Summary

En femtoliter droplet array for massivt parallell proteinsyntese fra enkelt DNA molekyler

Published: June 20, 2020
doi:

Summary

Det overordnede målet med protokollen er å forberede over en million bestilte, ensartede, stabile og biokompatible femtoliterdråper på et 1 cm2 planar substrat som kan brukes til cellefri proteinsyntese.

Abstract

Fremskritt innen romlig oppløsning og deteksjonsfølsomhet for vitenskapelig instrumentering gjør det mulig å bruke små reaktorer for biologisk og kjemisk forskning. For å møte etterspørselen etter mikroreaktorer med høy ytelse utviklet vi en femtoliterdråpearray (FemDA) og eksemplifiserte applikasjonen i massivt parallelle cellefrie proteinsyntese (CFPS) reaksjoner. Over en million ensartede dråper ble lett generert innenfor et fingerstørrelsesområde ved hjelp av en to-trinns oljeforseglingsprotokoll. Hver dråpe ble forankret i et femtoliter mikrokammer bestående av en hydrofil bunn og en hydrofob sidevegg. Den hybride hydrofile-i-hydrofobe strukturen og de dedikerte tetningsoljer og overflateaktive midler er avgjørende for å stikke femtoliter vandig løsning i femtoliter plass uten fordampningstap. Femtoliterkonfigurasjonen og den enkle strukturen til FemDA-enheten tillot minimalt reagensforbruk. Den ensartede dimensjonen til dråpereaktorene gjorde store kvantitative og tidskursmålinger overbevisende og pålitelige. FemDA-teknologien korrelerte proteinutbyttet til CFPS-reaksjonen med antall DNA-molekyler i hver dråpe. Vi strømlinjeformet prosedyrene om mikrofabrikasjon av enheten, dannelsen av femtoliterdråpene og oppkjøpet og analysen av mikroskopiske bildedata. Den detaljerte protokollen med den optimaliserte lave driftskostnaden gjør FemDA-teknologien tilgjengelig for alle som har standard renromsfasiliteter og et konvensjonelt fluorescensmikroskop på sitt eget sted.

Introduction

Forskere bruker reaktorer for å utføre bio/ kjemiske reaksjoner. Det er gjort betydelige anstrengelser for å redusere størrelsen på reaktoren og øke eksperimentell gjennomstrømning for å redusere reagensforbruket samtidig som arbeidseffektiviteten forbedres. Begge aspektene tar sikte på å frigjøre forskere fra en tung arbeidsbelastning, redusere kostnadene og fremskynde forskning og utvikling. Vi har et klart historisk veikart om utviklingen av reaktorteknologiene fra synspunktet til reaksjonsvolumer og gjennomstrømning: enkeltbeger/kolbe/reagensrør, milliliter rør, mikroliter rør, mikroliter 8-rørsstrimler, mikroliter 96/384/1536-brønn plate, og mikrofluidisk nanoliter / picoliter / femtoliter reaktorer1,2,3,4,5,6,7. Analogt med nedbemanning av funksjonsstørrelsen på transistorer på integrerte kretsbrikker i halvlederindustrien de siste tiårene, går bio / kjemiske mikroreaktorer gjennom volumreduksjon og systemintegrasjon. Slike småskala verktøy har hatt en dyp innvirkning på cellebasert eller cellefri syntetisk biologi, biomanufacturing, og høy gjennomstrømning prototyping og screening8,,9,10,,11,12. Dette papiret beskriver vår nylige innsats på utviklingen av en unik dråpe array teknologi og demonstrerer sin anvendelse i CFPS13,en grunnleggende teknologi for syntetisk biologi og molekylær screening samfunn14. Spesielt tilbyr vi med vilje en optimalisert og rimelig protokoll for å gjøre FemDA-enheten tilgjengelig for alle. Den rimelige og lett-å-håndtere protokollen for miniatyrisert enhet ville bidra til pedagogiske formål universiteter og bidra til å spre teknologien.

