Summary

En Femtoliter Droplet Array för massivt parallell proteinsyntes från single DNA-molekyler

Published: June 20, 2020
doi:

Summary

Det övergripande målet med protokollet är att förbereda över en miljon beställda, enhetliga, stabila och biokompatibla femtoliterdroppar på ett 1 cm2 planarsubstrat som kan användas för cellfri proteinsyntes.

Abstract

Framsteg inom rumslig upplösning och detektionskänslighet för vetenskaplig instrumentering gör det möjligt att tillämpa små reaktorer för biologisk och kemisk forskning. För att möta efterfrågan på högpresterande mikroreaktorer utvecklade vi en femtoliterdroppsystem (FemDA) och exemplifierade dess tillämpning i massivt parallella cellfria proteinsynteser (CFPS) reaktioner. Över en miljon enhetliga droppar genererades lätt inom ett finger-storlek område med hjälp av en tvåstegs olja-tätning protokoll. Varje droppe var förankrad i en femtoliter microchamber består av en hydrofil botten och en hydrofoba sidovägg. Hybrid hydrofil-i-hydrofoba struktur och dedikerade tätningsoljor och ytaktiva ämnen är avgörande för att stabilt behålla femtoliter vattenlösning i femtoliter utrymmet utan avdunstning förlust. Femtolatorkonfigurationen och den enkla strukturen hos FemDA-enheten tillät minimal reagensförbrukning. Den enhetliga dimensionen av droppreaktorerna gjorde storskaliga kvantitativa och tidsloppsmätningar övertygande och tillförlitliga. FemDA-tekniken korrelerade proteinutbytet för CFPS-reaktionen med antalet DNA-molekyler i varje droppe. Vi effektiviserade förfarandena om mikrotillverkning av enheten, bildandet av femtoliterdropparna och förvärvet och analysen av mikroskopiska bilddata. Det detaljerade protokollet med optimerad låg driftskostnad gör FemDA-tekniken tillgänglig för alla som har standardrenrumsfaciliteter och ett konventionellt fluorescensmikroskop på sitt eget ställe.

Introduction

Forskare använder reaktorer för att utföra bio/kemiska reaktioner. Det finns betydande ansträngningar som har gjorts för att minska reaktorns storlek och öka den experimentella genomströmningen för att minska reagensförbrukningen och samtidigt förbättra arbetseffektiviteten. Båda aspekterna syftar till att befria forskare från en tung arbetsbelastning, minska kostnaderna och påskynda forskning och utveckling. Vi har en tydlig historisk färdplan för utvecklingen av reaktortekniken med tanke på reaktionsvolymer och genomströmning: enstaka bägare/kolv/provrör, milliliterrör, mikroliterrör, mikroliter 8-rörsremsor, mikroliter 96/384/1536-brunnsplatta och mikrofluidisk nanoliter/picoliter/femtoliterreaktorer1,,2,,3,,4,,5,,6,7. Analogt med nedskärningar av funktionen storlek transistorer på integrerade kretschips i halvledarindustrin under de senaste decennierna, bio / kemiska mikroreaktorer går igenom volymminskning och systemintegration. Sådana småskaliga verktyg har haft en djupgående inverkan på cellbaserad eller cellfri syntetisk biologi, biotillverkning och prototyper med hög genomströmning8,,9,10,11,12. Detta dokument beskriver vår senaste insats för utveckling av en unik droplet array teknik och visar dess tillämpning i CFPS13, en grundläggande teknik för syntetisk biologi och molekylär screening samhällen14. I synnerhet tillhandahåller vi avsiktligt ett optimerat och billigt protokoll för att göra FemDA-enheten tillgänglig för alla. Det billiga och lätthanterliga protokollet för den miniatyriserade enheten skulle bidra till universitetens utbildningsändamål och bidra till att sprida tekniken.

