Denna artikel visar en extradural strategi för att utplåna marsvin endolymphatic säcken och skada endolymphatic trumman med en fin plocka för att inducera experimentella endolymphatic hydrops.
Endolymphatic hydrops är en utvidgning av scala media som oftast förknippas med Menieres sjukdom, även om pathophysiologic mekanismen (s) fortfarande oklart. För att på lämpligt sätt studera attributen för endolymphatic hydrops, såsom ursprunget till lågfrekvent hörselnedsättning, behövs en tillförlitlig modell. Marsvinet är en bra modell eftersom det hör i lågfrekventa regioner som är förmodat påverkas av endolymphatic hydrops. Tidigare forskning har visat att endolymphatic hydrops kan induceras kirurgiskt via intradural eller extradural metoder som innebär borrning på endolymphatic trumman och säcken. Men om det var möjligt att skapa en endolymphatic hydrops modell med hjälp av en extradural strategi som undvek farliga borrning på endolymphatic trumman och säcken var okänd. Syftet med denna studie var att visa en reviderad extradural strategi för att inducera experimentella endolymphatic hydrops vid 30 dagar postoperativt genom att utplåna endolymphatic säcken och skada endolymphatic trumman med en fin plocka. Urvalet storlek bestod av sju marsvin. Funktionella mätningar av förhandlingen gjordes och tidsmässiga ben skördades därefter för histologic analys. Tillvägagångssättet hade en framgång på 86% för att uppnå endolymphatic hydrops. Risken för ryggmärgsvätska läcka var minimal. Inga perioperative dödsfall eller skador på den bakre halvcirkelformade kanalen inträffade i provet. Den presenterade metoden visar ett säkert och tillförlitligt sätt att inducera endolymphatic hydrops vid en relativt snabb tidpunkt på 30 dagar. De kliniska konsekvenserna är att den presenterade metoden ger en tillförlitlig modell för att ytterligare utforska ursprunget till lågfrekvent hörselnedsättning som kan associeras endolymphatic hydrops.
Endolymphatic hydrops är en utvidgning av scala media. Förekomsten av endolymphatic hydrops kan mätas med hjälp av tvärsnittsområdet scala media. Det är tänkt att kliniska endolymphatic hydrops kan associeras med lågfrekventa sensorineural hörselnedsättning, såsom den som ses i Meniere sjukdom. Men ursprunget (s) av hörselnedsättningen är fortfarande oklart. För att på ett adekvat sätt studera ursprunget till lågfrekvent hörselnedsättning i samband med endolymphatic hydrops, en tillförlitlig modell behövs.
År 1965 beskrev Kimura och Schuknecht hur man inducerar endolymphatic hydrops i marsvin med hjälp av en intradural strategi1. Deras teknik inblandade med hjälp av en bakre hjärnskålen fossa strategi för att komma åt operculum och subarcuate fossa. Stegen innebar att incising dura, dra in lillhjärnan med en Ringer lösning indränkt bomullstuss, och borrning över endolymphatic trumman och den mellanliggande delen av endolymphatic säcken. Ben vax placerades sedan i operculum att skilja endolymphatic trumman från distala endolymphatic säcken. Kraniotomy defekten stängdes genom att placera absorberbara gelatin pulver (t.ex. Gelfoam) och reapproximating överliggande muskler. Histologic bevis på endolymphatic hydrops hittades konsekvent på postoperativa dagar 1, 3, 7, 14, 21 och 30, visar att intradural metoden var en tillförlitlig metod för att inducera histologically-bekräftade endolymphatic hydrops. Med samma intradural strategi som Kimura och Schuknecht, men med olika tidpunkter, Salt och DeMott bekräftade att scala media i andra sväng av snäckan var betydligt utvidgas på dag 4 och därefter2. Medan den faktiska sjukligheten att inducera en cerebrospinalvätska (CSF) läcka med Kimura och Schuknecht s intradural strategi rapporterades inte i den ursprungliga studien, förekomsten av en CSF läcka kan öka risken för hjärnhinneinflammation. Det har föreslagits att förlust av CSF kan leda till ett utflöde av perilymph, vilket resulterar i en samtidig tillfällig expansion av den endolymphatic volymen i marsvin3. En extradural strategi för att inducera endolymphatic hydrops skulle vara ett säkrare alternativ.
I 1989, Andrews och Bohmer beskrev två extradural kirurgiska metoder för att nå endolymphatic säcken och kanalen, via antingen en mellersta hjärnskålen fossa strategi eller bakre hjärnskålen fossa strategi, att utplåna endolymphatic sac4. De beskrev att ta bort operculum med en diamant borr, och sedan antingen borra bort den mellanliggande delen av endolymphatic säcken eller använda en fin plocka för att störa endolymphatic säcken och trumman. I 1993, Lee, Wright, och Meyerhoff beskrev ett liknande tillvägagångssätt, som inkluderade borrning genom den endolymphatic säcken och kanalen, men skilde sig i att de också samtidigt blockerade cochlear akvedukten5. De visade förekomsten av endolymphatic hydrops, som bedöms via histologi, vid fyra veckor efter utplåna endolymphatic säcken och hindrar cochlear akvedukten. Megerian et al. var den första att publicera en video artikel som visar en extradural obliteration av endolymphatic säcken och kanal som innebar borrning direkt på den mediala delen av operculum att gå in i endolymphatic säcken och kanal6. De visade histologic bevis på endolymphatic hydrops i ett marsvin offras vid 28 veckor efter operationen, samt hörselnedsättning i 16 kHz region6. Huruvida det var möjligt att inducera histologiskt bekräftade endolymphatic hydrops och lågfrekvent hörselnedsättning vid en tidig tidpunkt med extradural metoder var okänd.
