Summary

Erzeugung von Porcine Hodenorganoiden mit Testis-spezifischer Architektur mit Microwell-Kultur

Published: October 03, 2019
doi:

Summary

Hier stellen wir ein Protokoll zur reproduzierbaren Erzeugung von Schweinehodenorganoiden mit Testis-spezifischer Gewebearchitektur unter Verwendung des handelsüblichen Mikrowell-Kultursystems vor.

Abstract

Organoide sind dreidimensionale Strukturen, die aus mehreren Zelltypen bestehen, die in der Lage sind, Gewebearchitektur und Funktionen von Organen in vivo zu rekapitulieren. Die Bildung von Organoiden hat verschiedene Wege der Grundlagen- und Translationsforschung eröffnet. In den letzten Jahren haben Hodenorganoide Interesse auf dem Gebiet der männlichen Reproduktionsbiologie geweckt. Hodenorganoide ermöglichen die Untersuchung von Zell-Zell-Wechselwirkungen, Gewebeentwicklung und der Keimzellnische Mikroumgebung und ermöglichen das Screening von Arzneimitteln und Toxizitäten mit hohem Durchsatz. Eine Methode ist erforderlich, um Hodenorganoide mit Hoden-spezifischer Gewebearchitektur zuverlässig und reproduzierbar zu erzeugen. Das Mikrobrunnenkultursystem enthält eine dichte Reihe von pyramidenförmigen Mikrobrunnen. Hodenzellen, die aus präpubertären Hoden gewonnen werden, werden in diese Mikrobrunnen zentrifugiert und kultiviert, um Hodenorganoide mit hodenspezifischer Gewebearchitektur und Zellassoziationen zu erzeugen. Tausende von homogenen Organoiden können über diesen Prozess erzeugt werden. Das hier berichtete Protokoll wird für Forscher, die die Männliche Fortpflanzung untersuchen, von breitem Interesse sein.

Introduction

In den letzten Jahren ist das Interesse an dreidimensionalen (3D) Organoiden wieder gestiegen. Verschiedene Organe wie Darm1, Magen2, Bauchspeicheldrüse3,4, Leber5und Gehirn6 wurden erfolgreich in 3D-Organoid-Systeme abgeleitet. Diese Organoide haben architektonische und funktionelle Ähnlichkeiten mit den Organen in vivo und sind biologisch relevanter für die Untersuchung der Gewebemikroumgebung als monolayer Kultursysteme7. Als Ergebnis, Hodenorganoide haben begonnen, Interesse zu gewinnen sowie8,9,10,11,12. Die meisten bisher gemeldeten Methoden sind komplex, nicht hoher Durchsatz10 und erfordern die Zugabe von ECM-Proteinen8,10. Diese Komplexität führt auch zu Problemen mit der Reproduzierbarkeit. Es wird eine einfache und reproduzierbare Methode benötigt, die die Erzeugung von Hodenorganoiden mit Zellassoziationen ermöglicht, die wie Hoden in vivo sind.

Wir haben vor kurzem ein System gemeldet, um diese Anforderungen zu erfüllen12. Unter Verwendung des Schweins als Modell verwendeten wir einen zentrifugalen erzwungenen Aggregationsansatz im Mikrowell-System. Im Mikrowell-System enthält jeder Brunnen eine große Anzahl identischer kleinerer Mikrobrunnen13. Dies ermöglicht die Erzeugung zahlreicher Sphäroide einheitlicher Größe. Das Microwell-System ermöglichte die Erzeugung einer großen Anzahl einheitlicher Organoide mit einer testis-spezifischen Architektur. Das System ist einfach und erfordert keine Zugabe von ECM-Proteinen.

Protocol

HINWEIS: Die Hoden von einwöchigen Ferkeln wurden von einer gewerblichen Schweinehaltung als Nebenprodukt aus der Kastration von Handelsschweinen gewonnen. Die Beschaffung von Hoden wurde vom Animal Care Committee der University of Calgary genehmigt. 1. Herstellung von Enzymlösungen für die Gewebeverdauung HINWEIS: Es werden drei verschiedene enzymatische Lösungen benötigt, die zwei verschiedene Kollagenase-IV-Lösungen (Lösung A, B) und eine Desoxyribonuklease-…

Representative Results

Isolierte Zellen aus 1 Wochen alten Schweinehoden, die in den Mikrobrunnen selbst organisiert in Sphäroide kultiviert wurden (Abbildung 1A, Abbildung 2), mit abgegrenzten und ausgeprägten äußeren (seminiferen Epithel) und Innenfächern ( interstitium) (Abbildung 1B, Abbildung 2). Die beiden Fächer wurden durch eine Kollagen-IV+…

Discussion

Wir haben eine einfache Methode etabliert, die die konsistente, wiederholbare Erzeugung einer großen Anzahl von Hodenorganoiden mit Gewebearchitektur ermöglicht, die Hoden in vivo12ähnelt. Während der Ansatz mit Schweine-Hodenzellen entwickelt wurde, ist er breiter angelegt auch auf Maus, nicht-menschliche Primaten und menschliche Hoden12anwendbar. Für die Herstellung von Hodenorganoiden 8,9,<sup cla…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde von NIH/NICHD HD091068-01 an Dr. Ina Dobrinski unterstützt.

