Summary

Jämföra metastaserande clear cell njurcellscancer modell etablerad i mus njure och på kyckling chorioallantoic membranet

Published: February 08, 2020
doi:

Summary

Metastaserande klar cell njurcellscancer är en sjukdom utan en omfattande djurmodell för grundlig preklinisk undersökning. Detta protokoll illustrerar två nya djurmodeller för sjukdomen: den ortopediskt implanterade musmodellen och kycklingchorioallantoic membranmodellen, som båda visar lungmetastasering liknar kliniska fall.

Abstract

Metastaserande klar cell njurcellscancer (ccRCC) är den vanligaste subtypen av njurcancer. Lokaliserad ccRCC har ett gynnsamt kirurgiskt utfall. En tredjedel av ccRCC-patienter kommer dock att utveckla metastaser till lungan, vilket är relaterat till ett mycket dåligt resultat för patienterna. Tyvärr är ingen terapi tillgänglig för detta dödliga skede, eftersom den molekylära mekanismen för metastasering förblir okänd. Det har varit känt i 25 år att förlusten av funktion av von Hippel-Lindau (VHL) tumör suppressor genen är paognomonic av ccRCC. Ingen kliniskt relevant transgen musmodell av ccRCC har dock genererats. Syftet med detta protokoll är att införa och jämföra två nyetablerade djurmodeller för metastaserande ccRCC. Den första är njurimplantation i musmodellen. I vårt laboratorium användes CRISPR-genredigeringssystemet för att slå ut VHL-genen i flera RCC-cellinjer. Ortopediskt implantation av heterogena ccRCC populationer till njurkapseln skapade nya ccRCC modeller som utvecklar robusta lungmetastaser i immunkompetenta möss. Den andra modellen är kyckling chorioallantoic membranet (CAM) systemet. I jämförelse med musmodellen är denna modell mer tid, arbete och kostnadseffektiv. Denna modell stödde också robust tumörbildning och intravasation. På grund av den korta 10-dagarsperioden av tumörtillväxt i CAM observerades ingen överlig metastasering av immunohistochemistry (IHC) i de insamlade embryovävnaderna. Men när tumörtillväxt förlängdes med två veckor i den kläckta kycklingen observerades mikrometastaserande ccRCC-lesioner av IHC i lungorna. Dessa två nya prekliniska modeller kommer att vara användbara för att ytterligare studera den molekylära mekanismen bakom metastasering, samt att etablera nya, patienthärledda xenografts (PDXs) mot utvecklingen av nya behandlingar för metastaserande ccRCC.

Introduction

Renal cell carcinom (RCC) är den7: e vanligaste canceri USA. Årligen, 74.000 amerikaner beräknas vara nydiagnostiserade, står för mer än 14.000 dödsfall (Clear-cell histologiska subtyp, eller ccRCC, är den vanligaste subtyp, står för cirka 80% av RCC fall. Patienter med lokaliserad malignitet behandlas med nefrectomy och har en gynnsam 5-års överlevnad på 73%1. Men 25%-30% av patienterna utveckla avlägsna metastaser till vitala organ såsom lungorna, vilket resulterar i en dålig genomsnittlig överlevnad på 13 månader och 5-års överlevnad på endast 11%1,2,3. Ytterligare förståelse av metastaserande mekanismen behövs för att förbättra det dödliga resultatet för metastaserande ccRCC.

Förlusten av VHL tumör suppressor genen är ett kännetecken genetisk skada observeras i en majoritet av mänskliga ccRCC fall4,5,6,7. Den exakta oncogenic mekanismen för VHL förlust i ccRCC är dock okänd. Dessutom är VHL uttryckstatus inte förutsägande av resultatet i ccRCC8. Noterbart, trots många försök till renal-epitelial-riktade VHL knockout, forskare har misslyckats med att generera njurmedicinska onormala effekter utöver preneoplastic cystic skador observerats i möss9, även i kombination med radering av andra tumör suppressors såsom PTEN och p5310. Dessa fynd stöder tanken att Enbart VHL-förlusten är otillräcklig för tumorigenesis eller den efterföljande spontana metastasering.

Nyligen skapade vårt laboratorium en ny VHL knockout (VHL-KO) celllinje med CRISPR /Cas9 medierad borttagning av VHL genen i murine VHL + ccRCC cellinje (RENCA, eller VHL-WT)11,12. Vi visade att VHL-KO är inte bara mesenchymal, men främjar också epitel till mesenchymal övergång (EMT) av VHL-WT celler12. EMT är känt för att spela en viktig roll i metastaserande process13. Vårt arbete visade vidare att avlägsna lungmetastasering endast sker med co-implantation av VHL-KO- och VHL-WT-celler i njuren, vilket stöder en kooperativ mekanism för metastasering. Viktigt, vår ortotopiserat implanterade VHL-KO och VHL-WT modell leder till robusta lungmetastaser, rekapitulation kliniska ccRCC fall. Denna spontana metastaserande ccRCC modell kompenserar för bristen på en transgen ögonbevarande mus modell, särskilt i utvecklingen av nya anti-metastasering droger. Detta protokoll visar njurkapselimplantation av heterogena cellpopulationer av genetiskt modifierade RENCA-celler.

Kyckling CAM modeller har en lång historia inom forskning för angiogenes och tumörbiologi på grund av deras många fördelar, som sammanfattas i tabell 114,15,16,17,18. Kort är tidsfönstret för CAM tumör tillväxt kort, vilket gör att högst 11 dagar tills CAM förstörs vid kläckning av kyckling16. Trots den korta tillväxttiden, den rika näringstillförsel och immunodeficient tillstånd kyckling embryo möjliggör mycket effektiv tumör engraftment16,19,20,21. Slutligen är kostnaden för varje befruktat ägg ~ $ 1, jämfört med över $ 100 för en SCID mus. Tillsammans kan CAM-modellen fungera som en värdefull alternativ djurmodell för att etablera nya PDF-filer till en stor besparing i tid och kostnad jämfört med musen. I detta protokoll bedömde vi om modellen kunde sammanfatta biologin hos metastaserande ccRCC som observerats i musortotopmodellen.

– Jag vet inte vad du ska göra. Musen Cam Observera
Kostnad >$100 vardera ~$1 vardera Lönsamhet från 50-75%
Behov av barriärhus Ja Nej Ytterligare minskar kostnaderna och förenklar seriell övervakning av tumörer
Tumör direkt synlig Nej Ja Figur 3A
Dags att först engraftment (RENCA) 2 veckor 2-4 dagar ref 14, 15
Tillväxtpunkt (RENCA) 3-6 veckor 10 dagar ref 14, 15
Metastasering (RENCA) observerad Ja Ja hos kycklingar Bild 3D
Seriella passager Ja Ja ref 16-18
Passage till möss (RENCA) Ja Ja Hu, J., et al. under översyn (2019)
Underhåll tumör heterogenitet Ja Ja Hu, J., et al. under översyn (2019)

Tabell 1: Fördelar och begränsningar för musen och CAM-modellerna. Denna tabell jämför de två modellerna för sina fördelar och begränsningar när det gäller obligatorisk tid, kostnad, arbete, samt biologi. CAM-modellen har fördelar med effektivitet, men den har också sina egna unika begränsningar på grund av de olika morfologi mellan fåglar och däggdjur. Därför är det viktigt att bekräfta att modellen kan behålla biologi xenografts.

