Summary

Laser opsamling Microdissection af mus embryonale brusk og knogle for genekspression analyse

Published: December 18, 2019
doi:

Summary

Denne protokol beskriver laser opsamling microdissection til isolering af brusk og knogler fra friske frosne sektioner af muse embryonet. Brusk og knogler kan hurtigt visualiseres ved cresylacetat violet farvning og indsamles netop for at give høj kvalitet RNA for transcriptomic analyse.

Abstract

Laser opsamling microdissection (LCM) er et kraftfuldt værktøj til at isolere specifikke celletyper eller regioner af interesse fra heterogene væv. Den cellulære og molekylære kompleksitet af skelet elementer stiger med udvikling. Vævs heterogenitet, såsom ved grænsefladen af brusk og osseøse elementer med hinanden eller med omgivende væv, er en hindring for studiet af at udvikle brusk og knogler. Vores protokol indeholder en hurtig metode til vævs behandling og isolering af brusk og knogler, der giver høj kvalitet RNA for genekspressions analyse. Friske frosne væv af muse embryoner er sektioneret og korte cresylacetat violet farvning bruges til at visualisere brusk og knogler med farver adskiller sig fra omgivende væv. Glider derefter hurtigt dehydreret, og brusk og knogler er isoleret efterfølgende af LCM. Minimering af eksponering for vandige opløsninger under denne proces bevarer RNA-integriteten. Mus Meckels brusk og mandibulær knogle ved E 16.5 blev indsamlet med succes, og analyse af genekspression viste differens ekspression af markørgener for osteoblaster, osteocytter, osteoklaster og chondrocytter. Høj kvalitet RNA blev også isoleret fra en række væv og embryonale aldre. Denne protokol beskriver prøveforberedelse til LCM, herunder kryoindlejring, skæring, farvning og tørring af fersk frosset væv, og præcis isolering af brusk og knogler med LCM, hvilket resulterer i høj kvalitet RNA til transkriptomic analyse.

Introduction

Bevægeapparatet er et multikomponentsystem bestående af muskler, bindevæv, sener, ligament, brusk, og knogle, innerveret af nerver og vaskulariseret af blodkarrene1. Skelet vævet udvikler sig med stigende cellulær heterogenitet og strukturel kompleksitet. Brusk og knogle udvikle sig fra den samme osteochondroprogenitorafstamning og er meget beslægtede. Embryonale brusk og knogler udvikler sig i forbindelse med muskler, nerver, blodkar, og udifferentieret mesenchyme. Brusk kan også være omgivet af knogler, såsom Meckels brusk og kondylar brusk i mandibulær knogle. Disse væv er anatomisk forbundet og interagere med hinanden gennem ekstracellulære signaler under udvikling. I studiet af genekspression i udviklingen af brusk og knogler er en forhindring den heterogenitet af skeletstrukturer, der består af flere vævstyper. Præcis isolering af det specifikke væv af interesse er nøglen til en vellykket transkriptional analyse.

Laser opsamling microdissection (LCM) er et kraftfuldt værktøj til at isolere celletyper eller regioner af interesse inden for heterogene væv, og er reproducerbar og er følsom over for enkelt celleniveau2. Det kan præcist målrette og fange celler af interesse for en bred vifte af downstream-analyser i transkriptomics, Genomics, og proteomics3,4. Kvaliteten af det isolerede RNA, DNA eller protein kan vurderes med en bioanalysator eller en tilsvarende platform. For eksempel er RNA-kvalitet indikeret med RNA-integritets nummeret (RIN)5.

Her giver vi en protokol til hurtig farvning og isolering af brusk og knogler af LCM fra fersk frosset væv. Vi bruger musen embryo til at påvise, at denne protokol giver høj kvalitet RNA til efterfølgende transcriptomic analyse, såsom RNA sekventering (RNA-SEQ).

Protocol

Væv fra mus blev opnået i overensstemmelse med National Institutes of Health guide til pleje og brug af forsøgsdyr, og studie protokoller blev godkendt af den institutionelle dyrepleje og brug udvalg på Icahn School of Medicine på Mount Sinai. 1. tilberedning af frisk frosset prøve Dissekere embryo eller væv af interesse. Integrer prøven i en engangs indlejring skimmel med optimal skære temperatur (OCT) sammensatte. Justér objekternes retning med et tip eller en nål. …

Representative Results

Coronal sektioner af fersk frosset mus væv på e 16.5 blev brugt til at påvise isolation og opsamling af Meckel brusk (MC), kondulær brusk, og mandibulær knogle af LCM. Mus embryoner på E 16.5 blev dissekeret og indlejret i kryogene forme med OCT sammensatte. Prøver i forme blev hurtigt frosset i en tøris og methyl-2-butan bad og opbevares ved-80 °C. For at påvise cresylacetat violet farvning af brusk og knogler, blev cryosectioning i det koronale plan udført og prøver blev indsamle…

Discussion

LCM gør det muligt at isolere beriget eller homogen cellepopulationer fra heterogene væv. Dens fordele omfatter hurtig og præcis opsamling af celler i deres in vivo kontekst, mens potentielle ulemper omfatter det at være tidskrævende, dyrt, og begrænset af behovet for brugeren at genkende særskilte delpopulationer inden for en bestemt prøve30. Denne protokol indeholder oplysninger om LCM af mus embryonale brusk og knogler, fremhæver brugen af cresylacetat violet farvning i en hur…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Institute of Dental and craniofacial Research (R01DE022988) og Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health og Human Development (P01HD078233). Forfatterne takker Biorepositoriet og patologi kerne for adgang til Leica LMD 6500-platformen på Icahn School of Medicine på Mount Sinai.

Materials

2-Methylbutane ThermoFisher Scientific O3551-4
Bioanalyzer Agilent G2939BA
Centrifuge tube ThermoFisher Scientific 339653 Conical sterile polypropylene centrifuge tubes, 50 mL
Cresyl violet acetate Sigma-Aldrich C5042
Cryostat Leica Biosystems CM3050 S
Delicate task wiper ThermoFisher Scientific 06-666
Disposable embedding mold ThermoFisher Scientific 1220
Distilled water Invitrogen 10977-015 DNase/RNase-Free
Ethanol, absolute (200 proof) ThermoFisher Scientific BP2818 Molecular biology grade
Glass PEN membrane slide Leica Microsystems 11505158
LCM system Leica Microsystems Leica LMD6500
Microscope cover glass ThermoFisher Scientific 12-545FP
Microscope slides ThermoFisher Scientific 12-550-15
OCT compound Electron Microscopy Sciences 102094-106
PCR tube with flat cap, 0.5 mL Axygen PCR-05-C LCM collection tubes
Permanent mounting medium Vector Laboratories H-5000
RNA isolation kit ThermoFisher Scientific KIT0204
RNase decontamination agent Sigma-Aldrich R2020 RNase decontamination agent for cleaning surfaces
Xylene Sigma-Aldrich 214736