FemDA förbereder femtolter droppar på en ultrahigh densitet på 106 per 1 cm2 på en plana glassubstrat. Vi belagda en hydrofoba polymer, CYTOP15, på glassubstratet och selektivt etsade (bort) CYTOP vid fördefinierade positioner för att generera en mikrokammare array på substratet. Således består den resulterande mikrokammaren av en hydrofoba sidovägg (CYTOP) och en hydrofil botten (glas). När sekventiellt rinner vatten och olja över den mönstrade ytan, kan vattnet fångas och förseglas i mikrokammare. Den hydrofila-i-hydrofoba strukturen är avgörande för att stöta bort vatten utanför mikrokammare, isolera enskilda mikroreaktorer, och behålla en liten vattenlösning inne i femtolter utrymmet. Den unika egenskapen tillämpades framgångsrikt för beredning av vatten-i-olja droppar och lipid bilayer mikrokompar16,17. Jämfört med prototypenheten16optimerade vi först mikrotillverkningsprocessen för att förverkliga ett fullständigt avlägsnande av CYTOP-polymeren samt en fullständig exponering av glasbotten. CYTOP är en speciell fluorpolymer med extremt låg ytspänning (19 mN/m) lägre än för konventionella mikroreaktormaterial som glas, plast och silikon. Dess goda optiska, elektriska och kemiska prestanda har redan utnyttjats vid ytbehandling av mikrofluidiska enheter18,,19,20,21,22,23,24. I FemDA-systemet, för att uppnå god vätning av oljan på CYTOP-ytan, måste oljans ytspänning vara lägre än den fastaytans 25. Annars tenderar den flytande oljan som kommer i kontakt med den fasta ytan att bli sfärisk snarare än att sprida sig över ytan. Dessutom fann vi att vissa populära perfluorkolväten oljor (t.ex., 3M FC-40)16 och fluororoether oljor (t.ex., 3M Novec-serien) kan lösa cytop som ett resultat av amorf morfologi av CYTOP, vilket är dödligt för kvantitativ mätning och skulle ifrågasättas i form av korskontaminering bland droppar. Lyckligtvis identifierade vi en biokompatibel och miljövänlig olja uppvisar lägre (< 19 mN / m) ytspänning13. Vi hittade också ett nytt ytaktivt företag som kan lösas upp i den valda oljan och funktion i en låg koncentration (0,1%, minst 10 gånger lägre än tidigare rapporterats populära26,27)13. Det resulterande vatten-/oljegränssnittet kan stabiliseras av ytaktivt. På grund av oljans höga avdunstningshastighet, efter spolningen med oljan, applicerade vi en annan biokompatibel och miljövänlig olja för att ersätta den första för att täta mikrokammare. Vi kallar den första oljan (ASAHIKLIN AE-3000 med 0,1 wt % SURFLON S-386) “spololja” och den andra oljan (Fomblin Y25) “tätningsoljan”, respektive.

Den tvåstegs oljetätningsstrategin kan förverkliga en robust bildning av femtolterdropparsystemet inom några minuter och utan sofistikerad instrumentering. På grund av avdunstningsproblemet har det ansetts vara svårt att generera mikroreaktorer som är mindre än picolitervolymerna28. FemDA tog upp denna fråga genom att systematiskt optimera de material och processer som används för beredning av mikroreaktorer/droppar. Flera anmärkningsvärda funktioner i de resulterande dropparna inkluderar hög enhetlighet (eller monodispersitet), stabilitet och biokompatibilitet på femtoliterskalan. Variationskoefficienten (CV) för droppvolymen är endast 3 % (utan vinjetteringskorrigering för mikroskopiska bilder), det minsta CV:t bland droppplattformar i världen, vilket säkerställer en mycket parallell och kvantitativ mätning. Femtoliterdroppen är stabil i minst 24 timmar utan korskontaminering bland droppar vid rumstemperatur, vilket är värdefullt för en tillförlitlig tidsförloppsmätning. När det gäller biokompatibilitet lyckades vi syntetisera olika proteiner från en enda kopia mall DNA i femtoliter droppen, som tidigare hade ansetts svårt eller ineffektiv29,30. Det skulle vara värt att belysa varför vissa proteiner som kan syntetiseras i FemDA inte kan syntetiseras i andra droppsystem. FemDA var inte bara ett tekniskt framsteg, men också insåg en aldrig tidigare skådad kvantitativ mätning som kan korrelera proteinavkastningen (vilket återspeglas av fluorescensintensiteten hos droppen) till antalet mall-DNA-molekyler i varje droppe. Som ett resultat visade histogrammet av fluorescensintensiteten hos droppar från FemDA-baserade CFPS en diskret fördelning som fint kan monteras av en summa gaussiska fördelningar av lika topp-till-topp intervall. Dessutom var sannolikheten för förekomst av droppar som innehåller olika antal DNA-molekyler en perfekt passform till en Poisson fördelning31. Således kan de olika proteinavkastningen i varje droppe normaliseras baserat på den diskreta fördelningen. Denna kritiska funktion gör det möjligt för oss att skilja den enzymatiska aktivitetsinformationen från den skenbara intensiteten, som ännu inte har varit tillgänglig med andra mikroreaktorplattformar. Befintliga mikrofluidiska cell-/droppsorteringssystem är skickliga på helautomatisk sortering och bra på att koncentrera prover, men ibland kan bara produktionen av ett relativt brett eller långstjärtat histogram i den analytiska aspekten32,33. Vårt mycket kvantitativa och biokompatibla FemDA-system sätter ett nytt riktmärke och en hög analytisk standard inom mikroreaktorutveckling.