Protocol

Alla metoder som beskrivs här har godkänts av institutional animal care and use committee (IACUC), som utsetts till UCLA Chancellor’s Animal Research Committee (ARC) (ARC 2002-049-53 och ARC 2017-102-01A). 2002-049-53-protokollet är optimerat för implantation av ccRCC-tumörceller i njurkapseln nude eller BALB/c möss. Tumör implantation experiment i befruktade kycklingägg före kläckning kräver inte IACUC godkännande. För att förlänga tiden för etablering av lungmetastaser, embryona med CAM tumör får klä…

Representative Results

Varje experiment utfördes minst 3x om inget annat anges. Data presenteras som medelvärde ± standardavvikelse (SD). Betydelsen bestämdes av ett parat, Students T-test när det fanns två grupper eller av en enkelriktad ANOVA när det fanns tre eller flera grupper. En p-värde cutoff på 0,05 användes för att fastställa betydelse. Orthotopically implanterade RENCA celler växte framgångsrikt på möss njurarna, vilket bekr…

Discussion

För många patienter med epitel maligniteter, metastasering till vitala organ är den främsta orsaken till dödligheten. Därför är det viktigt att hitta den underliggande mekanismen och en ny väg för behandling för metastaserande sjukdom. Tyvärr finns det en brist på relevanta metastaserande ccRCC djurmodeller. Utmaningen till stor del beror på oförmåga att återskapa ccRCC hos möss trots generering av många transgena njurepithelial-riktade VHL knockout mus modeller9,<sup…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete finansierades av UCLA JCCC utsäde bidrag, UCLA 3R bidrag, UCLA CTSI, och UC TRDRP (LW). Vi tackar Crump Institutets prekliniska imaging facility, TPCL, och UCLA: s Department of Laboratory Animal Medicine (DLAM) för deras hjälp med experimentella metoder. Flow cytometri utfördes i UCLA Johnson Comprehensive Cancer Center (JCCC) och Center for AIDS Research Flow Cytometry Core Facility som stöds av National Institutes of Health Awards P30 CA016042 och 5P30 AI028697, och av JCCC, UCLA AIDS Institute, David Geffen School of Medicine vid UCLA, UCLA Kansler’s Office, och UCLA Kansler Vice’s Office of Research. Statistik konsulttjänster och dataanalys tjänster tillhandahölls av UCLA CTSI Biostatistics, Epidemiology, och Research Design (BERD) Program som stöds av NIH / National Center for Advancing Translational Science UCLA CTSI Grant Number UL1TR001881.

