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Article de méthode

Cartographie à long terme de circuit assisté e de Channelrhodopsine des neurones colliculus inférieurs avec des Channelrhodopsins bleus et rouges

6.9K vues

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DOI :

10.3791/60760

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7 février 2020

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Dans cet article

Résumé

La cartographie de circuit assistée par la chaînerhodopsine (CRACM) est une technique de précision pour la cartographie fonctionnelle des projections neuronales à longue portée entre les groupes anatomiques et/ou génétiquement identifiés des neurones. Ici, nous décrivons comment utiliser CRACM pour cartographier les connexions auditives du tronc cérébral, y compris l’utilisation d’une opsine rouge décalée, ChrimsonR.

Résumé

Lors de l’étude des circuits neuronaux, une limitation standard de l’approche de pince de correction in vitro est que les axones de sources multiples sont souvent mélangés, ce qui rend difficile d’isoler les entrées de sources individuelles avec stimulation électrique. Cependant, en utilisant la cartographie assistée de circuit de canalrhodopsine (CRACM), cette limitation peut maintenant être surmontée. Ici, nous rapportons une méthode pour employer CRACM pour cartographier les entrées ascendantes des noyaux auditifs inférieurs de tronc cérébral et des entrées commissural à une classe identifiée de neurones dans le colliculus inférieur (IC), le noyau de midbrain du système auditif. Dans l’IC, les axones locaux, commissuraux, ascendants et descendants sont fortement entrelacés et donc indiscernables avec la stimulation électrique. En injectant une construction virale pour conduire l’expression d’un canalrhodopsin dans un noyau presynaptique, suivi de l’enregistrement de pince de correction pour caractériser la présence et la physiologie des entrées synaptiques channelrhodopsin-exprimant, projections d’une source spécifique à une population spécifique de neurones IC peut être cartographié avec une précision spécifique au type cellulaire. Nous montrons que cette approche fonctionne à la fois avec Chronos, une canalrhodopsine activée par la lumière bleue, et ChrimsonR, une canalrhodopsine à décalée rouge. Contrairement aux rapports précédents de l’avant-cerveau, nous constatons que ChrimsonR est solidement trafiqué dans les axones des neurones principaux du noyau cochléaire dorsal, ce qui indique que ChrimsonR peut être un outil utile pour les expériences CRACM dans le tronc cérébral. Le protocole présenté ici comprend des descriptions détaillées de la chirurgie par injection de virus intracrânien, y compris des coordonnées stéréotaxiques pour cibler les injections au noyau cochléaire dorsal et ic des souris, et comment combiner l’enregistrement de pince de patch cellulaire entier avec l’activation de channelrhodopsine pour étudier des projections à longue portée aux neurones ic. Bien que ce protocole soit conçu pour caractériser les apports auditifs à l’IC, il peut être facilement adapté pour étudier d’autres projections à long terme dans le tronc cérébral auditif et au-delà.

Introduction

Les connexions synaptiques sont essentielles à la fonction du circuit neuronal, mais la topologie et la physiologie précises des synapses dans les circuits neuronaux sont souvent difficiles à sonder expérimentalement. C’est parce que la stimulation électrique, l’outil traditionnel de l’électrophysiologie cellulaire, active sans discernement les axones près du site de stimulation, et dans la plupart des régions du cerveau, les axones de différentes sources (locales, ascendantes et/ou descendantes) s’entremêlent. Cependant, en utilisant channelrhodopsine cartographie de circuit assisté (CRACM)1,2, cette limitati....

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Protocole

Obtenir l’approbation du Comité local de soins et d’utilisation des animaux en établissement (IACUC) et adhérer aux lignes directrices des NIH pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire. Toutes les procédures de ce protocole ont été approuvées par l’IACUC de l’Université du Michigan et étaient conformes aux lignes directrices des NIH pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire.

1. Préparations chirurgicales

  1. Effectuer des chirurgies dans des conditions aseptiques. Autoclave/stériliser tous les outils et matériaux de chirurgie avant la chirurgie. Portez une robe de chirurgie et un masque pour la chirurgie.....