FemDA forbereder femtoliter dråper med en ultrahøy tetthet på 106 per 1 cm2 på et planar glass substrat. Vi belagt en hydrofob polymer, CYTOP15,på glasssubstratet og selektivt etset (fjernet) CYTOP ved forhåndsdefinerte posisjoner for å generere et mikrokammerarray på substratet. Dermed består det resulterende mikrokammeret av en hydrofob sidevegg (CYTOP) og en hydrofil bunn (glass). Når sekvensielt strømmer vann og olje over den mønstrede overflaten, kan vannet bli fanget og forseglet i mikrokamrene. Den hydrofile-i-hydrofobe strukturen er avgjørende for å avvise vann utenfor mikrokamrene, isolere individuelle mikroreaktorer og beholde en liten vandig løsning inne i femtoliterrommet. Den unike egenskapen ble vellykket søkt om fremstilling av vann-i-olje dråper og lipid bilayer mikrokompartments16,17. Sammenlignet med prototypeenheten16,optimaliserte vi først mikrofabrikasjonsprosessen for å realisere en fullstendig fjerning av CYTOP-polymeren, samt en full eksponering av glassbunnen. CYTOP er en spesiell fluoropolymer med ekstremt lav overflatespenning (19 mN/m) lavere enn for konvensjonelle mikroreaktormaterialer som glass, plast og silikon. Den gode optiske, elektriske og kjemiske ytelsen er allerede benyttet i overflatebehandling av mikrofluidiske enheter18,,19,,20,,21,,22,,23,,24. I FemDA-systemet, for å oppnå god fukting av oljen på CYTOP-overflaten, må overflatespenningen til oljen være lavere enn den av den faste overflaten25. Ellers har væskeoljen i kontakt med den faste overflaten en tendens til å bli sfærisk i stedet for å spre seg over overflaten. Dessuten fant vi at noen populære perfluorokarbonoljer (f.eks. 3M FC-40)16 og hydrofluoroetheroljer (f.eks. 3M Novec-serien) kan oppløse CYTOP som følge av den amorfe morfologien til CYTOP, som er dødelig for kvantitativ måling og ville være tvilsom når det gjelder krysskontaminering blant dråper. Heldigvis identifiserte vi en biokompatibel og miljøvennlig oljeutpeende lavere (< 19 mN/m) overflatespenning13. Vi fant også et nytt overflateaktivt middel som kan oppløses i den valgte oljen og fungere i lav konsentrasjon (0,1%, minst 10 ganger lavere enn tidligere rapportert populære26,27)13. Det resulterende vann-/oljegrensesnittet kan stabiliseres av overflateaktivt middel. På grunn av oljens høye fordampningshastighet, etter spylingen med oljen, brukte vi en annen biokompatibel og miljøvennlig olje for å erstatte den første til å forsegle mikrokamrene. Vi kaller den første oljen (ASAHIKLIN AE-3000 med 0,1 wt % SURFLON S-386) “flush oil” og den andre oljen (Fomblin Y25) henholdsvis “tetningsolje”.

Den to-trinns oljeforseglingsstrategien kan realisere en robust dannelse av femtoliterdråpearrayet i løpet av minutter og uten sofistikert instrumentering. På grunn av fordampningsproblemet har det vært ansett som utfordrende å generere mikroreaktorer mindre enn picolitervolumer28. FemDA tok opp dette problemet ved systematisk å optimalisere materialene og prosessene som brukes til fremstilling av mikroreaktorer/dråper. Flere bemerkelsesverdige trekk ved de resulterende dråpene inkluderer høy ensartethet (eller monodispersitet), stabilitet og biokompatibilitet på femtoliterskalaen. Variasjonskoeffisienten (CV) av dråpevolumet er bare 3 % (uten vignetter korreksjon for mikroskopiske bilder), den minste CV-en blant dråpeplattformer i verden, noe som sikrer en svært parallell og kvantitativ måling. Femtoliterdråpen er stabil i minst 24 timer uten krysskontaminering blant dråper ved romtemperatur, noe som er verdifullt for en pålitelig tidskursmåling. Når det gjelder biokompatibilitet, lyktes vi i å syntetisere ulike proteiner fra en enkeltkopi mal DNA i femtoliter dråpe, som tidligere hadde vært ansett som vanskelig eller ineffektiv29,30. Det ville være verdig å belyse hvorfor noen proteiner som er i stand til å bli syntetisert i FemDA kan ikke syntetiseres i andre dråpesystemer. FemDA var ikke bare et teknisk fremskritt, men innså også en enestående kvantitativ måling som kan korrelere proteinutbyttet (som gjenspeiles av fluorescensintensiteten til dråpene) til antall mal-DNA-molekyler i hver dråpe. Som et resultat viste histogrammet av fluorescensintensiteten av dråper fra FemDA-baserte CFPS en diskret fordeling som kan monteres pent av en sum av gaussiske distribusjoner av like topp-til-topp intervaller. Videre var sannsynligheten for forekomst av dråper som inneholder forskjellige antall DNA-molekyler en perfekt passform til en Poisson-fordeling31. Dermed kan det forskjellige proteinutbyttet i hver dråpe normaliseres basert på den diskrete fordelingen. Denne kritiske funksjonen gjør det mulig for oss å skille den enzymatiske aktivitetsinformasjonen fra den tilsynelatende intensiteten, som ikke har vært tilgjengelig med andre mikroreaktorplattformer ennå. Eksisterende mikrofluidiske celle / dråpesorteringssystemer er dyktige i helautomatisk sortering og god til å konsentrere prøver, men noen ganger kan bare sende ut et relativt bredt eller langhalet histogram i det analytiske aspektet32,33. Vårt svært kvantitative og biokompatibele FemDA-system setter en ny standard og en høy analytisk standard innen mikroreaktorutvikling.