De oljor och ytaktiva ämnen som kan användas för framställning av droppar är fortfarande mycket begränsade34. Kombinationen av ASAHIKLIN AE-3000 och SURFLON S-386 etablerade i FemDA är en ny medlem av den växande arsenalen av det fysiokemiska gränssnittet mellan vattenfasen och oljefasen13. Det nya gränssnittet i FemDA är fysiskt stabil, kemiskt inert, och biologiskt kompatibel med komplexa transkription, översättning och post-translationell modifiering maskiner för många typer av proteiner13. Det skulle vara ganska attraktivt att hitta ett protein som inte kan syntetiseras i droplet inställningar istället. Dessutom är kostnadsbesparingen av reagenser tydligare i femtolterdroppsystemet än i nanoliter- och picoliterreaktorsystem35,36. I synnerhet skulle det ofta finnas en stor död volym, som huvudsakligen orsakas av slangar eller externa leveranser, i mikrofluidiska droplet generation system men inte i vår FemDA. Matrisformatet gynnas också av upprepad och detaljerad mikroskopisk karakterisering (liknande så kallad höginnehållsanalys) för varje enskildreaktor 37, snarare än bara en enda ögonblicksbild för ett snabbrörligt objekt. Femtoliterskalan möjliggjorde integration av över en miljon reaktorer på ett fingerstort område, medan samma antal nanoliterreaktorer (om sådana finns) kräver ett område med kvadratmeter, vilket utan tvekan skulle vara opraktiskt att tillverka eller använda ett sådant system.

Protocol

1. Mikrotillverkning av femtolitermikrokammarmatrissubstratet OBS: Utför följande mikrotillverkningsexperiment i ett renrum. Använd handskar och en renrumsdräkt innan du går in i renrummet. Rengöring av överknäckat glassubstrat Ställ täckglaset på ett omslagsglas glas glas glas. Sonikera täckglaset i 8 M natriumhydroxid (NaOH) i 15 min vid rumstemperatur (RT).VARNING: NaOH i höga koncentrationer är mycket farligt för hud och öga. Hantera den försiktigt ut…

Representative Results

Mikrofabriceringsprocessen består av substratrengöring, ytfunktionalisering, CYTOP-beläggning, fotolitografi, torretsning, fotoresiststriktion och slutrengöring. Viktigt är att det presenterade protokollet tillät fullständigt avlägsnande av den hydrofoba CYTOP-polymeren inuti mikrokammare figur 3A), vilket ger en mycket parallell hydrofil-i-hydrofoba struktur på ett standardtäcke glassubstrat. Med hjälp av oljetätningsprotokollet kontrollerades den enhetliga dimensionen av de res…

Discussion

Den mycket kvantitativa mätningen baserad på de mycket enhetliga, stabila och biokompatibla dropparna i FemDA möjliggjorde den diskreta fördelningen, det unika inslaget i vår studie som skiljer sig från andra. Vi optimerade och detaljerade systematiskt mikrotillverknings- och droppbildningsprocesserna i detta dokument. Det finns flera kritiska steg i det etablerade protokollet.

För det första bestämmer den enhetliga beläggningen av mycket trögflytande CYTOP-polymer på det rektangul…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av JSPS KAKENHI stipendienummer JP18K14260 och budgeten för Japan Agency for Marine-Earth Science and Technology. Vi tackar Shigeru Deguchi (JAMSTEC) och Tetsuro Ikuta (JAMSTEC) för att de tillhandahåller karakteriseringsanläggningarna. Vi tackar Ken Takai (JAMSTEC) för kommersiell programvara stöd. Mikrofabricationen genomfördes vid Takeda Sentanchi Supercleanroom, University of Tokyo, med stöd av “Nanotechnology Platform Program” från ministeriet för utbildning, kultur, sport, vetenskap och teknik (MEXT), Japan, