Summary

Farelerde Geri Dönüşümlü Silikon YağA Bağlı Oküler Hipertansiyon Modeli

Published: November 15, 2019
doi:

Summary

Burada, silikon yağı intrakalik enjeksiyonu ve ön hazneden silikon yağı kaldırma prosedürü ile fare gözlerinde oküler hipertansiyon ve glokom nörodejenerasyon indüklemek için bir protokol sunmak yüksek göz içi basıncı dönmek için Normal.

Abstract

Yüksek göz içi basıncı (IOP) glokom için iyi belgelenmiş bir risk faktörüdür. Burada, insan vitreoretinal cerrahisinde tamponad ajanı olarak silikon yağı (SO) kullanımının postoperatif komplikasyonu taklit eden farelerde sürekli olarak istikrarlı IOP yükselmesini indükleyen yeni ve etkili bir yöntemi açıklıyoruz. Bu protokolde SO, göz bebeğini engellemek ve sulu mizah girişini önlemek için fare gözünün ön odasına enjekte edilir. Arka oda sulu mizah birikir ve bu da arka segmentin IOP artırır. Tek bir SO enjeksiyonu güvenilir üretir, yeterli, ve istikrarlı IOP yükseklik, hangi önemli glokom nörodejenerasyon indükler. Bu model göz kliniğinde ikincil glokom gerçek bir kopya. Daha fazla klinik ayarı taklit etmek için, SO drenaj yolunu yeniden açmak ve ön oda açısında trabeküler meshwork (TM) ile boşaltılır sulu mizah, girişine izin ön odasından kaldırılabilir. IOP hızlı bir şekilde normale döndüğünden, model glokom retinaganglion hücreleri üzerinde IOP düşürücü etkisini test etmek için kullanılabilir. Bu yöntem basittir, özel ekipman veya tekrar prosedürleri gerektirmez, klinik durumları yakından simüle eder ve çeşitli hayvan türleri için uygulanabilir. Ancak, küçük değişiklikler gerekebilir.

Introduction

Retina ganglion hücrelerinin ilerleyici kaybı (RGCs) ve aksonlar glokom, retinada yaygın bir nörodejeneratif hastalık özelliğidir1. 2040 yılına kadar 40−80 yaş ları arasında 100 milyondan fazla kişiyietkileyecektir. IOP glokom gelişimi ve ilerlemesinde tek değiştirilebilir risk faktörü olmaya devam etmektedir. Glokomun patogenezini, progresyonunu ve potansiyel tedavilerini araştırmak için, insan hastalarının temel özelliklerini kopyalayan güvenilir, tekrarlanabilir ve indükedilemez deneysel oküler hipertansiyon/glokom modeli zorunludur.

IOP, arka haznedeki siliyer gövdeden ön odaya sulu mizah girişine ve ön odanın açısında trabeküler meshwork (TM) ile çıkışa bağlıdır. Sabit bir duruma ulaştıktan sonra, IOP korunur. Giriş, çıkış sınırını aştığında veya daha az olduğunda, IOP sırasıyla yükselir veya düşer. Ön odanın açısını tıkararak veya TM’ye zarar vererek sulu çıkışazalarak3,4,5,6,7,8,9,10olmak üzere çeşitli glokom modelleri oluşturulmuştur. Bu modeller normalde geri dönüşümsüz göz dokusu hasarı ile ilişkilidir, ve ön odada yüksek IOP da kornea ödemi ve göz içi iltihabı gibi istenmeyen komplikasyonlara neden olur, hangi retinagörüntüleme ve görsel fonksiyon tahlilleri yapmak ve yorumlamak zor olun.

Bu eksikliklerin üstesinden gelen bir model geliştirmek için, insan vitreoretinal cerrahi nin ameliyat sonrası komplikasyonu olarak ortaya çıkan silikon yağının (SO) neden olduğu iyi belgelenmiş sekonder glokoma odaklandık11,12. SO, yüksek yüzey gerilimi nedeniyle retinal ameliyatlarda tamponad olarak kullanılır. Ancak, SO fiziksel olarak ön odaya sulu akışını önler sulu ve vitreus sıvıları, daha hafif olduğu için gözbebeği tıkayabilirsiniz. Tıkanıklık sulu mizah birikimi nedeniyle arka odada IOP yükselmesine neden olur. Bu geliştirmek ve intracameral SO enjeksiyonu ve pupillary blok13dayalı yeni bir oküler hipertansiyon fare modeli karakterize bizi motive , ikincil glokom temel özellikleri ile: etkili pupillary blok, SO kaldırma sonra normale dönebilirsiniz önemli IOP yüksekliği, ve glokom nörodejenerasyon.

Burada fare gözüne SO enjeksiyonu, çıkarılması ve IOP ölçümü dahil olmak üzere SO’ya bağlı oküler hipertansiyon için ayrıntılı bir protokol sokulduk.

