Summary

En reversibel Silicon olje-indusert øye hypertensjon modell i mus

Published: November 15, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å indusere øye hypertensjon og glaucomatous neurodegeneration i muse øyne ved intracameral injeksjon av silikon olje og prosedyren for silikon olje fjerning fra fremre kammer for å returnere forhøyet intraokulært Trykk for å Normal.

Abstract

Forhøyet intraokulært trykk (IOP) er en godt dokumentert risikofaktor for glaukom. Her beskriver vi en ny, effektiv metode for konsekvent å indusere stabil IOP-høyde i mus som etterligner postoperativ komplikasjon til bruk av silikon (SO) som en tamponade agent i humant vitreoretinal kirurgi. I denne protokollen, SO injiseres inn i fremre kammer av musen øyet å blokkere eleven og hindre tilsig av vandig humor. Den bakre kammer akkumuleres vandig humor og dette i sin tur øker IOP av bakre segmentet. En enkelt SO-injeksjon gir pålitelig, tilstrekkelig og stabil IOP-høyde, noe som medfører betydelige glaucomatous neurodegeneration. Denne modellen er en sann replikere av sekundær glaukom i øye klinikken. For ytterligere å etterligne den kliniske innstillingen, så kan fjernes fra fremre kammer for å gjenåpne drenerings veien og tillate tilsig av vandig humor, som er drenert gjennom trabekulær meshwork (TM) i vinkelen av fremre kammer. Fordi IOP går raskt tilbake til normal, kan modellen brukes til å teste effekten av å senke IOP på glaucomatous retinal Ganglion celler. Denne metoden er grei, krever ikke spesialutstyr eller gjenta prosedyrer, tett simulerer kliniske situasjoner, og kan være aktuelt for ulike dyrearter. Det kan imidlertid være nødvendig med mindre endringer.

Introduction

Den progressive tap av retinal Ganglion celler (RGCs) og deres axons er kjennetegn på glaukom, en vanlig nevrodegenerative sykdom i Retina1. Det vil påvirke mer enn 100 000 000 individer 40 − 80 år gammel av 20402. IOP er fortsatt den eneste risikofaktoren som påvirkes i utviklingen og utviklingen av glaukom. For å utforske den patogenesen, progresjon, og potensielle behandlinger av glaukom, en pålitelig, reproduserbar, og induserbart eksperimentell øye hypertensjon/glaukom modell som replikerer viktige funksjoner av menneskelige pasienter er avgjørende.

IOP avhenger av vandig humor tilsig til fremre kammer fra ciliary kroppen i bakre kammer og utløp gjennom trabekulær meshwork (TM) i vinkelen av fremre kammer. Når en steady state er nådd, opprettholdes IOP. Når tilsig overstiger eller er mindre enn strøm, øker IOP eller faller hhv. Ved å redusere den vandige strømmen enten ved å okkluderer vinkelen til fremre kammer eller ved å skade TM, har flere glaukom-modeller blitt etablert3,4,5,6,7,8,9,10. Disse modellene er vanligvis forbundet med irreversible øye vevsskade, og den høye IOP i fremre kammeret fører også til uønskede komplikasjoner som hornhinnen ødem og intraokulært betennelse, som gjør Retinal Imaging og visuell funksjon analyser vanskelig å utføre og tolke.

Å utvikle en modell som overvinner disse svakhetene, fokuserte vi på den sudocumented sekundære glaukom forårsaket av silikon olje (så) som oppstår som en postoperativ komplikasjon av menneskelig vitreoretinal kirurgi11,12. SO brukes som en tamponade i Netthinne operasjoner på grunn av sin høye overflatespenning. Men så kan fysisk tette eleven fordi det er lettere enn den vandige og glasslegemet væsker, som hindrer vandig strømme inn i fremre kammeret. Hindringen forårsaker IOP-høyden i bakre kammer på grunn av den vandige humor akkumulering. Dette motiverte oss til å utvikle og karakterisere en roman øye hypertensjon mus modell basert på intracameral så injeksjon og Pupillary blokk13, med viktige funksjoner i sekundær glaukom: effektiv Pupillary blokk, betydelig IOP-høyde som kan gå tilbake til normal etter so fjerning, og glaucomatous neurodegeneration.

Her presenterer vi en detaljert protokoll for så-indusert øye hypertensjon i musen øyet, inkludert så injeksjon og fjerning og IOP-måling.

Protocol

Alle prosedyrer er godkjent av den institusjonelle Animal Care og use Committee (IACUC) ved Stanford University. 1. øye hypertensjon induksjon ved intracameral injeksjon av SO Forbered et glass micropipette for intracameral SO injeksjon ved å trekke en glass kapillær med en pipette avtrekker å generere en micropipette. Skjær en åpning på tuppen av micropipette og gjør spissen enda skarpere med en microgrinder-beveling maskin for å lage en 35 ° − 40 ° skråkant. <li…

Representative Results

Kort tid etter injeksjonen kan vi lett identifisere mus som ikke produserer stabilt øye hypertensjon på grunn av at dråpene er for liten (≤ 1,5 mm)13. Disse dyrene er ekskludert fra senere eksperimenter. Etter injeksjon prosedyrene, mer enn 80% av så injisert mus ende opp med dråper større enn 1,6 mm. Vi målte IOP av disse muse øynene en gang i uken i 8 uker etter en enkelt så injeksjon. IOP i øyet som får så forble høy, generelt doble IOP av kontralateral kontroll øye, noe som ind…

