Summary

Perfusion og inflation af musens lunge for tumor histologi

Published: August 06, 2020
doi:

Summary

Formålet med denne metode er at præsentere en enkel og effektiv metode til perfusion, inflation og fiksering af muse lunger til undersøgelse af lungetumorpatologi og evaluering af metastaser til lungerne.

Abstract

Evnen til at evaluere lunge histologi er afgørende for områderne lungekræft forskning og kræft metastaser. Det er lige så vigtigt at udføre obduktioner hurtigt og effektivt fra undersøgelser uden at ofre kvaliteten af de indkøbte væv. Målet med denne protokol er at præsentere en metode til hurtigt at gennemgå, puste og fastsætte mus lunger til downstream histologiske analyse. Denne metode standardiserer ikke lungeinflationen; således kræver det ikke nogen særlige procedurer eller udstyr og i stedet blot instills fikseringsmiddel direkte gennem luftrøret efter perfusion gennem hjertet. Dette giver mulighed for tilstrækkelig vurdering af tumor størrelse, histologi, og scoring. Dette giver også mulighed for indsamling af frosset væv forud for lungevæv fiksering. Denne metode er begrænset, idet den ikke giver mulighed for senere morfometrisk kvantificering af lungerne; Det er dog mere end tilstrækkeligt til lungetumoranalyse fra genetisk manipulerede musemodeller (GEMMs), syngeneiske modeller samt xenograft tumor- og metastaseundersøgelser.

Introduction

En række musemodeller af lunge oncogenesis og kræft metastaser til lungerne findes lige fra komplekse GEMMs til kræftfremkaldende-induceret modeller til syngeneic og xenograft modeller, hvor kræftceller injiceres via intracardiac, intrathoracic, halen vene, eller andre metoder til at etablere tumorer i lungerne. Alle disse modeller deler det fælles behov for histologisk evaluering af lunge histologi og patologi. Således er det nødvendigt at have en robust, men hurtig metode til at udføre obduktioner af mus, mens perfusing lungerne for at fjerne overskydende blod, og oppustning og fastsættelse af lungerne til klart at visualisere lunge arkitektur. Hastighed er en kritisk komponent i denne procedure, da det kan være nødvendigt at indsamle lungerne fra snesevis af mus på et enkelt tidspunkt. Denne procedure kan udføres på mindre end 6 minutter pr. Mus.

Mens denne procedure er mere end tilstrækkelig til at evaluere tumor histologi, anbefales det ikke til dem, der ønsker at udføre stereologi eller morfometriske målinger af lungerne. Sådanne målinger kræver, at lungeinflationen standardiseres, og det samme gælder beregningen af lungernes absolutte overfladeareal, absolutte volumen og alveolarstørrelse og nummer1. Denne metode er heller ikke optimal for nogle billedbehandlingsmetoder. For eksempel kræver billeddannelse af lungerne via μCT til ex vivo morfometrisk analyse, at lungerne forbliver fyldt med luft2. Når bevarelsen af luftrum og dimensioner er den primære bekymring, anbefales det at rette lungerne ved perfusion dehydreringsteknikker3,4. En af de største bekymringer ved denne model er potentialet for brud på alveolarvæggene, der mindsker brugen i undersøgelser af emfysem; den anbefalede procedure for fiksering af lunger til undersøgelse af emfysem er dog stadig ret ens, da det anbefales at fastgøre lungerne enten ved intratracheal instillation af 10% formalin (svarende til den protokol, der er beskrevet her) under konstant væsketryk eller ved in situ-fiksering5.

Fordelen ved den beskrevne procedure her er, at det ikke kræver konstant væsketryk, i stedet oppuste lungerne, indtil de er fuldt udvidet, hvilket reducerer den tid, der er nødvendig for proceduren. Proceduren her beskrevet ligner de metoder, der anbefales af et oprustningsarium fra Society of Toxicologic Pathology, hvor et underudvalg blev dannet for at anbefale de bedste metoder til lungefiksering til toksikologiske undersøgelser. De fleste forskere i dette underudvalg anbefalede at fastgøre lungerne ved intratracheal instillation med en sprøjte, selvom der var forskellige anbefalinger om det tidspunkt, hvor lungen blev efterladt ifikseringstiden 6. Således, mens en række metoder til lunge inflation og fiksering findes, den metode, der er beskrevet heri foreslås at være den optimale metode til hurtigt at puste og fastsætte lungerne for downstream tumor histologiske evaluering.