Materials

100 mm ultra low attachment tissue culture dish Corning #CLS3262
100 mm tissue culture dish Corning #353803
Aggrwell 400 Stemcell Technologies #34411
Anti-Adherence Rinsing Solution Stemcell Technologies #07010
Collagenase type IV from Clostridium histolyticum Sigma-Aldrich #C5138 referred as Collagenase IV S
Collagenase type IV Worthington Worthington-Biochem #LS004189 referred as Collagenase IV W
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas Sigma-Aldrich #DN25
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/F12 Gibco #11330-032
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium – high glucose Sigma-Aldrich #D6429
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich #D8537
Epidermal Growth Factor R&D Systems #236-EG
Falcon Cell Strainers 70 µm FisherScientific #352350
Falcon Cell Strainers 40 µm FisherScientific #352340
Fetal Bovine Serum ThermoFisher Scientific #12483-020
Insulin-Transferrin-Selenium Gibco #41400-045
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich #P4333
Porcine testicular tissue Sunterra Farms Ltd (Alberta, Canada)
Steriflip-GP Sterile Centrifuge Tube Top Filter Unit Millipore #SCGP00525
Trypsin-EDTA Sigma #T4049

References

  1. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  2. Barker, N., et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 6 (1), 25-36 (2010).
  3. Huch, M., et al. Unlimited in vitro expansion of adult bi-potent pancreas progenitors through the Lgr5/R-spondin axis. Embo Journal. 32 (20), 2708-2721 (2013).
  4. Boj, S. F., et al. Organoid models of human and mouse ductal pancreatic cancer. Cell. 160 (1-2), 324-338 (2015).
  5. Takebe, T., et al. Vascularized and functional human liver from an iPSC-derived organ bud transplant. Nature. 499 (7459), 481-484 (2013).
  6. Quadrato, G., et al. Cell diversity and network dynamics in photosensitive human brain organoids. Nature. 545 (7652), 48-53 (2017).
  7. Abbott, A. Cell culture: biology’s new dimension. Nature. 424 (6951), 870-872 (2003).
  8. Pendergraft, S. S., Sadri-Ardekani, H., Atala, A., Bishop, C. E. Three-dimensional testicular organoid: a novel tool for the study of human spermatogenesis and gonadotoxicity in vitrodagger. Biology of Reproduction. 96 (3), 720-732 (2017).
  9. Strange, D. P., et al. Human testicular organoid system as a novel tool to study Zika virus pathogenesis. Emerging Microbes & Infections. 7 (1), 82-82 (2018).
  10. Alves-Lopes, J. P., Soder, O., Stukenborg, J. B. Testicular organoid generation by a novel in vitro three-layer gradient system. Biomaterials. 130, 76-89 (2017).
  11. Baert, Y., et al. Primary Human Testicular Cells Self-Organize into Organoids with Testicular Properties. Stem Cell Reports. 8 (1), 30-38 (2017).
  12. Sakib, S., et al. Formation of organotypic testicular organoids in microwell culture. Biology of Reproduction. , (2019).
  13. Razian, G., Yu, Y., Ungrin, M. Production of Large Numbers of Size-controlled Tumor Spheroids Using Microwell Plates. Journal of Visualized Experiments. (81), 50665 (2013).
  14. Sakib, S., et al. Formation of organotypic testicular organoids in microwell culture. Biology of Reproduction. 100 (6), 1648-1660 (2019).
  15. González, R., Dobrinski, I. Beyond the Mouse Monopoly: Studying the Male Germ Line in Domestic Animal Models. ILAR Journal. 56 (1), 83-98 (2015).
  16. Oatley, J. M., Brinster, R. L. The germline stem cell niche unit in mammalian testes. Physiological Reviews. 92 (2), 577-595 (2012).
  17. Chen, L. Y., Willis, W. D., Eddy, E. M. Targeting the Gdnf Gene in peritubular myoid cells disrupts undifferentiated spermatogonial cell development. Proceedings of the National Academy of Science USA. 113 (7), 1829-1834 (2016).
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Citer Cet Article
Sakib, S., Yu, Y., Voigt, A., Ungrin, M., Dobrinski, I. Generation of Porcine Testicular Organoids with Testis Specific Architecture using Microwell Culture. J. Vis. Exp. (152), e60387, doi:10.3791/60387 (2019).

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