Summary

Analyse av ikke-menneskelige primater bukspyttkjertel oksygenforbruk

Published: December 18, 2019
doi:

Summary

Denne protokoll demonstrerer nøyaktig og reproduserbar måling av oksygen forbruket i ikke-menneskelige primater bukspyttkjertelen holmer. Holmen lasting teknikker og belegg av mikroplate gir et rammeverk for effektiv måling av åndedrett i andre typer kultivert spheroids.

Abstract

Måling av oksygen forbruket i spheroid klynger av celler, slik som ex vivo bukspyttkjertelen holmer, har historisk vært utfordrende. Vi viser måling av Holme oksygenforbruk ved hjelp av en 96-brønn mikroplate designet for måling av oksygen forbruket i spheroids. I denne analysen, spheroid mikroplater er belagt med en celle og vev lim på dagen før analysen. Vi bruker et lite volum av selvklebende løsning for å oppmuntre Holme tilslutning til bare bunnen av brønnen. På dagen for analysen, er 15 holmer lastet direkte inn i bunnen av hver brønn ved hjelp av en teknikk som sikrer optimal posisjonering av holmer og nøyaktig måling av oksygenforbruk. Ulike aspekter ved mitokondrie åndedrett er analysert farmakologisk i ikke-menneskelige primater holmer, inkludert ATP-avhengig åndedrett, maksimal åndedrett, og Proton lekkasje. Denne metoden gir konsistente, reproduserbar resultater med bare et lite antall holmer per brønn. Det kan teoretisk brukes til enhver kultivert spheroids av tilsvarende størrelse.

Introduction

For å opprettholde normale blodsukker nivåer må celle i bukspyttkjertelen føle økning i glukose og skille insulin tilsvarende. Koplingen av insulin sekresjon med glukose nivåer er direkte knyttet til glukose metabolisme og produksjonen av ATP gjennom mitokondrie oksidativt fosforylering. Dermed mitokondrier spille en avgjørende rolle i stimulans-sekresjon kopling1. Vurdering av β-celle mitokondrie funksjon kan avdekke defekter som fører til nedsatt insulin sekresjon. Utskillelsen av glukagon av bukspyttkjertelen α-celler er også nært knyttet til mitokondrie funksjon2. Selv om udødeliggjort Holme Cell Lines har vist seg nyttig for enkelte typer analyser, fysiologi av disse cellene ikke nøyaktig recapitulate hele Holme funksjon, som illustrert av potensiering av insulin sekresjon av glukagon3,4 og hemming av glukagon sekresjon av insulin/somatostatin5,6 i intakt holmer. Dette demonstrerer behovet for måling av oksygenforbruk ved bruk av hele, intakte holmer.

Teknikker for måling av holmen celle respirometry har utviklet seg over tid, fra bruk av oksygen-sensitive fluorescerende fargestoffer7 til solid-state sensorer som direkte måler oksygenforbruk8. Opprinnelig utviklet for monolag, tilhenger celler, brukte cellekultur plate systemer har vist seg å være ineffektiv for bukspyttkjertelen holmer. Som holmer ikke naturlig holder seg til brønnene, er de tilbøyelige til å bli skjøvet til periferien av kulturen godt resulterer i unøyaktig måling av oksygenforbruk9. For å bekjempe dette problemet, spesialiserte 24-brønn plater med en sentral depresjon som kan inneholde holmer ble utviklet9. Men 24-brønn plate systemet var begrenset av det store antallet holmer som kreves (50-80 per brønn) og antall forhold som kan testes samtidig10. Den nylige utviklingen av 96-brønn mikroplater utformet spesielt for ekstracellulære Flux analyse i spheroids har overvunnet disse barrierene, slik at måling av Holmen respirometry med 20 eller færre holmer per brønn10.