Protocol

Tüm prosedürler Stanford Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır. 1. So intracameral enjeksiyon ile oküler hipertansiyon indüksiyonu Bir mikropipet oluşturmak için bir pipet puller ile bir cam kılcal çekerek intracameral SO enjeksiyon için bir cam mikropipet hazırlayın. Mikropipetin ucundaki bir açıklığı kesin ve 35°−40° açı yapmak için mikrodeğirmenci-beveling makinesiyle ucu daha da keskinleştirin.</li…

Representative Results

Enjeksiyondan kısa bir süre sonra, SO damlacıklarının çok küçük olması nedeniyle stabil oküler hipertansiyon üretmeyen fareleri kolayca tanımlayabiliriz (≤1.5 mm)13. Bu hayvanlar sonraki deneylerin dışında tutulur. Enjeksiyon prosedürlerini takiben, SO enjekte edilen farelerin ‘inden fazlası 1,6 mm’den daha büyük damlacıklarla sonuçlanır. Biz tek bir SO enjeksiyonsonra 8 hafta boyunca haftada bir kez bu fare gözlerinin IOP ölçüldü. SO alan gözün IOP’su yüksek ka…

Discussion

Burada SO intracameral enjeksiyon ile fare gözü sürekli IOP yükseklik indükleyen basit ama etkili bir prosedür göstermektedir. Bu işlem mikroskop altında mikrodiseksiyon deneyimi olan herkes tarafından hızlı bir şekilde öğrenilebilir. Birincil başarısızlık riski kornea kesisinden SO sızıntısıdır. Ancak, SO kullanmanın avantajlarından biri yağ damlacık görünür ve ölçülebilir olduğu için, biz kolayca enjeksiyondan kısa bir süre sonra istikrarlı oküler hipertansiyon neden ve sonraki d…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma NIH’nin YH’ye EY024932, EY023295 ve EY028106 hibeleri ile desteklenmiştir.

Materials

0.5% proparacaine hydrochloride Akorn, Somerset
10mL syinge BD Luer-Lok Tip
18G needle BD with Regular Bevel, Needle Length:25.4 mm
2,2,2-Tribromoethanol (Avertin) Fisher Scientific CAS# 75-80-9 50g
32G nano BD 320122 BD Nano Ultra Fine Pen Needle-32G 4mm
33G ophalmology needle TSK/ VWR TSK3313/ 10147-200
5mL syinge BD Luer-Lok Tip
AnaSed Injection (xylazine) Butler Schein 100 mg/ml, 50 ml
artificial tears Alcon Laboratories 300651431414 Systane Ultra Lubricant Eye Drops
BSS PLUS Irrigating solution Alcon Laboratories 65080050
Dual-Stage Glass Micropipette Puller NARISHIGE PC-10
EZ-7000 Classic System EZ system
Isoflurane VetOne 502017 isoflurane, USP, 250ml/bottle
IV Administration sets EXELint/ Fisher 29081
KETAMINE HYDROCHLORIDE INJECTION VEDCO 50989-996-06 KETAVED 100mg/ml * 10ml
microgrind bevelling machine NARISHIGE EG-401
Miniature EVA Tubing McMaster-Carr 1883T4 0.05" ID, 0.09" OD, 10 ft. Length
silicon oil (SILIKON) Alcon Laboratories 8065601185 1,000 mPa.s
Standard Glass Capillaries WPI/ Fisher 1B150-4 4 in. (100mm) OD 1.5mm ID 0.84mm
TonoLab tonometer Colonial Medical Supply, Finland
veterinary antibiotic ointment Dechra Veterinary 1223RX BNP ophthalmic ointment, Vetropolycin

References

  1. Chang, E. E., Goldberg, J. L. Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement. Ophthalmology. 119 (5), 979-986 (2012).
  2. Tham, Y. C., et al. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 121 (11), 2081-2090 (2014).
  3. Pang, I. H., Clark, A. F. Rodent models for glaucoma retinopathy and optic neuropathy. Journal of Glaucoma. 16 (5), 483-505 (2007).
  4. Morrison, J. C., Johnson, E., Cepurna, W. O. Rat models for glaucoma research. Progress in Brain Research. 173, 285-301 (2008).
  5. McKinnon, S. J., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Mouse models of retinal ganglion cell death and glaucoma. Experimental Eye Research. 88 (4), 816-824 (2009).
  6. Chen, S., Zhang, X. The Rodent Model of Glaucoma and Its Implications. Asia Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia). 4 (4), 236-241 (2015).
  7. Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. J. The microbead occlusion model: a paradigm for induced ocular hypertension in rats and mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (1), 207-216 (2010).
  8. Chen, H., et al. Optic neuropathy due to microbead-induced elevated intraocular pressure in the mouse. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (1), 36-44 (2011).
  9. Cone, F. E., Gelman, S. E., Son, J. L., Pease, M. E., Quigley, H. A. Differential susceptibility to experimental glaucoma among 3 mouse strains using bead and viscoelastic injection. Experimental Eye Research. 91 (3), 415-424 (2010).
  10. Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (3), 1671-1675 (2011).
  11. Ichhpujani, P., Jindal, A., Jay Katz, L. Silicone oil induced glaucoma: a review. Graefes Archieves for Clinical and Experimental Ophthalmology. 247 (12), 1585-1593 (2009).
  12. Kornmann, H. L., Gedde, S. J. Glaucoma management after vitreoretinal surgeries. Current Opinion in Ophthalmology. 27 (2), 125-131 (2016).
  13. Zhang, J., et al. Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse. Elife. 8, (2019).
  14. Kwong, J. M., Caprioli, J., Piri, N. RNA binding protein with multiple splicing: a new marker for retinal ganglion cells. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).
  15. Rodriguez, A. R., de Sevilla Muller, L. P., Brecha, N. C. The RNA binding protein RBPMS is a selective marker of ganglion cells in the mammalian retina. Journal of Comparative Neurology. 522 (6), 1411-1443 (2014).
  16. Smith, R. S. . Systematic evaluation of the mouse eye : anatomy, pathology, and biomethods. , (2002).

Play Video

Citer Cet Article
Zhang, J., Fang, F., Li, L., Huang, H., Webber, H. C., Sun, Y., Mahajan, V. B., Hu, Y. A Reversible Silicon Oil-Induced Ocular Hypertension Model in Mice. J. Vis. Exp. (153), e60409, doi:10.3791/60409 (2019).

View Video