinjer i immunodeficient mus. Mens disse modellene er enkle å overvåke og gi fundamentale data, mikromiljøet av disse xenotransplantater er ikke så sammenlignbare med menneskelige svulster svekke den translational kraften i de fleste av disse prekliniske studier17,19. Omvendt, orthotopic xenotransplantater bedre reflektere pasienten svulst atferd og respons på behandling som de er omgitt av en lignende mikromiljøet som den finnes i den opprinnelige tumor området16.

Molekylær Imaging av [18F] FDG-pet/CT er metoden for valg å lengderetningen overvåke sykdomsprogresjon hos pasienter med MPM20,21. Derfor, ty til denne ikke-invasiv imaging metode sterkt fremmer oversettelsen av prekliniske studier til kliniske studier16,22. Dessuten, den hjelper å nedskrive det krevde antallet av dyrene idet hver dyr representerer dens egen administrere over tid.

I denne artikkelen presenterer vi en pålitelig orthotopic xenograft MPM-modell innhentet etter injeksjon av den menneskelige MPM cellelinjen H2052/484 inn i pleural hulrom av athymic mus. Sammen med [18F] FDG-pet/CT Imaging, denne modellen er en verdifull og reproduserbar metode for å studere funksjonelle og mekanistisk effekter av nye diagnostiske strategier og behandlinger for menneskelig MPM.

Protocol

Alle prosedyrene som er beskrevet nedenfor, ble godkjent av den institusjonelle dyre omsorgen og bruks komitéen og av veterinær Statens kontor i Genève, Sveits (Authorization GE/106/16). MPM cellelinje H2052/484 ble etablert og karakterisert i vårt laboratorium som beskrevet i artikkelen av Colin DJ og et al.23. Kort, H2052/484 cellelinje ble etablert fra en bryst svulst oppnådd etter en intrapleural injeksjon av NCI-H2052 (ATCC) celler til immunodeficient Nude mus. …

Representative Results

Den H2052/484 orthotopic modellenOrthotopic MPM modeller ved intra-bryst injeksjon av kultivert kreftceller, spesielt H2052/484 celler er relativt lett å sette opp. Det annerledes skritt beskrevet over bare forlange beskjeden cellen kulturen kunnskap og kirurgi skritt er tilgjengelighet å moderat utdannet dyr forskere. Nakne mus og celler bør manipuleres under sterile forhold for å maksimere utfallet av implantat IONS. Ved nøye å følge denne protokollen, som innebærer kort anestesi og minimal…

Discussion

Dette papiret beskriver en original orthotopic modell av MPM H2052/484 celler injisert i pleural hulrom av athymic mus og en metode for overvåking av små dyr PET/CT Imaging. Denne modellen kan implementeres med moderat dyr håndtering og kirurgi ferdigheter og viser en meget god utvikling rate. Det gjør at en stor eksperimentell vindu på ca 10 uker i ubehandlede mus og ikke-invasiv langsgående påvisning av svulster så tidlig som 2 uker etter injeksjon.

Orthotopic modeller stole på impl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble finansiert av Ligue Genevoise contre Le Cancer (til V.S.-B.) og ved Center for Biomedical Imaging (CIBM) av universiteter og sykehus i Genève og Lausanne (til D.J.C., O.B. og S.G.).

Materials

3-mice bed Minerve bed for mice imaging
Athymic Nude-Foxn1n nu/nu Envigo, Huntingdon, UK 6907F immunodeficient mouse
Betadine Mundipharma Medical Company, CH 111131 polyvidone iodine solution
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA 14190094 Buffer for cell culture
Fetal bovine serum (FBS) PAA Laboratories, Pasching, Austria A15-101 cell culture medium supplement
Insulin syringes BD Biosciences, San Jose, CA, USA 324826 syringe for cell injection
Penicillin/Streptomycin ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA 15140122 antibiotics for cell culture medium
RPMI 1640 ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA 61870010 basal cell culture medium
Temgesic (Buprenorphin 0.3 mg/mL) Alloga SA, CH 700320 opioid analgesic product
Triumph PET/SPECT/CT Trifoil, Chatsworth, CA, USA imaging equipment
Trypsin ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA 25050014 enzymatic cell dissociation buffer
Virkon S 2% Milian, Vernier, CH 972472 disinfectant
Vivoquant Invicro, Boston, MA, USA