Oljer og tensider som kan brukes til fremstilling av dråper er fortsatt svært begrenset34. Kombinasjonen av ASAHIKLIN AE-3000 og SURFLON S-386 etablert i FemDA er et nytt medlem av det voksende arsenalet av det fysiokjemiske grensesnittet mellom den vandige fasen og oljefasen13. Det nye grensesnittet i FemDA er fysisk stabilt, kjemisk inert, og biologisk kompatibel med komplekse transkripsjon, oversettelse, og post-translasjonelle modifisering maskiner for mange typer proteiner13. Det ville være ganske attraktivt å finne et protein som ikke kan syntetiseres i dråpeinnstillingene i stedet. Dessuten er kostnadsbesparelsen av reagenser tydeligere i femtoliterdråpesystemet enn det i nanoliter- og picoliterreaktorsystemer35,36. Spesielt vil det ofte være et stort dødt volum, som hovedsakelig skyldes rør eller eksterne forsyninger, i mikrofluidiske dråpegenereringssystemer, men ikke i vår FemDA. Matriseformatet favoriseres også av gjentatt og detaljert mikroskopisk karakterisering (ligner på såkalt analyse av høyt innhold) for hver enkelt reaktor37, i stedet for bare et enkelt øyeblikksbilde for et objekt i rask bevegelse. Femtoliterskalaen gjorde det mulig å integrere over en million reaktorer på et fingerstørrelsesområde, mens samme antall nanoliterreaktorer (hvis den eksisterer) krever over kvadratmeterområdet, noe som utvilsomt ville være upraktisk å produsere eller bruke et slikt system.

Protocol

1. Mikrofabrikasjon av femtoliter mikrokammer array substrat MERK: Utfør følgende mikrofabrikasjonseksperiment i et renrom. Bruk hansker og en renromsdress før du går inn i renrommet. Rengjøringsdeksel glass substrat Sett dekkglasset på et dekkglassfargestativ. Soniker dekkglasset i 8 M natriumhydroksid (NaOH) i 15 min ved romtemperatur (RT).FORSIKTIG: NaOH i høye konsentrasjoner er svært farlig for hud og øye. Håndter den forsiktig uten sprut. Ta sta…

Representative Results

Mikrofabrikasjonsprosessen består av substratrengjøring, overflatefunksjonalisering, CYTOP-belegg, fotolittografi, tørr etsing, fotoresist stripping og sluttrengjøring. Viktigere, den presenterte protokollen tillot fullstendig fjerning av hydrofob CYTOP polymer inne i mikrokamrene Figur 3A), produsere en svært parallell hydrofil-i-hydrofob struktur på en standard deksel glass substrat. Ved hjelp av oljeforseglingsprotokollen ble den ensartede dimensjonen til de resulterende dråpene ve…

Discussion

Den svært kvantitative målingen basert på de svært ensartede, stabile og biokompatible dråpene i FemDA gjorde det mulig å fordele diskrete distribusjonen, det unike ved studien vår som skiller seg fra andre. Vi systematisk optimalisert og detaljert mikrofabrikasjon og dråpedannelse prosesser i dette papiret. Det er flere kritiske trinn i den etablerte protokollen.

For det første bestemmer det ensartede belegget av svært viskøs CYTOP-polymer på det rektangulære tynne glasssubstrate…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av JSPS KAKENHI tilskuddsnummer JP18K14260 og budsjettet til Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology. Vi takker Shigeru Deguchi (JAMSTEC) og Tetsuro Ikuta (JAMSTEC) for å gi karakteriseringsfasilitetene. Vi takker Ken Takai (JAMSTEC) for kommersiell programvarestøtte. Mikrofabrikasjonen ble utført ved Takeda Sentanchi Supercleanroom, Universitetet i Tokyo, støttet av “Nanotechnology Platform Program” av Kunnskapsdepartementet, Kultur, Sport, Vitenskap og teknologi (MEXT), Japan, Grant Number JPMXP09F19UT0087.

