Method Article

Isolement fiable des micronavires du système nerveux central dans cinq groupes de vertébrés

DOI:

10.3791/60291

January 12th, 2020

In This Article

Summary

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Le but de ce protocole est d'isoler les micronavires de plusieurs régions du système nerveux central des vertébrés lissencephalic et gyrencephalic.

Abstract

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L'isolement des microvaisseaux du système nerveux central (SNC) est généralement effectué en combinant le tissu cortical de plusieurs animaux, le plus souvent des rongeurs. Cette approche limite l'interrogation des propriétés de la barrière hémato-encéphalique (BBB) au cortex et ne permet pas de comparaison individuelle. Ce projet se concentre sur le développement d'une méthode d'isolement qui permet la comparaison de l'unité neurovasculaire (NVU) à partir de plusieurs régions du SNC : cortex, cervelet, lobe optique, hypothalamus, pituitaire, tronc cérébral et moelle épinière. En outre, ce protocole, initialement développé pour les échantillons de murine, a été adapté avec succès pour une utilisation sur les tissus du SNC à partir de petites et grandes espèces de vertébrés à partir de laquelle nous sommes également en mesure d'isoler les micronavires de la matière blanche de l'hémisphère cérébral. Cette méthode, lorsqu'elle est jumelée à l'immunolabeling, permet la quantitation de l'expression des protéines et la comparaison statistique entre les individus, le type de tissu ou le traitement. Nous avons prouvé cette applicabilité en évaluant des changements dans l'expression de protéine pendant l'encéphalomyélite autoimmune expérimentale (EAE), un modèle murine d'une maladie neuroinflammatoire, sclérose en plaques. En outre, les micronavires isolés par cette méthode pourraient être utilisés pour des applications en aval comme qPCR, RNA-seq, et Western blot, entre autres. Même s'il ne s'agit pas de la première tentative d'isoler les micronavires du SNC sans l'utilisation d'ultracentrifugation ou de dissociation enzymatique, il est unique dans son aptitude à la comparaison des individus isolés et de plusieurs régions du SNC. Par conséquent, il permet d'enquêter sur une gamme de différences qui pourraient autrement rester obscures : parties du SNC (cortex, cervelet, lobe optique, tronc cérébral, hypothalamus, pituitaire et moelle épinière), type tissu du SNC (matière grise ou blanche), individus, groupes de traitement expérimental et des espèces.

Introduction

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Notre cerveau est l'organe le plus important de notre corps. Pour cette raison, garder l'homéostasie du cerveau en dépit de facteurs externes qui peuvent déclencher une déviation de la normalité est une priorité. Selon certains chercheurs, il y a environ 400 à 500 millions d'années1, les animaux vertébrés ont développé ce que nous connaissons aujourd'hui comme la barrière hémato-encéphalique (BBB)2,3. Cette « clôture » protectrice exerce la plus grande influence sur l'homéostasie et les fonctions du système nerveux central (SNC) en régulant étroitement le transport des ions, des molécul....

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Protocol

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Toutes les procédures de la présente étude sont conformes aux lignes directrices fixées par l'Université de Californie (UC), le Davis Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). Les soins aux animaux de l'UC Davis sont réglementés par plusieurs ressources indépendantes et sont entièrement accrédités par l'Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC) depuis 1966. Les tissus porcins du SNC ont été obtenus auprès du Département des sciences animales de l'UCD, Laboratoire des sciences de la viande. Les tissus de CNS des macaques de rhesus ont été obtenus du département de pathologie de centre national de primate de....

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Results

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Les microvessels isolés du SNC murine ont montré tous les composants cellulaires intrinsèques de l'unité neurovasculaire2,3. Utilisation de la molécule d'adhérence des cellules endothéliales plaquettaires-1 (PECAM, également connue sous le nom de CD31) ou de l'isolectin IB4 (une glycoprotéine qui lie la cellule endothéliale glycocalyx) pour les cellules endothéliales, Le facteur de croissance dérivé des plaquettes (PDGFTRD) ou ant.......

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Discussion

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Le BBB comprend les propriétés uniques des cellules endothéliales microvasculature du cerveau couplées par une architecture sophistiquée de serré, adherens-, "peg-socket"- jonctions, et plaques d'adhérence critique pour l'homéostasie du SNC2,3,19. Les propriétés des cellules endothéliales sont induites et maintenues par les péritéytes et les processus d'astroglia environnants2,

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Disclosures

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Les auteurs n'ont rien à révéler.