Materials

0.25% Trypsin, 0.1% EDTA in HBSS w/o Calcium, Magnesium and Sodium Bicarbonate Corning 25053CI
8050-N/18 Micro 8V Max Tool Kit Dremel 8050-N/18
anti-VHL antibody Abcam ab135576
BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes BD Biosciences 14-826-79
BD Pharm Lyse BD Biosciences 555899
BDGeneral Use and PrecisionGlide Hypodermic Needles Fisher Scientific 14-826-5D
DAB Chromogen Kit Biocare Medical DB801R
D-Luciferin Firefly, potassium salt Goldbio LUCK-1G
DPBS without Calcium and Magnesium Gibco LS14190250
DYKDDDDK Tag Monoclonal Antibody (FG4R) eBioscience 14-6681-82
Ethanol 200 Proof Cylinders Management 43196-11 Prepare 70% in water
Fetal Bovine Serum, Qualified, USDA-approved Regions Fisher Scientific 10-437-028
Fisherbrand Sharp-Pointed Dissecting Scissors Fisher Scientific 08-940
Fisherbrand Sterile Cotton Balls Fisher Scientific 22-456-885
FisherbrandHigh Precision Straight Tapered Ultra Fine Point Tweezers/Forceps Fisher Scientific 12-000-122
FisherbrandPremium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-129
Formaldehyde Soln., 4%, Buffered, pH 6.9 (approx. 10% Formalin soln.), For Histology MilliporeSigma 1.00496.5000
Hamilton customized syringe Hamilton 80408 25 µL, Model 702 SN, Gauge: 30, Point Style: 4, Angle: 30, Needle Length: 17 mm
HA-probe Antibody (Y-11) Santa Cruz Biotechnology sc805
Hemocytometer Hausser Scientific 3100
Hovabator Genesis 1588 Deluxe Egg Incubator Combo Kit Incubator Warehouse HB1588D
Isothesia (Isoflurane) solution Henry Schein Animal Health 1169567762
IVIS Lumina II In Vivo Imaging System Perkin Elmer
Matrigel GFR Membrane Matrix Corning C354230
Medline Surgical Instrument Drape, Clear Adhesive, 24" x 18" Medex Supply MED-DYNJSD2158
OmniPur BSA, Fraction V [Bovine Serum Albumin] Heat Shock Isolation MilliporeSigma 2910-25GM
Penicillin-Streptomycin Sollution, 100X, 10,000 IU Penicillin, 10,000ug/mL Streptomycin Fisher Scientific MT-30-002-CI
Pentobarbital Sodium Sigma Aldrich 57-33-0 Prepare 1% in saline
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch Laboratories 115-035-062
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch Laboratories 111-035-045
Povidone-Iodine Solution USP, 10% (w/v), 1% (w/v) Available Iodine, for Laboratory Use Ricca Chemical 395516
pSicoR Addgene 11579
Puromycin dihydrochloride hydrate, 99%, ACROS Organics Fisher Scientific AC227420500
Renca ATCC CRL-2947
RPMI 1640 Medium (Mod.) 1X with L-Glutamine Corning 10040CV
Scientific 96-Well Non-Skirted Plates, Low Profile Fisher Scientific AB-0700
SHARP Precision Barrier Tips, For P-200, 200 µl, 960 (10 racks of 96) Thomas Scientific 1159M40
Shipping Tape, Multipurpose, 1.89" x 109.4 Yd., Tan, Pack Of 6 Rolls Office Depot 220717
Suture Ethicon J385H
Tegaderm Transparent Dressing Original Frame Style 2 3/8" x 2 3/4" Moore Medical 1634
Thermo-Chicken Heated Pad K&H manufacturing 1000
Tygon Clear Laboratory Tubing – 1/4 x 3/8 x 1/16 wall (50 feet) Tygon AACUN017
VHL-KO CRISPR/Cas9-mediated knockout of VHL, then lentivirally labeled with flag-tagged EGFP & firefly luciferase
VHL-WT Lentivirally labeled with HA-tagged mStrawberry fluorescent protein & firefly luciferase
World Precision Instrument FORCEPS IRIS 10CM CVD SERR Fisher Scientific 50-822-331
Wound autoclips kit Braintree scientific, inc. ACS KIT
Xylenes (Histological), Fisher Chemical Fisher Scientific X3S-4