Det övergripande målet med denna rapport är att visa en extradural strategi för att inducera experimentella endolymphatic hydrops på 30 dagar postoperativt genom att utplåna endolymphatic säcken och skada endolymphatic trumman med en fin plocka. Logiken bakom användningen av denna teknik är fördelen med att undvika behovet av att borra på petrous tinningben, vilket tar bort risken för att oavsiktligt skada dura och orsakar en CSF läcka, mildra möjligheten att skada den bakre halvcirkelformade kanalen, och minska risken för skador på sigmoid sinus.
Den presenterade extradural metoden hade en framgång på 86% för att uppnå histologiskt bekräftade endolymphatic hydrops och lågfrekvent hörselnedsättning. Metoden uppnådde tillförlitligt histologiska bevis på endolymphatic hydrops av postoperativ dag 30, överensstämmer med tidigare studier som använde en intradural metod2. Metodens betydelse för befintliga metoder är att det inte krävs en GSR-läcka, vilket undanröjer en potentiell förvirrande variabel som har föreslagits för …
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Shannon M. Lefler för hjälp med siffror och tabellen över material. Forskning som rapporterats i denna publikation stöddes av National Institute of Deafness and Other Communication Disorders inom National Institutes of Health, genom “Development of Clinician / Researchers in Academic ENT” utbildningsbidrag, tilldelning nummer T32DC000022 (C.V.V.) och av R01 DC014997 (J.T.L). Innehållet är enbart författarnas ansvar och representerar inte nödvändigtvis de officiella åsikterna hos National Institutes of Health.
12 mL syringe | Henke-Sass Wolf | 5100-X00V0 | |
1 mL and 3 mL syringe | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-87 15859152 | |
27.5 butterfly gauge needle | Terumo Surflo Winged Infusion Set, Terumo Corporation, Japan) (Ordered from McKesson) | 448407 | |
4-0 suture | McKesson | 1034507 | |
4×4 gauze sponges | Dukal (Ordered form McKesson) | 374454 | |
60mL syringe | Fisher Sci | 22-031-375 | |
Anspach otologic drill | Anspach | SC2100 | |
atipamezole | Zoetis | 107204-6 | |
autoclave | Fisher sci | 15-103-0508 | |
autoclave bags | McKesson | 524881 | |
bayonet separator | Olympus | AL 130564 | |
bupivicaine | auro Medics Pharma | 555150-169-10 | |
clear sterile drape | 3M | 1020 | |
cotton balls | Fisherbrand (ordered from Fisher Sci) | 22-456-885 | |
cotton swabs | McKesson | 508716 | |
diamond burrs #3, #2, #1, and #0.5 mm | Anspach | QD8-3SD; QD8-2SD; QD8-1SD; QD8-05SD | |
diaper pad | McKesson | 945330 | |
disposable 15 blade | Swann-Morton | 0305 | |
enrofloxacin | Hospira | 0409-4888-01 | |
epinephrine | McKesson | 63739-0456 | |
eye ointment | Dechra Vet Products | 17033-211-38 | |
Freer elevator | Grace Medical | 215100FX | |
gelfoam | Pfizer (Ordered from McKesson) | 82830 | |
hair trimmers | Oster Power Pro Cordless (ordered from Amazon) | 078400-020-000 | |
iodine scrub | Purdue Pharma (ordered from mcKesson) | 521243 | |
iris scissors | Olympus | CL-542114 | |
ketamine | Henry Schein Animal Health | 55853 | |
lactated ringers | B. Braun Medical (ordered from McKesson) | 186662 | |
lancet knife by Rosen | Grace Medical | 151100FX | referred to as curette in the text |
lubricant | Milex (ordered from Cooper Surgical) | MX5030 | |
masking tape | 3M (ordered from fisher sci | 19047259 | |
metal rectangle basin | Amazon | B07NQDBC6T | |
needle holder | Olympus | CR 213015-ENT | |
needles: 27 gage, 18 gauge | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-48 14-826-5D | |
neonatal warming isollete | Air Borne Life Support Systems | 731-1800 | |
operating microscope | Carl Zeiss | OPMI pico | |
oxygen tank | AirGas | OX USP200 | |
pulse ox | CapnoTrue (Ordered from Medacx) | M-3090112001 | |
rectal probe with heating blanket | Harvard Apparatus | probe: PY2 50-7217 Heating Blanket: PY2 50-7214 | |
red body holder | Lichtenhan Lab | N/A | In-house product |
right angle | Olympus | BV-230337 | |
rosen needle | Olympus | AM-130566 | customized, it is the instrument I use to tear the sac |
rubber tubing for O2 administration | Fisher Sci | 14-171-104 | |
saran wrap | Fisher Sci | NC9617977 | |
stereotactic head holder | WUSTL Instrument Machine Shop | N/A | In-house product |
sterile drapes | Cardinal Health | 7553 | |
suction tube by Baron | Grace Medical | 034903FX 034905FX | #3 and #5 Suction |
tissue forceps adson brown | Grace Medical | 325112FX | |
Weitlander retractor | Olympus Grace Medical | BL200011 100313FX | |
xylazine | Akorn | 59399-110-20 |