Method Article

Une méthode de co-culture pour étudier la croissance de la neurite en réponse aux signaux dentaires de paracrine de pulpe

DOI:

10.3791/60809

February 14th, 2020

In This Article

Summary

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Nous décrivons l’isolement, la dispersion et le placage des cellules primaires de pulpe dentaire (DP) avec les neurones trigéminaux (TG) cultivés au-dessus des filtres transwell. Les réponses cellulaires des cellules DP peuvent être analysées avec l’immunofluorescence ou l’analyse d’ARN/protéine. L’immunofluorescence des marqueurs neuronaux avec la microscopie confocale permet l’analyse des réponses de excroissance neurite.

Abstract

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L’innervation des dents permet aux dents de sentir la pression, la température et l’inflammation, qui sont toutes cruciales pour l’utilisation et l’entretien de l’organe dentaire. Sans innervation sensorielle, les activités orales quotidiennes causeraient des dommages irréparables. Malgré son importance, les rôles de l’innervation dans le développement et l’entretien des dents ont été largement négligés. Plusieurs études ont démontré que les cellules DP sécrètent des protéines de matrice extracellulaire et des signaux paracrines pour attirer et guider les axones TG dans et tout au long de la dent. Cependant, peu d’études ont fourni un aperçu détaillé dans le crosstalk entre le mesenchyme DeP et les afferents neuronaux. Pour combler cette lacune dans les connaissances, les chercheurs ont commencé à utiliser des co-cultures et une variété de techniques pour étudier ces interactions. Ici, nous démontrons les étapes multiples impliquées dans la co-culture des cellules primaires de DP avec des neurones de TG dispersés sur un filtre de transwell sus-lying avec des pores de grand diamètre pour permettre la croissance axonale par les pores. Des cellules primaires de DP avec le gène d’intérêt flanqué des emplacements de loxP ont été employées pour faciliter la suppression de gène utilisant un système de recombinase d’Adenovirus-Cre-GFP. L’utilisation des neurones TG de la souris Thy1-YFP a permis une imagerie afferente précise, avec une expression bien au-dessus des niveaux de fond par microscopie confocale. Les réponses dP peuvent être étudiées par la collecte et l’analyse de protéine ou d’ARN, ou alternativement, par la coloration immunofluorescente des cellules de DP plaquées sur des couvertures en verre amovibles. Les médias peuvent être analysés à l’aide de techniques telles que les analyses protéomiques, bien que cela nécessitera l’épuisement de l’albumine en raison de la présence de sérum bovin fœtal dans les médias. Ce protocole fournit une méthode simple qui peut être manipulée pour étudier les réponses morphologiques, génétiques et cytosquelettiques des neurones TG et des cellules DP en réponse à l’environnement contrôlé d’un test de co-culture.

Introduction

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L’innervation des dents permet aux dents de sentir la pression, la température et l’inflammation, qui sont toutes cruciales pour l’utilisation et l’entretien de l’organe dentaire. Le fait de ne pas sentir la douleur dentaire associée aux caries dentaires et aux traumatismes entraîne une progression de la maladie. Ainsi, l’innervation appropriée est une exigence pour la croissance normale de dent, la fonction et les soins.

Alors que la plupart des organes sont entièrement fonctionnels et innervés au moment de la naissance, le développement des dents s’étend à la vie adulte, avec l’innervation des dents et la minéralisation se produisant de c....

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Protocol

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Toutes les expériences sur des souris ont été approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’UAB.

1. Préparation des plaques

REMARQUE : Les fiches de couverture peuvent être utilisées pour imager les cellules DP à la fin de l’analyse. Assurez-vous que le couvercle de la plaque est allumé pendant toutes les étapes d’incubation et de rinçant à l’extérieur du capuchon de culture de tissu stérile pour empêcher la contamination pendant le traitement d’échantillon.

  1. Préparation de la glissade de couverture
    1. Couvertures circulaires automatiq....

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Results

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Ces résultats montrent que la croissance de neurite de TG a été augmentée en présence des cellules primaires de DP dans le puits sous-jacent comparé au contrôle de la monoculture de neurite de TG (figure 2A,C). Il y a une certaine variabilité d’assay-to-assay dans la croissance neurite. Ainsi, une monoculture de neurones TG devrait être incluse dans toutes les analyses comme un contrôle pour détecter les niveaux basaux de la croissance neurite. Des cellules primaires de la s.......