Her viser vi bruken av dette systemet til å måle oksygen forbruket i holmer fra den japanske macaque (Macaca fuscata), en dyremodell med lignende Holme Biology til mennesker11,12. I denne protokollen analyseres 15 macaque holmer per brønn. I våre hender, 15 holmer per brønn produserte høyere Baseline oksygenforbruk enn færre holmer, med robust aktivering og undertrykkelse av åndedrett som svar på Pharmacologic manipulasjon. Vi fremhever fremgangsmåten for å forberede analysen, en effektiv metode for konsekvent lasting av holmer i sentrum av hver brønn, og felles utfordringer når du utfører denne analysen.

Protocol

1. utarbeidelse av Mikroplate og sensor patron på dagen før du kjører analysen Holmer ble isolert fra tre år gamle japanske aper som tidligere beskrevet13. Denne metoden er svært lik den som brukes til å isolere menneskelige holmer fra Cadaver donorer, men skiller seg fra mus, der pancreata er ofte oppblåst med kollagenase løsning mens dyret er under sedasjon og før organ fjerning. Islet henting ble gjennomført i samsvar med retningslinjene i den institusjonelle…

Representative Results

For å legge holmer i mikroplate bør 15 holmer pustende i 15 μL av medier, som vist i figur 1A. Holmer vil naturlig bosette seg mot bunnen av Pipet spissen i løpet av få sekunder. Deretter senkes Pipet spissen til bunnen av brønnen. Spissen er litt løftet, og et lite volum (ca. 5 μL) er Pipet tert ut sammen med holmer. Denne teknikken resulterer i konsekvent plassering av Holmen i bunnen av mikroplate brønn (figur…

Discussion

Studiet av Holmen oksygenforbruk har tidligere blitt hemmet av sfærisk form av holmer, deres mangel på overholdelse av kultur overflater, og antall holmer kreves per brønn. I denne protokollen fremhever vi effekten av 96-brønnen spheroid mikroplate for å måle Holme oksygenforbruk på et lite antall holmer og demonstrere en teknikk for håndtering og lasting av holmer som er teknisk gjennomførbart og gir konsistent Resultater.

For at holmer skal holde seg til bunnen av mikroplate og vær…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å erkjenne Vanderbilt High gjennomstrømming screening Core for bruk av deres anlegg, Agilent bioteknologi, Dr. Paul kievit (Oregon Health and Science University) for ikke-menneskelige primater Holme isolasjoner, og Eric Donahue (Vanderbilt University) for å få hjelp med figur 1. J.M.E. ble støttet av NIGMS av National Institutes of Health under tildeling nummer T32GM007347. M.G. ble støttet av NIH/NIDDK (R24DK090964-06) og Department of Veterans Affairs (BX003744).

Materials

Cell culture dish, 60 mm X 15 mm style Corning 430166
Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive Corning 354240
Conical tube, 50 mL Falcon 352070
Dextrose anhydrous Fisher Scientific BP350-1 For glucose solution, 200 mg/ml, sterile filetered
Disposable reservoirs (sterile), 25 ML Vistalab 3054-1033 for loading multichannel pipet
EZFlow Sterile 0.45 μm PES Syringe Filter, 13 mm Foxx Life Sciences 371-3115-OEM
L-glutamine Gibco 25030-081 200 mM (100x)
Multichannel pipette tips ThermoFisher Scientific 94410810
Multichannel pipette, 15-1250 μL ThermoFisher Scientific 4672100BT Recommended
P20, P200, and P1000 pipettes Eppendorf 2231000602
pH Probe Hanna Instruments HI2210-01
Pipette tips, 20 μL, 200 μL, 1000 μL Olympus 24-404, 24-412, 24-430
Seahorse XF Base Media Agilent 103334-100
Seahorse XF Cell Mito Stress Test Kit Agilent 103015-100 Includes Oligomycin, FCCP, and Rotenone/Antimycin A
Seahorse XFe96 Analyzer Agilent S7800B Including prep station with 37 °C non-CO2 incubator
Seahorse XFe96 Spheroid Fluxpak Mini Agilent 102905-100 Includes sensor cartridge, spheroid microplate, and calibrant
Sodium bicarbonate Fisher Scientific BP328-500
Sodium pyruvate Gibco 11360-070 100 mM (100x)
Stereo Microscope Olympus SZX9
Syringe (sterile), 5 mL BD 309603 For sterile filtration
Water (sterile) Sigma W3500-500mL