Materials

(3-aminopropyl)triethoxysilane Sigma-Aldrich 440140
1 mL syringe Terumo SS-01T
2-propanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
3D laser scanning confocal microscope Lasertec OPTELICS HYBRID Other similar microscopes (e.g., Keyence VK-X1000, Olympus LEXT OLS5000) are also applicable.
50 mL syringe Terumo SS-50LZ
6,8-difluoro-4-methylumbelliferyl phosphate Thermo Fisher Scientific D6567 Prepare a 5 mM stock solution in dimethyl sulfoxide
Acetone Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.8%.
Air blower Hozan Z-263
Aluminum block BIO-BIK AB-24M-02
Aluminum microtube stand BIO-BIK AB-136C
ASAHIKLIN AE-3000 AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
BEMCOT PS-2 wiper Ozu 028208
Biopsy punch with plunger Kai BPP-10F
Cover glass Matsunami Glass No. 1 (24 mm × 32 mm, 0.13~0.17 mm thickness) Size-customized.
Cover glass staining rack Nakayama 803-131-11
CRECIA TechnoWipe clean wiper Nippon Paper Crecia C100-M
Cutting mat GE Healthcare WB100020
CYTOP AGC CTL-816AP
Deaeration mixer Thinky AR-100
Desktop cutter Roland STIKA SV-8
Developer AZ Electronic Materials AZ 300 MIF AZ Electronic Materials was now acquired by Merck.
Other alkaline developers may be also applicable but should require optimization of development conditions (time, temperature, etc.)
Double-coated adhesive Kapton film tape Teraoka Seisakusho 7602 #25
Ethanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.5%.
Fiji Version: ImageJ 1.51n
Flat-cable cutter Tokyo-IDEAL MT-0100
Fomblin oil Solvay Y25, or Y25/6 Free test sample may be available upon inquiry to Solvay. Fomblin Y25/6 is an alternative if Y25 is not readily available.
Hot plate AS ONE TH-900
Injection needle Terumo NN-2270C 22G × 70 mm
Inverted fluorescence microscope Nikon Eclipse Ti-E Epifluorescence specification, CCD or sCMOS camera, motorized stage, autofocus system, and high NA objective lens are required.
KaleidaGraph Synergy Version: 4.5
Mask aligner SUSS MA-6 Other mask aligners are also applicable as long as the vacuum contact mode is avaliable.
MICROMAN pipette GILSON E M250E Capillary piston tip: CP250
Microsoft Excel Microsoft Version: 16.16.15
Mini vacuum chamber AS ONE MVP-100MV
Nuclease-free water NIPPON GENE 316-90101
Parafilm Amcor PM-996
PCR tube NIPPON Genetics FG-021D/SP
Petri dish AS ONE GD90-15 Diameter 90 mm, height 15 mm.
Photoresist AZ Electronic Materials AZ P4903 AZ Electronic Materials was now acquired by Merck. AZ P4620 is an alternative.
Plate reader BioTek POWERSCAN HT
Polyethelene gloves AS ONE 6-896-02 Trade name: Saniment.
PURExpress in vitro protein synthesis kit New England Biolabs E6800S or E6800L For cell-free protein synthesis reaction.
Reactive-ion etching system Samco RIE-10NR Other RIE systems are also applicable but should require optimization of RIE conditions (gas flow rate, chamber pressure, RF power, etching time, etc.)
RNase inhibitor New England Biolabs M0314S
Scotch tape 3M 810-1-18D
Sodium hydroxide solution FUJIFILM Wako Pure Chemical 194-09575 8 M concentration; danger.
Spin coater Oshigane SC-308
SURFLON S-386 surfactant AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
SYLGARD 184 silicone elastomer Dow Sylgard184 Chemical composition: polydimethylsiloxane. The default mixing ratio is base : curing agent = 10 : 1 (m/m).
Tweezers Ideal-tek 2WF.SA.1
2A
Ultrasonic cleaner AS ONE ASU-2M
Vacuum chuck Oshigane (Customized) Material: delrin; rectangular sample stage with multiple holes (48 holes, each with 1 mm diameter); the size is customzied to fit the size of the cover glass (24 mm × 32 mm).