References

  1. Kardon, G. Development of the musculoskeletal system: Meeting the neighbors. Development. 138 (14), 2855-2859 (2011).
  2. Nichterwitz, S., Chen, G., et al. Laser capture microscopy coupled with Smart-seq2 for precise spatial transcriptomic profiling. Nature Communications. 7, 12139 (2016).
  3. Liu, A. Laser capture microdissection in the tissue biorepository. Journal of Biomolecular Techniques. 21 (3), 120-125 (2010).
  4. Datta, S., et al. Laser capture microdissection: Big data from small samples. Histology and Histopathology. 30 (11), 1255-1269 (2015).
  5. Schroeder, A., Mueller, O., et al. The RIN: An RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Molecular Biology. 7 (3), (2006).
  6. Motch Perrine, S. M., Wu, M., et al. Mandibular dysmorphology due to abnormal embryonic osteogenesis in FGFR2-related craniosynostosis mice. Disease Models & Mechanisms. 12 (5), (2019).
  7. Holmes, G., O’Rourke, C., et al. Midface and upper airway dysgenesis in FGFR2-craniosynostosis involves multiple tissue-specific and cell cycle effects. Development. 145 (19), (2018).
  8. Ewels, P., Magnusson, M., Lundin, S., Käller, M. MultiQC: Summarize analysis results for multiple tools and samples in a single report. Bioinformatics. 32 (19), 3047-3048 (2016).
  9. Tromp, G., Kuivaniemi, H., et al. Structure of a full-length cDNA clone for the preproα1(I) chain of human type I procollagen. Biochemical Journal. 253 (3), 919-922 (1988).
  10. De Wet, W., Bernard, M., et al. Organization of the human pro-alpha 2(I) collagen gene. Journal of Biological Chemistry. 262 (33), 16032-16036 (1987).
  11. Bonewald, L. F. The amazing osteocyte. Journal of Bone and Mineral Research. 26 (2), 229-238 (2011).
  12. Toyosawa, S., Shintani, S., et al. Dentin matrix protein 1 is predominantly expressed in chicken and rat osteocytes but not in osteoblasts. Journal of Bone and Mineral Research. 16 (11), 2017-2026 (2001).
  13. Guo, D., et al. Identification of osteocyte-selective proteins. Proteomics. 10 (20), 3688-3698 (2010).
  14. Ducy, P., Zhang, R., Geoffroy, V., Ridall, A. L., Karsenty, G. Osf2/Cbfa1: A transcriptional activator of osteoblast differentiation. Cell. 89 (5), 747-754 (1997).
  15. Nakashima, K., Zhou, X., et al. The novel zinc finger-containing transcription factor osterix is required for osteoblast differentiation and bone formation. Cell. 108 (1), 17-29 (2002).
  16. Termine, J. D., et al. Osteonectin, a bone-specific protein linking mineral to collagen. Cell. 26 (1), 99-105 (1981).
  17. Baldwin, C. T., Reginato, A. M., Prockop, D. J. A new epidermal growth factor-like domain in the human core protein for the large cartilage-specific proteoglycan. Evidence for alternative splicing of the domain. Journal of Biological Chemistry. 264 (27), 15747-15750 (1989).
  18. Strom, C. M., Upholt, W. B. Isolation and characterization of genomic clones corresponding to the human type II procollagengene. Nucleic Acids Research. 12 (2), 1025-1038 (1984).
  19. Ninomiya, Y., Olsen, B. R. Synthesis and characterization of cDNA encoding a cartilage-specific short collagen. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 81 (10), 3014-3018 (1984).
  20. Muragaki, Y., Mariman, E. C. M., et al. A mutation in the gene encoding the alpha 2 chain of the fibril-associated collagen IX, COL9A2, causes multiple epiphyseal dysplasia (EDM2). Nature Genetics. 12 (1), 103-105 (1996).
  21. Brewton, R. G., Wood, B. M., et al. Molecular cloning of the alpha 3 chain of human type IX collagen: linkage of the gene COL9A3 to chromosome 20q13.3. Genomics. 30 (2), 329-336 (1995).
  22. Newton, G., Weremowicz, S., et al. Characterization of human and mouse cartilage oligomeric matrix protein. Genomics. 24 (3), 435-439 (1994).
  23. Hiraki, Y., Mitsui, K., et al. Molecular cloning of human chondromodulin-I, a cartilage-derived growth modulating factor, and its expression in Chinese hamster ovary cells. European Journal of Biochemistry. 260 (3), 869-878 (1999).
  24. Smits, P., Li, P., et al. The transcription factors L-Sox5 and Sox6 are essential for cartilage formation. Developmental Cell. 1 (2), 277-290 (2001).
  25. Hayman, A. R., Jones, S. J., et al. Mice lacking tartrate-resistant acid phosphatase (Acp 5) have disrupted endochondral ossification and mild osteopetrosis. Development. 122 (10), 3151-3162 (1996).