Acknowledgements

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Le Dr Cruz-Orengo a reçu le soutien de l'Université de Californie, Davis, School of Veterinary Medicine Start Up Funds.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
10X PBSThermoFisherBP39920Utilisé pour le blocage et le diluant d’anticorps.
20 % PFAMicroscopie électronique Sciences15713-SUtilisé comme fixateur (4 % PFA)
70 000 MW DextranMillipore Sigma9004-54-0Utilisé pour la solution MV-2
Adson ForcepsFine Science Tools (FST)11006-12Utilisé pour l’ablation des muscles et de la peau
Adson Forceps, qualité étudianteFST91106-12Identique que ci-dessus mais moins cher
Sérum bovin albumine (BSA)Millipore SigmaA7906-100GUtilisé pour la solution MV-3, le blocage et le diluant d’anticorps
Corning 100 &mu ; m Crépine à cellulesMillipore SigmaCLS431752-50EA
Corning 70 &mu ; m Filtre à cellulesMillipore SigmaCLS431751-50EA
Corning Deskwork pointes à faible liaisonMillipore SigmaCLS4151Identique que ci-dessous mais moins cher.
Cultrex Poly-D-LysineR& D3439-100-01Utilisé pour le revêtement en glissement
Donkey anti-Goat IgG-ALEXA 555ThermoA21432Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Âne anti-souris IgG-ALEXA 488ThermoA21202Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Âne anti-Lapin IgG-ALEXA 488ThermoA21206Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Âne anti-Lapin IgG-ALEXA 647ThermoA31573Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Âne anti-Rat IgG-DyLight 650ThermoSA5-10029Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Pic à tissu à double brocheFST18067-11Utilisé pour l’ablation des méninges et du plexus choroïde
Dumont #3c ForcepsFST11231-20Utilisé pour la manipulation de tissus du SNC plus délicates et/ou plus petites (comme l’hypophyse)
Dumont #7 ForcepsFST11274-20Utilisé pour la dissection et la manipulation du syndrome du SNC
Dumont #7 Forceps, étudiantFST91197-00Identique à ci-dessus mais
moins cher ep Dualfilter T.I.P.S. LoRetention TipsEppendorf22493008de meilleure qualité que les tips ci-dessus (plus cher).
Pince Graefe extra fine, denteléeFST11151-10Utilisée pour l’ablation des os
Ciseaux fins, tranchantsFST14060-09Utilisée pour l’ablation du sac dural du porc et du macaque
Pilon en verre 1,5 mL Microcentrifuge Tube Broyeur de tissus Homogénéisateur, paquet de 10Chang Bioscience Inc. (eBay)GP1.5_10Utilisé pour l’hypothale et l’hypophyse des petits vétébrés.
Anti-CXCL12 de chèvre,PeproTech500-P87BGBTUtilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Dilution recommandée : 1:20.
Chèvre anti-JAM-BR& DAF1074Utilisé comme anticorps primaire pour évaluer la neuroinflammation. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Chèvre anti-souris IgG-ALEXA 488ThermoA11001Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Anti-souris chèvre IgG-ALEXA 555ThermoA21424Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Chèvre anti-PDGFR&beta ;R& DAF1042Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Chèvre anti-Lapin IgG-ALEXA 555ThermoA21249Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Chèvre anti-Lapin IgG-DyLight 488Thermo35552Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Anti-Rat de chèvre IgG-DyLight 650ThermoSA5-10021Utilisé comme anticorps secondaire. Dilution recommandée de 1:200.
Pince Graefe, pointe incurvée, 1X2 dentsFST11054-10Utilisation pour le maintien et l’agitation des filets filtrants en nylon
HBSS, 1X tampon avec calcium et magnésiumCorning21-022-CMUtilisé pour la solution MV-1
HEPES, tampon liquide 1MCorning25-060-CIUtilisé pour la solution MV-1
Isolectine GS-IB4-Biotin-XXThermoFisher Scientific (Thermo)I21414Glycoprotéine isolée de la légumineuse Griffonia simplicifolia qui se lie aux résidus D-galactosyle de la cellule endothéliale glycocalysx. Utilisé pour les microvaisseaux du SNC aviaire et porcin. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Ciseaux LaGrange, dentelésFST14173-12Utilisé pour la dissection du crâne et la laminectomie (sauf porc et macaque)
Lame Millicell EZ unité 8 puits MilliporeSigmaPEZGS0816
Souris anti-CLDN5Thermo35-2500Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Souris anti-GGT1Abcamab55138Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Souris anti-humaine CD31R& DBBA7Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC des primates. Concentration recommandée : 16,5 &mu ; g/mL.
ThermoRMO-270Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Souris anti-&alpha ;SMAThermoMA5-11547Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Dilution recommandée de 1:200.