References

  1. Chiu, D. T., Lorenz, R. M., Jeffries, G. D. M. Droplets for ultrasmall-volume analysis. Analytical Chemistry. 81 (13), 5111-5118 (2009).
  2. Squires, T. M., Quake, S. R. Microfluidics: fluid physics at the nanoliter scale. Reviews of Modern Physics. 77 (3), 977-1026 (2005).
  3. Guo, M. T., Rotem, A., Heyman, J. A., Weitz, D. A. Droplet microfluidics for high-throughput biological assays. Lab on a Chip. 12 (12), 2146-2155 (2012).
  4. Zhu, P. A., Wang, L. Q. Passive and active droplet generation with microfluidics: a review. Lab on a Chip. 17 (1), 34-75 (2017).
  5. Griffiths, A. D., Tawfik, D. S. Miniaturising the laboratory in emulsion droplets. Trends in Biotechnology. 24 (9), 395-402 (2006).
  6. Tran, T. M., Lan, F., Thompson, C. S., Abate, A. R. From tubes to drops: droplet-based microfluidics for ultrahigh-throughput biology. Journal of Physics D: Applied Physics. 46 (11), 114004 (2013).
  7. Zhang, Y., Jiang, X., Fan, C. Microfluidic tools for DNA analysis. DNA Nanotechnology. , 113-153 (2013).
  8. Dubuc, E., et al. Cell-free microcompartmentalised transcription-translation for the prototyping of synthetic communication networks. Current Opinion in Biotechnology. 58, 72-80 (2019).
  9. Damiati, S., Mhanna, R., Kodzius, R., Ehmoser, E. K. Cell-free approaches in synthetic biology utilizing microfluidics. Genes. 9 (3), (2018).
  10. Lee, K. H., Kim, D. M. Applications of cell-free protein synthesis in synthetic biology: Interfacing bio-machinery with synthetic environments. Biotechnology Journal. 8 (11), 1292-1300 (2013).
  11. Supramaniam, P., Ces, O., Salehi-Reyhani, A. Microfluidics for artificial life: techniques for bottom-up synthetic biology. Micromachines. 10 (5), (2019).
  12. Bowman, E. K., Alper, H. S. Microdroplet-assisted screening of biomolecule production for metabolic engineering applications. Trends in Biotechnology. , (2019).
  13. Zhang, Y., et al. Accurate high-throughput screening based on digital protein synthesis in a massively parallel femtoliter droplet array. Science Advances. 5 (8), 8185 (2019).
  14. Silverman, A. D., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free gene expression: an expanded repertoire of applications. Nature Reviews Genetics. , (2019).
  15. Sakane, Y., Suzuki, Y., Kasagi, N. The development of a high-performance perfluorinated polymer electret and its application to micro power generation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (10), 104011 (2008).
  16. Sakakihara, S., Araki, S., Iino, R., Noji, H. A single-molecule enzymatic assay in a directly accessible femtoliter droplet array. Lab on a Chip. 10 (24), 3355-3362 (2010).
  17. Watanabe, R., et al. Arrayed lipid bilayer chambers allow single-molecule analysis of membrane transporter activity. Nature Communications. 5, 4519 (2014).
  18. Chiu, C., Lisicka-Skrzek, E., Tait, R. N., Berini, P. Fabrication of surface plasmon waveguides and devices in Cytop with integrated microfluidic channels. Journal of Vacuum Science & Technology B. 28 (4), 729-735 (2010).
  19. Krupin, O., Asiri, H., Wang, C., Tait, R. N., Berini, P. Biosensing using straight long-range surface plasmon waveguides. Optics Express. 21 (1), 698-709 (2013).
  20. Hanada, Y., Ogawa, T., Koike, K., Sugioka, K. Making the invisible visible: a microfluidic chip using a low refractive index polymer. Lab on a Chip. 16 (13), 2481-2486 (2016).
  21. Berry, S., Kedzierski, J., Abedian, B. Low voltage electrowetting using thin fluoroploymer films. Journal of Colloid and Interface Science. 303 (2), 517-524 (2006).
  22. Lin, Y. Y., et al. Low voltage electrowetting-on-dielectric platform using multi-layer insulators. Sensors and Actuators B-Chemical. 150 (1), 465-470 (2010).
  23. Kimura, H., Yamamoto, T., Sakai, H., Sakai, Y., Fujii, T. An integrated microfluidic system for long-term perfusion culture and on-line monitoring of intestinal tissue models. Lab on a Chip. 8 (5), 741-746 (2008).
  24. Yang, T. J., Choo, J., Stavrakis, S., de Mello, A. Fluoropolymer-coated PDMS microfluidic devices for application in organic synthesis. Chemistry-a European Journal. 24 (46), 12078-12083 (2018).
