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Article de méthode

Infiltration de Leukocyte de Cremaster Muscle chez les souris évaluées par microscopie intravitale

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DOI :

10.3791/60509

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15 avril 2020

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ici, nous montrons comment effectuer la microscopie intravitale sur les venules post-capillaires du muscle de cremaster de souris. Communément appliqués à différents modèles d’inflammation et de septicémie, en particulier ceux induits par les chimiothérapeutiques et les cytokines, nous soulignons sa pertinence dans l’étude des muscolopathies impliquant l’infiltration musculaire exagérée de leucocyte.

Résumé

La microscopie intravitale (IVM) est largement utilisée pour surveiller les processus physiologiques et pathophysiologiques dans la cascade de recrutement de leucocytes in vivo. Le protocole actuel représente une méthode pratique et reproductible pour visualiser l’interaction endothélium leucocyte menant au recrutement de leucocytes dans le tissu dérivé du muscle squelettique dans l’organisme intact de la souris. Le modèle s’applique à tous les domaines de recherche qui mettent l’accent sur l’activation des granulocytes et leur rôle dans la maladie.

Nous fournissons un protocole étape par étape pour guider à travers la méthode et pour mettre en évidence les pièges potentiels et les difficultés techniques. Le protocole couvre les aspects suivants : réglages expérimentaux et matériel requis, anesthésie de la souris, dissection du muscle cremaster ainsi que cannulation trachéale et carotide, enregistrements IVM et analyse hors ligne. Les formats de données comme les leucocytes adhérents, le flux roulant (RF) et la fraction de flux roulant (RFF) sont expliqués en détail et les applications appropriées sont discutées. Les résultats représentatifs des souris de mdx déficientes de dystrophine sont fournis dans la section des résultats.

IVM est un outil puissant pour évaluer le recrutement de leucocytes dans un cadre in vivo; cependant, la délimitation par exemple la fonction endothéliale et leucocyte peut nécessiter une combinaison avec des configurations ex vivo comme des expériences de chambre de flux. En outre, le contexte génétique des animaux d’intérêt peut grandement influencer le recrutement de base, nécessitant un réglage individuel du protocole fourni. Malgré ses limites, IVM peut servir de plate-forme pour traduire facilement les résultats in vitro en un organisme vertébré vivant.

Introduction

La microscopie intravitale (IVM) est un outil couramment appliqué dans le domaine de la biologie du leucocyte. Le recrutement de leukocyte suit une cascade d’événements bien définis initiés par la capture de leucocyte, le roulement et l’adhésion au mur endothélial, et enfin la transmigration et l’extravasation des leucocytes au site réel de l’inflammation1. Chaque étape est médiatisée et contrôlée par diverses chimiothéines (p. ex., IL-8/CXCL8), les récepteurs (p. ex., LFA-1, Mac-1) et les molécules correspondantes d’adhérence cellulaire endothéliale (p. ex., ICAM-1, VCAM-1 et E-Selectin)2,,3....

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Protocole

Des animaux ont été logés dans des conditions contrôlées et spécifiques exemptes d’agents pathogènes à l’IBF (Interfakultàre Biomedizinische Forschungseinrichtung), Heidelberg. Toutes les procédures décrites ici ont été approuvées par la CISR locale et le Regierungspraesidium Karlsruhe, Bade-Wurtemberg, Allemagne.

1. Administration d’anesthésie

  1. Anesthésiez la souris par injection intraperitoneal (c.-à-d.) de 125 mg/kg de kétamine et de 12,5 mg/kg de xylazine.
  2. Placer et fixer la souris dans une position couchée dorsale sur un coussin chauffant pour maintenir la température corporelle de la souris (36,5-38 oC). Utilisez un....

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Résultats

IVM selon le protocole fourni donnera un aperçu unique de la cascade de recrutement de leucocytes dans le muscle squelettique. La section des résultats se concentrera sur les résultats typiques obtenus par IVM et mettra en évidence les problèmes potentiels qui peuvent rencontrer.

La configuration expérimentale de la microscopie intravitale est décrite dans la figure 1. La préparation du muscle de cremaster et l’ablation du tissu conjonctif sont cruciales pour obte.......

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Discussion

IVM comme méthode a été largement utilisé pour étudier différents types de cellules dans différents organes et a été largement décrit et discuté19. L’objectif principal de cette étude est de fournir une approche efficace pour mettre en place et effectuer IVM dans le muscle cremaster. La pratique de la méthode produira des résultats fiables et reproductibles. Ainsi, la planification et la normalisation sont des facteurs clés pour maîtriser la technique. Par-dessus tout, la technique est très dépend.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le Ministère fédéral allemand de l’éducation et de la recherche (BMBF) 01GL1746E dans le cadre du Consortium PRIMAL. Les auteurs reconnaissent Britta Heckmann et Silvia Pezer pour leur assistance technique habile.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Material
Ketanest SPfizer Pharma GmbHPZN : 08509909anesthésie. Générique / Nom IUPAC : kétamine
XylazineCP-Pharma GmbHN° d’article : 1205  ;anesthésie. Nom générique / IUPAC : xylazine (sous forme d’hidrochlorure)
Solution salineB. Braun Melsungen  ;PZN 02737756préparation chirurgicale. Générique / Nom IUPAC : chlorure de sodium
Seringue aiguille Omnican FB. Braun Melsungen  ;REF 9161502préparation chirurgicale
Suture 6/0 USPResorbaREF 4217préparation chirurgicale
Tube en polyéthylène #10  ;BD GmbHFournisseur n° 427401préparation chirurgicale
Tube en polyéthylène #90  ;BD GmbHFournisseur n° 427421préparation chirurgicale
Rhodamine 6GSigma-Aldrich Chemie GmbHNuméro CAS 989-38-8  ;coloration leucocytaire. Nom générique / IUPAC : éthyle 2-[3-(éthylamino)-6-éthylimino-2,7-diméthylxanthène-9-yl]benzoate
Équipement de configuration
Microscope vertical  ;Olympe  ;BX51W1microscopie
40 fois objectif  ;ZeissAchroplan 40 & times ; /0.80 Wmicroscopie
ImSpector logicielLavision Biotec GmbHversion 4.0.469logiciel
ImageJNational Institute of Health, États-Unisversion 1.51j8logiciel

Références

  1. Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nature Reviews. Immunology. 7 (9), 678-689 (2007).
  2. Zanardo, R. C. O., et al.

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Réimpressions et autorisations

Étiquettes

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