Filet filtrant en nylon, rouleauMillipore SigmaNY6000010Disques de filet filtrant découpés au laser à 13 mm de diamètre. Utilisé pour les petits hypothales et hypophysaires vétérés.
Filets filtrants en nylon, 25 mmMillipore SigmaNY2002500Utilisé sur la plupart des tissus du SNC des petits vertébrés, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse. Utilisé pour l’hypothalamus et l’hypophyse du macaque et du porc.
Filets filtrants en nylon, 47 mmMillipore SigmaNY2004700Utilisé pour les tissus du SNC des macaques et des porcs, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse.
Réactif anti-décoloration ProLong Gold avec DAPIThermoFisherP36935Utilisé pour les lames de lamelles.
Lapin anti-AQP4Millipore SigmaA5971Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Dilution recommandée de 1:200.
Lapin anti-LSRMillipore SigmaSAB2107967Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Lapin anti-NG2Millipore SigmaAB5320Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Dilution recommandée de 1:200.
Lapin anti-OSPAbcamab53041Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 1 &mu ; g/mL.
Lapin anti-VE-CadhérineAbcamab33168Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Lapin anti-ZO-1Thermo61-7300Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Rat anti-CD31Becton DickinsonBD 550274Utilisé comme anticorps primaire pour les microvaisseaux murins du SNC. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Anti-GFAP pour ratThermo13-0300Utilisé comme anticorps primaire sur les microvaisseaux du SNC à partir de tous les échantillons. Dilution recommandée de 1:200.
Rat anti-VCAM-1Becton DickinsonBD 553329Utilisé comme anticorps primaire pour évaluer la neuroinflammation. Concentration recommandée : 5 &mu ; g/mL.
Solution de Ringer stérile, FrogAldon CorporationIS5066Utilisé pour l’anesthésie amfibienne
Streptavidin-ALEXA 555ThermoS32355Utilisé comme anticorps secondaire pour marquer les anticorps primaires biotinylés. Dilution recommandée de 1:500.
Streptavidin-ALEXA 647ThermoS32357Utilisé comme anticorps secondaire pour marquer les anticorps primaires biotinylés. Dilution recommandée de 1:500.
Ciseaux chirurgicaux, tranchantsFST14002-12Utilisés pour l’ablation des muscles et de la peau
Ciseaux chirurgicaux, tranchants-émoussésFST14001-16Utilisés pour la décapitation (sauf porc et macaque)
Porte-filtre Swinnex, 13 mmMillipore SigmaSX0001300Modifié par découpe laser. Utilisé pour les petits hypothales et hypophysaires vétérés.
Porte-filtre Swinnex, 25 mmMillipore SigmaSX0002500Modifié par découpe laser. Utilisé sur la plupart des tissus du SNC des petits vertébrés, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse. Utilisé pour l’hypothalamus et l’hypophyse du macaque et du porc.
Porte-filtre Swinnex, 47 mmMillipore SigmaSX0004700Modifié par découpe laser. Utilisé pour les tissus du SNC du macaque et du porc, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse.
Triton X-100ThermoFisher50-165-7277Utilisé pour le blocage et le diluant d’anticorps.
Wheaton 120 Vac Overhead SutterrerVWR (Fournisseur DWK Life Sciences)62400-904 (DWK #903475)Utilisé pour les tissus du SNC du macaque et du porc avec un broyeur de tissus de 55 ml, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse.
Broyeur de tissus Wheaton Potter-Elvehjem avec pilon en PTFE, 10 mLVWR (Fournisseur DWK Life Sciences)14231-384 (DWK #357979)Utilisé sur la plupart des tissus du SNC des petits vertébrés, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse. Utilisé pour l’hypothalamus et l’hypophyse du macaque et du porc.
Broyeur de tissus Wheaton Potter-Elvehjem avec pilon en PTFE, 55 mLVWR (Fournisseur DWK Life Sciences)14231-372 (DWK #357994)Utilisé pour les tissus du SNC du macaque et du porc, à l’exception de l’hypothalamus et de l’hypophyse.
biotinylé

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bundgaard, M., Abbott, N. J. All vertebrates started out with a glial blood-brain barrier 4-500 million years ago. Glia. 56, 699-708 (2008).
  2. Daneman, R., Prat, A. The blood-brain barrier. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7, a020412(2015).

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Central Nervous System MicrovesselsBlood Brain Barrier PropertiesNeurovascular Unit ComparisonMicrovessel Isolation TechniqueCNS Tissue DissectionMV 1 Solution HomogenizationMicrovessel Purification ProtocolImmunolabeling Detection MethodsExperimental Autoimmune EncephalomyelitisProtein Expression Quantification

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