  25. de Gennes, P. G. Wetting: statics and dynamics. Reviews of Modern Physics. 57 (3), 827-863 (1985).
  26. Holtze, C., et al. Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions. Lab on a Chip. 8 (10), 1632-1639 (2008).
  27. Wagner, O., et al. Biocompatible fluorinated polyglycerols for droplet microfluidics as an alternative to PEG-based copolymer surfactants. Lab on a Chip. 16 (1), 65-69 (2016).
  28. Mashaghi, S., Abbaspourrad, A., Weitz, D. A., van Oijen, A. M. Droplet microfluidics: a tool for biology, chemistry and nanotechnology. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 82, 118-125 (2016).
  29. Mazutis, L., et al. Droplet-based microfluidic systems for high-throughput single DNA molecule isothermal amplification and analysis. Analytical Chemistry. 81 (12), 4813-4821 (2009).
  30. Galinis, R., et al. DNA nanoparticles for improved protein synthesis in vitro. Angewandte Chemie-International Edition. 55 (9), 3120-3123 (2016).
  31. Zhang, Y., Noji, H. Digital bioassays: theory, applications, and perspectives. Analytical Chemistry. 89 (1), 92-101 (2017).
  32. Mazutis, L., et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols. 8 (5), 870-891 (2013).
  33. Courtois, F., et al. An integrated device for monitoring time-dependent in vitro expression from single genes in picolitre droplets. ChemBioChem. 9 (3), 439-446 (2008).
  34. Baret, J. C. Surfactants in droplet-based microfluidics. Lab on a Chip. 12 (3), 422-433 (2012).
  35. Agresti, J. J., et al. Ultrahigh-throughput screening in drop-based microfluidics for directed evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (9), 4004-4009 (2010).
  36. Fallah-Araghi, A., Baret, J. C., Ryckelynck, M., Griffiths, A. D. A completely in vitro ultrahigh-throughput droplet-based microfluidic screening system for protein engineering and directed evolution. Lab on a Chip. 12 (5), 882-891 (2012).
  37. Duncombe, T. A., Dittrich, P. S. Droplet barcoding: tracking mobile micro-reactors for high-throughput biology. Current Opinion in Biotechnology. 60, 205-212 (2019).
  38. Qin, D., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography for micro- and nanoscale patterning. Nature Protocols. 5 (3), 491-502 (2010).
  39. Mukhopadhyay, R. When PDMS isn’t the best. Analytical Chemistry. 79 (9), 3248-3253 (2007).
  40. Shaner, N. C., et al. A bright monomeric green fluorescent protein derived from Branchiostoma lanceolatum. Nature Methods. 10 (5), 407-409 (2013).
  41. Bradshaw, R. A., et al. Amino acid sequence of Escherichia coli alkaline phosphatase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 78 (6), 3473-3477 (1981).
  42. Shimizu, Y., et al. Cell-free translation reconstituted with purified components. Nature Biotechnology. 19 (8), 751-755 (2001).
  43. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  44. Mantilla, C. B., Prakash, Y. S., Sieck, G. C., Conn, P. M. Volume measurements in confocal microscopy. Techniques in Confocal Microscopy. , 143-162 (2010).
  45. Noji, H. Single-molecule counting of biomolecules with femtoliter dropret chamber array. The 17th International Conference on Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems (TRANSDUCERS & EUROSENSORS XXVII. , 630-632 (2013).
  46. Zhang, Y., et al. Matrix-localization for fast analysis of arrayed microfluidic immunoassays. Analytical Methods. 4 (10), 3466-3470 (2012).
  47. Zhang, Y., et al. Two dimensional barcode-inspired automatic analysis for arrayed microfluidic immunoassays. Biomicrofluidics. 7 (3), 034110 (2013).
  48. Gonzalez, R. C., Woods, R. E. . Digital image processing. , (2018).
  49. Cohen, L., Walt, D. R. Single-molecule arrays for protein and nucleic acid analysis. Annual Review of Analytical Chemistry. 10 (1), 345-363 (2017).
check_url/fr/60945?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhang, Y., Kurosawa, K., Nishiura, D., Tei, M., Tsudome, M. A Femtoliter Droplet Array for Massively Parallel Protein Synthesis from Single DNA Molecules. J. Vis. Exp. (160), e60945, doi:10.3791/60945 (2020).

View Video