References

  1. Mulder, H. Transcribing β-cell mitochondria in health and disease. Molecular Metabolism. 6 (9), 1040-1051 (2017).
  2. Maechler, P., Wollheim, C. B. Mitochondrial signals in glucose-stimulated insulin secretion in the beta cell. The Journal of Physiology. 529 (Pt 1), 49-56 (2000).
  3. Curry, D. L. Glucagon Potentiation of Insulin Secretion by the Perfused Rat Pancreas. Diabetes. 19 (6), 420 (1970).
  4. Song, G., Pacini, G., Ahrén, B., D’Argenio, D. Z. Glucagon Increases Insulin Levels by Stimulating Insulin Secretion Without Effect on Insulin Clearance in Mice. Peptides. 88, 74-79 (2017).
  5. Vergari, E., et al. Insulin inhibits glucagon release by SGLT2-induced stimulation of somatostatin secretion. Nature Communications. 10 (1), 139 (2019).
  6. Watts, M., Ha, J., Kimchi, O., Sherman, A. Paracrine regulation of glucagon secretion: the β/α/δ model. American Journal of Physiology–Endocrinology and Metabolism. 310 (8), E597-E611 (2016).
  7. Sweet, I. R., et al. Continuous measurement of oxygen consumption by pancreatic islets. Diabetes Technology & Therapeutics. 4 (5), 661-672 (2002).
  8. . Agilent Seahorse XF Instruments Overview and Selection Guide Available from: https://www.agilent.com/en/products/cell-analysis/seahorse-xf-instruments-selection-guide (2019)
  9. Wikstrom, J. D., et al. A novel high-throughput assay for islet respiration reveals uncoupling of rodent and human islets. PLoS One. 7 (5), e33023 (2012).
  10. Taddeo, E. P., et al. Individual islet respirometry reveals functional diversity within the islet population of mice and human donors. Molecular Metabolism. 16, 150-159 (2018).
  11. Conrad, E., et al. The MAFB transcription factor impacts islet alpha-cell function in rodents and represents a unique signature of primate islet beta-cells. American Journal of Physiology–Endocrinology and Metabolism. 310 (1), E91-E102 (2016).
  12. Steiner, D. J., Kim, A., Miller, K., Hara, M. Pancreatic islet plasticity: interspecies comparison of islet architecture and composition. Islets. 2 (3), 135-145 (2010).
  13. Elsakr, J. M., et al. Maternal Western-style diet affects offspring islet composition and function in a non-human primate model of maternal over-nutrition. Molecular Metabolism. , (2019).
  14. Soutar, M. P. M., et al. FBS/BSA media concentration determines CCCP’s ability to depolarize mitochondria and activate PINK1-PRKN mitophagy. Autophagy. , 1-10 (2019).
  15. Hirshberg, B., et al. Pancreatic Islet Transplantation Using the Nonhuman Primate (Rhesus) Model Predicts That the Portal Vein Is Superior to the Celiac Artery as the Islet Infusion Site. Diabetes. 51 (7), 2135-2140 (2002).
  16. Divakaruni, A. S., Paradyse, A., Ferrick, D. A., Murphy, A. N., Jastroch, M. Analysis and interpretation of microplate-based oxygen consumption and pH data. Methods in Enzymology. 547, 309-354 (2014).
  17. Papas, K. K., et al. Islet Oxygen Consumption Rate (OCR) Dose Predicts Insulin Independence in Clinical Islet Autotransplantation. PLoS One. 10 (8), e0134428 (2015).
check_url/fr/60696?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Elsakr, J. M., Deeter, C., Ricciardi, V., Gannon, M. Analysis of Non-Human Primate Pancreatic Islet Oxygen Consumption. J. Vis. Exp. (154), e60696, doi:10.3791/60696 (2019).

View Video