Denne protokol beskriver laser opsamling microdissection til isolering af brusk og knogler fra friske frosne sektioner af muse embryonet. Brusk og knogler kan hurtigt visualiseres ved cresylacetat violet farvning og indsamles netop for at give høj kvalitet RNA for transcriptomic analyse.
Laser opsamling microdissection (LCM) er et kraftfuldt værktøj til at isolere specifikke celletyper eller regioner af interesse fra heterogene væv. Den cellulære og molekylære kompleksitet af skelet elementer stiger med udvikling. Vævs heterogenitet, såsom ved grænsefladen af brusk og osseøse elementer med hinanden eller med omgivende væv, er en hindring for studiet af at udvikle brusk og knogler. Vores protokol indeholder en hurtig metode til vævs behandling og isolering af brusk og knogler, der giver høj kvalitet RNA for genekspressions analyse. Friske frosne væv af muse embryoner er sektioneret og korte cresylacetat violet farvning bruges til at visualisere brusk og knogler med farver adskiller sig fra omgivende væv. Glider derefter hurtigt dehydreret, og brusk og knogler er isoleret efterfølgende af LCM. Minimering af eksponering for vandige opløsninger under denne proces bevarer RNA-integriteten. Mus Meckels brusk og mandibulær knogle ved E 16.5 blev indsamlet med succes, og analyse af genekspression viste differens ekspression af markørgener for osteoblaster, osteocytter, osteoklaster og chondrocytter. Høj kvalitet RNA blev også isoleret fra en række væv og embryonale aldre. Denne protokol beskriver prøveforberedelse til LCM, herunder kryoindlejring, skæring, farvning og tørring af fersk frosset væv, og præcis isolering af brusk og knogler med LCM, hvilket resulterer i høj kvalitet RNA til transkriptomic analyse.
Bevægeapparatet er et multikomponentsystem bestående af muskler, bindevæv, sener, ligament, brusk, og knogle, innerveret af nerver og vaskulariseret af blodkarrene1. Skelet vævet udvikler sig med stigende cellulær heterogenitet og strukturel kompleksitet. Brusk og knogle udvikle sig fra den samme osteochondroprogenitorafstamning og er meget beslægtede. Embryonale brusk og knogler udvikler sig i forbindelse med muskler, nerver, blodkar, og udifferentieret mesenchyme. Brusk kan også være omgivet af knogler, såsom Meckels brusk og kondylar brusk i mandibulær knogle. Disse væv er anatomisk forbundet og interagere med hinanden gennem ekstracellulære signaler under udvikling. I studiet af genekspression i udviklingen af brusk og knogler er en forhindring den heterogenitet af skeletstrukturer, der består af flere vævstyper. Præcis isolering af det specifikke væv af interesse er nøglen til en vellykket transkriptional analyse.
Laser opsamling microdissection (LCM) er et kraftfuldt værktøj til at isolere celletyper eller regioner af interesse inden for heterogene væv, og er reproducerbar og er følsom over for enkelt celleniveau2. Det kan præcist målrette og fange celler af interesse for en bred vifte af downstream-analyser i transkriptomics, Genomics, og proteomics3,4. Kvaliteten af det isolerede RNA, DNA eller protein kan vurderes med en bioanalysator eller en tilsvarende platform. For eksempel er RNA-kvalitet indikeret med RNA-integritets nummeret (RIN)5.
Her giver vi en protokol til hurtig farvning og isolering af brusk og knogler af LCM fra fersk frosset væv. Vi bruger musen embryo til at påvise, at denne protokol giver høj kvalitet RNA til efterfølgende transcriptomic analyse, såsom RNA sekventering (RNA-SEQ).
LCM gør det muligt at isolere beriget eller homogen cellepopulationer fra heterogene væv. Dens fordele omfatter hurtig og præcis opsamling af celler i deres in vivo kontekst, mens potentielle ulemper omfatter det at være tidskrævende, dyrt, og begrænset af behovet for brugeren at genkende særskilte delpopulationer inden for en bestemt prøve30. Denne protokol indeholder oplysninger om LCM af mus embryonale brusk og knogler, fremhæver brugen af cresylacetat violet farvning i en hur…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev støttet af National Institute of Dental and craniofacial Research (R01DE022988) og Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health og Human Development (P01HD078233). Forfatterne takker Biorepositoriet og patologi kerne for adgang til Leica LMD 6500-platformen på Icahn School of Medicine på Mount Sinai.
2-Methylbutane | ThermoFisher Scientific | O3551-4 | |
Bioanalyzer | Agilent | G2939BA | |
Centrifuge tube | ThermoFisher Scientific | 339653 | Conical sterile polypropylene centrifuge tubes, 50 mL |
Cresyl violet acetate | Sigma-Aldrich | C5042 | |
Cryostat | Leica Biosystems | CM3050 S | |
Delicate task wiper | ThermoFisher Scientific | 06-666 | |
Disposable embedding mold | ThermoFisher Scientific | 1220 | |
Distilled water | Invitrogen | 10977-015 | DNase/RNase-Free |
Ethanol, absolute (200 proof) | ThermoFisher Scientific | BP2818 | Molecular biology grade |
Glass PEN membrane slide | Leica Microsystems | 11505158 | |
LCM system | Leica Microsystems | Leica LMD6500 | |
Microscope cover glass | ThermoFisher Scientific | 12-545FP | |
Microscope slides | ThermoFisher Scientific | 12-550-15 | |
OCT compound | Electron Microscopy Sciences | 102094-106 | |
PCR tube with flat cap, 0.5 mL | Axygen | PCR-05-C | LCM collection tubes |
Permanent mounting medium | Vector Laboratories | H-5000 | |
RNA isolation kit | ThermoFisher Scientific | KIT0204 | |
RNase decontamination agent | Sigma-Aldrich | R2020 | RNase decontamination agent for cleaning surfaces |
Xylene | Sigma-Aldrich | 214736 |