References

  1. Cohen, H. T., McGovern, F. J. Renal-cell carcinoma. The New England Journal of Medicine. 353 (23), 2477-2490 (2005).
  2. Bianchi, M., et al. Distribution of metastatic sites in renal cell carcinoma: a population-based analysis. Annals of Oncology. 23 (4), 973-980 (2012).
  3. Hsieh, J. J., et al. Renal cell carcinoma. Nature Reviews Disease Primers. 3, 17009 (2017).
  4. Foster, K., et al. Somatic mutations of the von Hippel-Lindau disease tumour suppressor gene in non-familial clear cell renal carcinoma. Human Molecular Genetics. 3, (1994).
  5. Young, A. C., et al. Analysis of VHL Gene Alterations and their Relationship to Clinical Parameters in Sporadic Conventional Renal Cell Carcinoma. Clinical Cancer Research. 15 (24), 7582-7592 (2009).
  6. Gossage, L., Eisen, T., Maher, E. R. VHL, the story of a tumour suppressor gene. Nature Reviews Cancer. 15 (1), 55-64 (2015).
  7. Sato, Y., et al. Integrated molecular analysis of clear-cell renal cell carcinoma. Nature Genetics. 45 (8), 860-867 (2013).
  8. Choueiri, T. K., et al. The role of aberrant VHL/HIF pathway elements in predicting clinical outcome to pazopanib therapy in patients with metastatic clear-cell renal cell carcinoma. Clinical Cancer Research. 19 (18), 5218-5226 (2013).
  9. Hsu, T. Complex cellular functions of the von Hippel-Lindau tumor suppressor gene: insights from model organisms. Oncogene. 31 (18), 2247-2257 (2012).
  10. Albers, J., et al. Combined mutation of Vhl and Trp53 causes renal cysts and tumours in mice. EMBO Molecular Medicine. 5 (6), 949-964 (2013).
  11. Schokrpur, S., et al. CRISPR-Mediated VHL Knockout Generates an Improved Model for Metastatic Renal Cell Carcinoma. Scientific Reports. 6, 29032 (2016).
  12. Hu, J., et al. A Non-integrating Lentiviral Approach Overcomes Cas9-Induced Immune Rejection to Establish an Immunocompetent Metastatic Renal Cancer Model. Molecular Therapy Methods & Clinical Development. 9, 203-210 (2018).
  13. Heerboth, S., et al. EMT and tumor metastasis. Clinical and Translational Medicine. 4, 6 (2015).
  14. DeBord, L. C., et al. The chick chorioallantoic membrane (CAM) as a versatile patient-derived xenograft (PDX) platform for precision medicine and preclinical research. American Journal of Cancer Research. 8 (8), 1642-1660 (2018).
  15. Hagedorn, M., et al. Accessing key steps of human tumor progression in vivo by using an avian embryo model. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (5), 1643-1648 (2005).
  16. Ribatti, D. The chick embryo chorioallantoic membrane as a model for tumor biology. Experimental Cell Research. 328 (2), 314-324 (2014).
  17. Ismail, M. S., et al. Photodynamic Therapy of Malignant Ovarian Tumours Cultivated on CAM. Lasers in Medical Science. 14 (2), 91-96 (1999).
  18. Kaufman, N., Kinney, T. D., Mason, E. J., Prieto, L. C. Maintenance of human neoplasm on the chick chorioallantoic membrane. The American Journal of Pathology. 32 (2), 271-285 (1956).
  19. Janse, E. M., Jeurissen, S. H. Ontogeny and function of two non-lymphoid cell populations in the chicken embryo. Immunobiology. 182 (5), 472-481 (1991).
  20. Leene, W., Duyzings, M. J., van Steeg, C. Lymphoid stem cell identification in the developing thymus and bursa of Fabricius of the chick. Zeitschrift fur Zellforschung und Mikroskopische Anatomie. 136 (4), 521-533 (1973).
  21. Solomon, J. B. . Foetal and neonatal immunology (Frontiers of biology). 20, (1971).
  22. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Sterile Tissue Harvest. , (2019).
  23. Palmer, T. D., Lewis, J., Zijlstra, A. Quantitative analysis of cancer metastasis using an avian embryo model. Journal of Visualized Experiments. (51), e2815 (2011).
  24. Fergelot, P., et al. The experimental renal cell carcinoma model in the chick embryo. Angiogenesis. 16 (1), 181-194 (2013).
  25. Sharrow, A. C., Ishihara, M., Hu, J., Kim, I. H., Wu, L. Using the Chicken Chorioallantoic Membrane In Vivo Model to Study Gynecological and Urological Cancers. Journal of Visualized Experiments. , (2019).
  26. Lőw, P., Molnár, K., Kriska, G. . Atlas of Animal Anatomy and Histology. , 265-324 (2016).
  27. Hu, J., Ishihara, M., Chin, A. I., Wu, L. Establishment of xenografts of urological cancers on chicken chorioallantoic membrane (CAM) to study metastasis. Precision Clinical Medicine. 2 (3), 140-151 (2019).
  28. Casar, B., et al. In vivo cleaved CDCP1 promotes early tumor dissemination via complexing with activated beta1 integrin and induction of FAK/PI3K/Akt motility signaling. Oncogene. 33 (2), 255-268 (2014).
check_url/fr/60314?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ishihara, M., Hu, J., Zhang, X., Choi, Y., Wong, A., Cano-Ruiz, C., Zhao, R., Tan, P., Tso, J. L., Wu, L. Comparing Metastatic Clear Cell Renal Cell Carcinoma Model Established in Mouse Kidney and on Chicken Chorioallantoic Membrane. J. Vis. Exp. (156), e60314, doi:10.3791/60314 (2020).

View Video