Protocol

Alle de metoder, der er beskrevet her, er blevet godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of Alabama i Birmingham. 1. Eksperimentel protokol Ofre musen ved hjælp af en godkendt IACUC metode. Her brugte vi cervikal dislokation af en mus bedøvet med 5% isoflurane. Brug en passende mus til undersøgelsen. her bruger vi en 8 uger gammel FVB-mus Brug kirurgisk saks, lav et 3,5-5 mm vandret snit midt i underlivet. Derefter indsætte kirurgi…

Representative Results

Ovenstående protokol giver mulighed for hurtig perfusion, inflation og fiksering af muse lunger. Nedenstående tal viser betydningen af hvert trin. Figur 1 viser H&E farvede lunger, der er blevet perfunderet med PBS og lunger, hvor perfusionstrinnet er sprunget over, eller lungerne ikke har perfuse korrekt. Som vist skaber overskydende blod i de dårligt perfunderede lunger mindre end ideel histologi og kan gøre det udfordrende at fuldt ud observere lungearkitektur. Fi…

Discussion

Den procedure, der er beskrevet ovenfor for perfusion, inflation og fiksering af muse lunger, er ideel til hurtig og effektiv forberedelse af muse lunger til lungetumor histologi og patologianalyse. Proceduren kræver ikke noget specielt udstyr og kan udføres på mindre end 6 minutter pr. Mus. Proceduren kræver ikke et fast volumen for inflation eller konstant væsketryk. Da denne procedure ikke er standardiseret, anbefales det ikke til dem, der ønsker at udføre stereologiske eller morfometriske analyser af lungerne….

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning rapporteret i denne publikation blev støttet af National Center for Advancing Translational Sciences under tildeling nummer UL1TR003096 (MDE), National Heart, Lung, og Blood Institute Predoctoral Fellowship i lungesygdomme Training Program 5T32HL134640 (MLD).

Materials

10% buffered formalin Fisher 23-245685
22 G Needle BD 305155
3 mL syringe BD 309656
70% Ethanol Decon 2405
Forceps Harvard Apparatus 72-8595
Heparin Fisher H19
Phosphate Buffered Saline (PBS) Corning 21-030-CV
Surgical scissors Harvard Apparatus 72-8428

References

  1. Hsia, C. C., Hyde, D. M., Ochs, M., Weibel, E. R., Structure, A. An official research policy statement of the American Thoracic Society/European Respiratory Society: standards for quantitative assessment of lung structure. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 181 (4), 394-418 (2010).
  2. Vasilescu, D. M., Knudsen, L., Ochs, M., Weibel, E. R., Hoffman, E. A. Optimized murine lung preparation for detailed structural evaluation via micro-computed tomography. Journal of Applied Physiology. 112 (1), 159-166 (2012).
  3. Blumler, P., Acosta, R. H., Thomas-Semm, A., Reuss, S. Lung fixation for the preservation of air spaces. Experimental Lung Research. 30 (1), 73-82 (2004).
  4. Oldmixon, E. H., Suzuki, S., Butler, J. P., Hoppin, F. G. Perfusion dehydration fixes elastin and preserves lung air-space dimensions. Journal of Applied Physiology. 58 (1), 105-113 (1985).
  5. Braber, S., Verheijden, K. A., Henricks, P. A., Kraneveld, A. D., Folkerts, G. A comparison of fixation methods on lung morphology in a murine model of emphysema. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 299 (6), 843-851 (2010).
  6. Renne, R., et al. Recommendation of optimal method for formalin fixation of rodent lungs in routine toxicology studies. Toxicologic Pathology. 29 (5), 587-589 (2001).
  7. Limjunyawong, N., Mock, J., Mitzner, W. Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research. Journal of Visualized Experiments. (102), e52964 (2015).
  8. Lum, H., Mitzner, W. Effects of 10% formalin fixation on fixed lung volume and lung tissue shrinkage. A comparison of eleven laboratory species. American Review of Respiratory Disease. 132 (5), 1078-1083 (1985).
  9. Edmonds, M. D., et al. MicroRNA-31 initiates lung tumorigenesis and promotes mutant KRAS-driven lung cancer. Journal of Clinical Investigation. 126 (1), 349-364 (2016).
  10. Zhao, K., et al. Wogonin suppresses melanoma cell B16-F10 invasion and migration by inhibiting Ras-medicated pathways. PLoS One. 9 (9), 106458 (2014).
check_url/fr/60605?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Davenport, M. L., Sherrill, T. P., Blackwell, T. S., Edmonds, M. D. Perfusion and Inflation of the Mouse Lung for Tumor Histology. J. Vis. Exp. (162), e60605, doi:10.3791/60605 (2020).

View Video