Discussion

Her viser vi en enkel, men effektiv prosedyre for å indusere vedvarende IOP-høyde i musen øyet ved intracameral injeksjon av SO. Denne prosedyren kan læres raskt av alle som har erfaring i microdissection under et mikroskop. Den primære potensielle risikoen for svikt er lekkasje av SO fra hornhinnen snitt. Men en av fordelene med å bruke SO er at fordi olje dråpe er synlig og målbar, kan vi lett identifisere mus som fikk dråper for liten til å indusere stabilt øye hypertensjon kort tid etter injeksjon og utelu…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet av NIH tilskudd EY024932, EY023295, og EY028106 til YH.

Materials

0.5% proparacaine hydrochloride Akorn, Somerset
10mL syinge BD Luer-Lok Tip
18G needle BD with Regular Bevel, Needle Length:25.4 mm
2,2,2-Tribromoethanol (Avertin) Fisher Scientific CAS# 75-80-9 50g
32G nano BD 320122 BD Nano Ultra Fine Pen Needle-32G 4mm
33G ophalmology needle TSK/ VWR TSK3313/ 10147-200
5mL syinge BD Luer-Lok Tip
AnaSed Injection (xylazine) Butler Schein 100 mg/ml, 50 ml
artificial tears Alcon Laboratories 300651431414 Systane Ultra Lubricant Eye Drops
BSS PLUS Irrigating solution Alcon Laboratories 65080050
Dual-Stage Glass Micropipette Puller NARISHIGE PC-10
EZ-7000 Classic System EZ system
Isoflurane VetOne 502017 isoflurane, USP, 250ml/bottle
IV Administration sets EXELint/ Fisher 29081
KETAMINE HYDROCHLORIDE INJECTION VEDCO 50989-996-06 KETAVED 100mg/ml * 10ml
microgrind bevelling machine NARISHIGE EG-401
Miniature EVA Tubing McMaster-Carr 1883T4 0.05" ID, 0.09" OD, 10 ft. Length
silicon oil (SILIKON) Alcon Laboratories 8065601185 1,000 mPa.s
Standard Glass Capillaries WPI/ Fisher 1B150-4 4 in. (100mm) OD 1.5mm ID 0.84mm
TonoLab tonometer Colonial Medical Supply, Finland
veterinary antibiotic ointment Dechra Veterinary 1223RX BNP ophthalmic ointment, Vetropolycin

References

  1. Chang, E. E., Goldberg, J. L. Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement. Ophthalmology. 119 (5), 979-986 (2012).
  2. Tham, Y. C., et al. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 121 (11), 2081-2090 (2014).
  3. Pang, I. H., Clark, A. F. Rodent models for glaucoma retinopathy and optic neuropathy. Journal of Glaucoma. 16 (5), 483-505 (2007).
  4. Morrison, J. C., Johnson, E., Cepurna, W. O. Rat models for glaucoma research. Progress in Brain Research. 173, 285-301 (2008).
  5. McKinnon, S. J., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Mouse models of retinal ganglion cell death and glaucoma. Experimental Eye Research. 88 (4), 816-824 (2009).
  6. Chen, S., Zhang, X. The Rodent Model of Glaucoma and Its Implications. Asia Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia). 4 (4), 236-241 (2015).
  7. Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. J. The microbead occlusion model: a paradigm for induced ocular hypertension in rats and mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (1), 207-216 (2010).
  8. Chen, H., et al. Optic neuropathy due to microbead-induced elevated intraocular pressure in the mouse. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (1), 36-44 (2011).
  9. Cone, F. E., Gelman, S. E., Son, J. L., Pease, M. E., Quigley, H. A. Differential susceptibility to experimental glaucoma among 3 mouse strains using bead and viscoelastic injection. Experimental Eye Research. 91 (3), 415-424 (2010).
  10. Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (3), 1671-1675 (2011).
  11. Ichhpujani, P., Jindal, A., Jay Katz, L. Silicone oil induced glaucoma: a review. Graefes Archieves for Clinical and Experimental Ophthalmology. 247 (12), 1585-1593 (2009).
  12. Kornmann, H. L., Gedde, S. J. Glaucoma management after vitreoretinal surgeries. Current Opinion in Ophthalmology. 27 (2), 125-131 (2016).
  13. Zhang, J., et al. Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse. Elife. 8, (2019).
  14. Kwong, J. M., Caprioli, J., Piri, N. RNA binding protein with multiple splicing: a new marker for retinal ganglion cells. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).
  15. Rodriguez, A. R., de Sevilla Muller, L. P., Brecha, N. C. The RNA binding protein RBPMS is a selective marker of ganglion cells in the mammalian retina. Journal of Comparative Neurology. 522 (6), 1411-1443 (2014).
  16. Smith, R. S. . Systematic evaluation of the mouse eye : anatomy, pathology, and biomethods. , (2002).
check_url/fr/60409?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhang, J., Fang, F., Li, L., Huang, H., Webber, H. C., Sun, Y., Mahajan, V. B., Hu, Y. A Reversible Silicon Oil-Induced Ocular Hypertension Model in Mice. J. Vis. Exp. (153), e60409, doi:10.3791/60409 (2019).

View Video