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Discussion

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Les activités quotidiennes de la cavité buccale exigent que les dents sentent des stimuli externes et une inflammation interne afin de permettre une utilisation et un entretien appropriés. Cependant, seulement peu d’information est disponible concernant les signaux qui conduisent les processus développementaux de l’innervation de dent. Ce protocole fournit une méthode pour isoler et co-culture des cellules primaires DP et des neurones TG afin d’étudier la communication croisée entre les deux populations. Plusieurs variab.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à révéler.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par a) la subvention des National Institutes of Health/NIAMS (numéros de subvention R01 AR062507 et R01 AR053860 à RS), b) la subvention de l’Université de l’Alabama à Birmingham Dental Academic Research Training (DART) (numéro T90DE022736 (PI MacDougall)) au SBP du National Institute of Dental and Craniofacial Research/National Institutes of Health, c) une subvention pilote et de faisabilité du UAB Global Center for Craniofacial, Oral and Dental Disorders (GC-CODED) à SBP et d) le National Institute of Dental and Craniofacial Subvention K99 DE024406 de Recherche/National Institutes of Health à SBP.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5-Fluoro-2'-désoxyuridineSigma-AldrichF0503Utilisé comme inhibiteur mitotique à 15 &mu ; Concentration M dans les milieux de co-culture, Jour 2
Plaque de culture cellulaire à 24 puits Corning3524Plaque de co-culture
Alexa-546 Anti-pouletInvitrogenA-11040Secondaire à la croissance de neurite de coloration marquée par un anticorps anti-GFP, dilution 1:500
Anticorps anti-GFPAves Lab, IncGFP-1010Anticorps primaire pour marquer les neurones Thy1-YFP, dilution 1:200
Anti-Neurofilament 200 anticorpsSigma-AldrichNO142Anticorps primaire monoclonal pour marquer les neurones, dilution 1:1000, alternative si les souris YFP ne sont pas disponibles
B6 ; 129- Tgfbr2tm1Karl/JThe Jackson Laboratory12603Tgfbr2f/f modèle murin utilisé pour les cellules de la pulpe dentaire dans le protocole optimisé
B6. Cg-Tg(Thy1-YFP)16Jrs/JThe Jackson Laboratory3709Génotype modèle de souris Thy1-YFP utilisé pour les neurones du trijumeau
Collagénase de type IIMillipore234155-100MGUtilisé pour disperser les neurones du trijumeau
Sérum de bovin fœtalGibco10437Additif aux milieux de co-culture
Pince fineOutils de science fine11413-11Pince fine pour la dissection TG
LamininSigma-AldrichL2020recouvre les inserts de transpuits à une concentration finale de 10 &mu ; g/ml, la solution mère est supposée à 1,5 mg/ml
Tampon de lyse (Buffer RLT)Qiagen79216Extrait l’ARN des cellules de la pulpe dentaire après co-culture
L-GlutamineGibco 25030081Additif aux milieux de co-culture
Ciseaux de micro-dissectionSigma-AldrichS3146-1EACiseaux de dissection pour ouvrir le crâne
Couvercle de microscope VerreFisherbrand12-545-81Lamelle circulaire pour la culture cellulaire et le traitement par immunofluorescence en option
Milieu essentiel minimal aGibco12571063Base de milieu de co-culture
Pénicilline-StreptomycineGibco15070063Additif antibiotique dans le milieu de co-culture
Inhibiteur de phosphataseSigma-Aldrich04 906 837 001Additif dans le tampon RIPA pour l’extraction de protéines à partir de cellules de pulpe dentaire co-culture
PolybreneMilliporeTR-1003-GUtilisé pour aider à la transfection cellulaire de la pulpe dentaire
Poly-D-LysineSigma-AldrichP7280Revêtement de lamelle pour faciliter l’adhésion cellulaire de la pulpe dentaire
Inhibiteurs de protéaseMillipore05 892 791 001Additif au tampon RIPA pour l’extraction des protéines des cellules de la pulpe dentaire après co-culture
Tubes eppendorf libres ARN/ADNDenvilleC-2172Tubes préstérilisés de 1,7 ml pour la collecte d’ARN, d’ADN ou de protéines à la fin du test
ThinCert Insert de culture cellulaireGreiner Bio-One662631Transwell pour les neurones trigéminaux dans les tests de co-culture
Trypsin-EDTA (0,25 %)Gibco25200056Utilisé pour disperser les cellules de la pulpe dentaire
Trypsine de type IISigma-AldrichT-7409Utilisé pour disperser neurones trigéminaux
Pince ultra fineOutils de science fine11370-40Pince ultra fine pour la dissection
UridineSigma-AldrichU3750Utilisé comme inhibiteur mitotique à 1 &mu ; Concentration M dans un milieu de co-culture, Jour 2
Système de filtration sous videMilliporeSCNY00060Filtre jetable Steriflip, 50 &mu ; m filtre en filet nylon
Pince à flaconsFine Science Tools110006-15Pince longue pour le transfert de tissus vers des cônes

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Moe, K., Sijaona, A., Shrestha, A., Kettunen, P., Taniguchi, M., Luukko, K. Semaphorin 3A controls timing and patterning of the dental pulp innervation. Differentiation. 84 (5), 371-379 (2012).
  2. Kollar, E. J., Lumsden, A. G. Tooth morph....

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Dental Pulp CellsTrigeminal NeuronsCo Culture MethodNeurite OutgrowthTranswell FilterAdenovirus Cre GFPThy1 YFP MouseConfocal MicroscopyImmunofluorescent StainingProteomic Analysis

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