References

  1. Grishman, E., Cohen, S., Salomon, M. I., Churg, J. Renal lesions in acute rheumatic fever. The American Journal of Pathology. 51 (6), 1045-1061 (1967).
  2. Mossman, B. T., Gee, J. B. Asbestos-related diseases. The New England Journal of Medicine. 320 (26), 1721-1730 (1989).
  3. Pass, H. I., et al. Asbestos exposure, pleural mesothelioma, and serum osteopontin levels. The New England Journal of Medicine. 353 (15), 1564-1573 (2005).
  4. Allen, L. P., Baez, J., Stern, M. E. C., Takahashi, K., George, F. Trends and the Economic Effect of Asbestos Bans and Decline in Asbestos Consumption and Production Worldwide. The Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (3), (2018).
  5. LaDou, J., et al. The case for a global ban on asbestos. Environmental Health Perspectives. 118 (7), 897-901 (2010).
  6. Soeberg, M., Vallance, D. A., Keena, V., Takahashi, K., Leigh, J. Australia’s Ongoing Legacy of Asbestos: Significant Challenges Remain Even after the Complete Banning of Asbestos Almost Fifteen Years Ago. The Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (2), (2018).
  7. Glynn, M. E., Keeton, K. A., Gaffney, S. H., Sahmel, J. Ambient Asbestos Fiber Concentrations and Long-Term Trends in Pleural Mesothelioma Incidence between Urban and Rural Areas in the United States (1973-2012). Risk Analysis. 38 (3), 454-471 (2018).
  8. Zhao, J., et al. Epidemiology and trend analysis on malignant mesothelioma in China. The Chinese Journal of Cancer Research. 29 (4), 361-368 (2017).
  9. Chernova, T., et al. Long-Fiber Carbon Nanotubes Replicate Asbestos-Induced Mesothelioma with Disruption of the Tumor Suppressor Gene Cdkn2a (Ink4a/Arf). Current Biology. 27 (21), 3302-3314 (2017).
  10. Fukushima, S., et al. Carcinogenicity of multi-walled carbon nanotubes: challenging issue on hazard assessment. The Journal of Occupational Health. 60 (1), 10-30 (2018).
  11. Robinson, B. W., Musk, A. W., Lake, R. A. Malignant mesothelioma. The Lancet. 366 (9483), 397-408 (2005).
  12. Ricciardi, S., et al. Surgery for malignant pleural mesothelioma: an international guidelines review. The Journal of Thoracic Diseases. 10, 285-292 (2018).
  13. Hiddinga, B. I., Rolfo, C., van Meerbeeck, J. P. Mesothelioma treatment: Are we on target? A review. The Journal of Advanced Research. 6 (3), 319-330 (2015).
  14. Kim, J., Bhagwandin, S., Labow, D. M. Malignant peritoneal mesothelioma: a review. Annals of Translational Medicine. 5 (11), 236 (2017).
  15. Ampollini, L., et al. Immuno-chemotherapy reduces recurrence of malignant pleural mesothelioma: an experimental setting. The European Journal of Cardiothoracic Surgery. 35 (3), 457-462 (2009).
  16. de Jong, M., Essers, J., van Weerden, W. M. Imaging preclinical tumour models: improving translational power. Nature Reviews Cancer. 14 (7), 481-493 (2014).
  17. Mak, I. W., Evaniew, N., Ghert, M. Lost in translation: animal models and clinical trials in cancer treatment. The American Journal of Translational Research. 6 (2), 114-118 (2014).
  18. Mazzocchi, A. R., Rajan, S. A. P., Votanopoulos, K. I., Hall, A. R., Skardal, A. In vitro patient-derived 3D mesothelioma tumor organoids facilitate patient-centric therapeutic screening. Scientific Reports. 8 (1), 2886 (2018).
  19. Gengenbacher, N., Singhal, M., Augustin, H. G. Preclinical mouse solid tumour models: status quo, challenges and perspectives. Nature Reviews Cancer. 17 (12), 751-765 (2017).
  20. Kanemura, S., et al. Metabolic response assessment with 18F-FDG-PET/CT is superior to modified RECIST for the evaluation of response to platinum-based doublet chemotherapy in malignant pleural mesothelioma. The European Journal of Radiology. 86, 92-98 (2017).
  21. Truong, M. T., Viswanathan, C., Godoy, M. B., Carter, B. W., Marom, E. M. Malignant pleural mesothelioma: role of CT, MRI, and PET/CT in staging evaluation and treatment considerations. Seminars in Roentgenology. 48 (4), 323-334 (2013).
  22. MacArthur Clark, J. The 3Rs in research: a contemporary approach to replacement, reduction and refinement. The British Journal of Nutrition. 120, 1-7 (2018).
  23. Colin, D. J., et al. Experimental Model of Human Malignant Mesothelioma in Athymic Mice. The International Journal of Molecular Sciences. 19 (7), (2018).
  24. Fueger, B. J., et al. Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice. The Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).
  25. Devaud, C., et al. Tissues in different anatomical sites can sculpt and vary the tumor microenvironment to affect responses to therapy. Molecular Therapy. 22 (1), 18-27 (2014).
  26. Belizário, J. E. Immunodeficient mouse models: An overview. The Open Immunology Journal. 2, 79-85 (2009).
  27. Jackaman, C., Yeoh, T. L., Acuil, M. L., Gardner, J. K., Nelson, D. J. Murine mesothelioma induces locally-proliferating IL-10(+)TNF-alpha(+)CD206(-)CX3CR1(+) M3 macrophages that can be selectively depleted by chemotherapy or immunotherapy. Oncoimmunology. 5 (6), 1173299 (2016).
  28. James, M. L., Gambhir, S. S. A molecular imaging primer: modalities, imaging agents, and applications. Physiological Reviews. 92 (2), 897-965 (2012).
  29. Kenny, L. M., Aboagye, E. O. Clinical translation of molecular imaging agents used in PET studies of cancer. Advances in Cancer Research. 124, 329-374 (2014).
check_url/60272?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Colin, D. J., Bejuy, O., Germain, S., Triponez, F., Serre-Beinier, V. Implantation and Monitoring by PET/CT of an Orthotopic Model of Human Pleural Mesothelioma in Athymic Mice. J. Vis. Exp. (154), e60272, doi:10.3791/60272 (2019).

View Video