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Résultats

Nous avons croisé des souris VIP-IRES-Cre(Viptm1(cre)Zjh/J) et Ai14 Cre-reporter souris (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J) pour générer la progéniture F1 dans laquelle les neurones VIP expriment la protéine fluorescente tdTomato. F1 progéniture de l’un ou l’autre sexe ont été utilisés, le jour postnatal âgé (P) 21 à P70. Au total, 22 animaux ont été utilisés dans cette étude.

In.......

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Discussion

Nous avons constaté que CRACM est une technique puissante pour identifier et caractériser les entrées synaptiques à longue portée aux neurones de la souris IC. En suivant le protocole détaillé ici, nous avons réalisé une transfection robuste des neurones dans le DCN et IC ainsi que le trafic axonal fiable de Chronos et ChrimsonR aux terminaux synaptiques dans l’IC. En outre, nous avons démontré que cette technique permet la mesure et l’analyse des événements postsynaptiques, y compris l’amplitude PSP, demi-largeur, temps.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à révéler.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par une bourse de recherche Deutsche Forschungsgemeinschaft (GO 3060/1-1, numéro de projet 401540516, à la DG) et la subvention des National Institutes of Health R56 DC016880 (MTR).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AAV1. Syn.ChrimsonR-tdTomato.WPRE.bGHAddgene59171-AAV1
AAV1. Syn.Chronos-GFP.WPRE.bGHAddgene59170-AAV1
Ai14 souris rapporteures (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J)Jackson Stock de laboratoire#007914
Ambre (590nm) LUXEON Rebel LEDLuxeon Star LEDsSP-01-A8
Bleu (470nm) LUXEON Rebel LEDLuxeon Star LEDsSP-01-B4
Carproject (carprofen)Henry Schein Animal Health59149
Capillaires en verreDrummond Scientific Company3-000-203-G/X
Drummond Nanoject 3Drummond Scientific Company3-300-207
Chanfreineuse d’électrodesSutter InstrumentFG-BV10-D
Ethilon 6-0 (0,8 métrique) sutures en nylonEthicon pharmacie
Microscope à platine fixen’importe queln/a
Porte-tête d’anesthésie gazeuseDavid Kopf Instruments933-B
Outils de chirurgie généraleOutils de science fineN/A
Tondeuse pour animaux de compagnie Golden A5Oster078005-010-003
Coussin chauffantConstruction sur mesureN/A
Chambre d’induction à capuchon avec système de videPatterson Scientific78917760
Stérilisateur à billes chaudes Steri 250InotechIS-250
Solution d’iode 10 %MedChoicepharmacie
Vaporisateur d’isofluranePatterson Scientific07-8703592
Gelée topique de lidocaïne 2 %PharmacieAkorn
Micro moteur perceuse 1050Henry Schein Santé animale7094351
Micro moteur forets 0,5 mmOutils de science fine19007-05
Micromanipulateur motoriséSutter InstrumentMP-285/R
Pommade ophtalmique Larmes artificiellesPharmacielocale Akorn
Extracteur d’électrodes P-1000 InstrumentSutterP-1000
Patch clamp amplificateur incl logiciel d’acquisition de donnéesn’importe queln/a
Appareil d’anesthésie portablePatterson Scientifique07-8914724
Cadre stérotaxique pour petits animauxDavid Kopf Instruments930-B
Produits chimiques standardFournisseurs locaux/A
Solutions
Champs de serviettestériles Dynarex4410
Marqueur chirurgicalOutils pour les sciences fines18000-30
Régulateur de températureConstruction sur mesureN/A
Vibratomen’importe queln/a
Souris VIP-IRES-Cre (Viptm1(cre)Zjh/J)Jackson Laboratorystock #010908
Bain d’eaun’importe queln/a
localelocalelocale Nd’imagerie standard

Références

  1. Petreanu, L., Huber, D., Sobczyk, A., Svoboda, K. Channelrhodopsin-2-assisted circuit mapping of long-range callosal projections. Nature Neuroscience. 10, 663-668 (2007).
  2. Atasoy, D., Aponte, Y., Su, H. H., Sternson, S. M.

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Réimpressions et autorisations

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