  26. Dai, X. -. M., Ryan, G. R., et al. Targeted disruption of the mouse colony-stimulating factor 1 receptor gene results in osteopetrosis, mononuclear phagocyte deficiency, increased primitive progenitor cell frequencies, and reproductive defects. Blood. 99 (1), 111-120 (2002).
  27. Gowen, M., Lazner, F., et al. Cathepsin K knockout mice develop osteopetrosis due to a deficit in matrix degradation but not demineralization. Journal of Bone and Mineral Research. 14 (10), 1654-1663 (1999).
  28. Faccio, R., Takeshita, S., Zallone, A., Ross, F. P., Teitelbaum, S. L. c-Fms and the αvβ3 integrin collaborate during osteoclast differentiation. Journal of Clinical Investigation. 111 (5), 749-758 (2003).
  29. Kim, N., Takami, M., Rho, J., Josien, R., Choi, Y. A novel member of the leukocyte receptor complex regulates osteoclast differentiation. The Journal of Experimental Medicine. 195 (2), 201-209 (2002).
  30. Mahalingam, M. Laser Capture Microdissection: Insights into Methods and Applications. Methods in Molecular Biology. 11723, 1-17 (2018).
  31. Goldsworthy, S. M., Stockton, P. S., Trempus, C. S., Foley, J. F., Maronpot, R. R. Effects of fixation on RNA extraction and amplification from laser capture microdissected tissue. Molecular Carcinogenesis. 25 (2), 86-91 (1999).
  32. Clément-Ziza, M., Munnich, A., Lyonnet, S., Jaubert, F., Besmond, C. Stabilization of RNA during laser capture microdissection by performing experiments under argon atmosphere or using ethanol as a solvent in staining solutions. RNA. 14 (12), 2698-2704 (2008).
  33. Farris, S., Wang, Y., Ward, J. M., Dudek, S. M. Optimized method for robust transcriptome profiling of minute tissues using laser capture microdissection and low-input RNA-seq. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 185 (2017).
  34. Espina, V., Heiby, M., Pierobon, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert Review of Molecular Diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
  35. Martuscello, R. T., Louis, E. D., Faust, P. L. A stainless protocol for high quality RNA isolation from laser capture microdissected Purkinje cells in the human post-mortem cerebellum. Journal of Visualized Experiments. (143), (2019).
  36. Bevilacqua, C., Makhzami, S., Helbling, J. C., Defrenaix, P., Martin, P. Maintaining RNA integrity in a homogeneous population of mammary epithelial cells isolated by Laser Capture Microdissection. BMC Cell Biology. 11 (95), (2010).
  37. Takahashi, N., Tarumi, W., Hamada, N., Ishizuka, B., Itoh, M. T. Cresyl violet stains mast cells selectively: Its application to counterstaining in immunohistochemistry. Zoological Science. 34 (2), 147-150 (2017).
  38. Sheldon, A. R., Almli, L., Ferriero, D. M. Copper/zinc superoxide dismutase transgenic brain in neonatal hypoxia-ischemia. Methods in Enzymology. 353, 389-397 (2002).
  39. Kolijn, K., Van Leenders, G. J. L. H. Comparison of RNA extraction kits and histological stains for laser capture microdissected prostate tissue. BMC Research Notes. 9, 17 (2016).
  40. Cummings, M., et al. A robust RNA integrity-preserving staining protocol for laser capture microdissection of endometrial cancer tissue. Analytical Biochemistry. 416 (1), 123-125 (2011).
  41. Filliers, M., et al. Laser capture microdissection for gene expression analysis of inner cell mass and trophectoderm from blastocysts. Analytical Biochemistry. 408 (1), 169-171 (2011).
  42. Vandewoestyne, M., et al. Laser capture microdissection: Should an ultraviolet or infrared laser be used?. Analytical Biochemistry. 439 (2), 88-98 (2013).
  43. Ayturk, U. RNA-seq in skeletal biology. Current Osteoporosis Reports. 17 (4), 178-185 (2019).
  44. Van Den Brink, S. C., et al. Single-cell sequencing reveals dissociation-induced gene expression in tissue subpopulations. Nature Methods. 14 (10), 935-936 (2017).
  45. Adam, M., Potter, A. S., Potter, S. S. Psychrophilic proteases dramatically reduce single-cell RNA-seq artifacts: A molecular atlas of kidney development. Development. 144 (19), 3625-3632 (2017).
  46. Chen, J., et al. Spatial transcriptomic analysis of cryosectioned tissue samples with Geo-seq. Nature Protocols. 12 (3), 566-580 (2017).
check_url/fr/60503?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wu, M., Kriti, D., van Bakel, H., Jabs, E. W., Holmes, G. Laser Capture Microdissection of Mouse Embryonic Cartilage and Bone for Gene Expression Analysis. J. Vis. Exp. (154), e60503, doi:10.3791/60503 (2019).

View Video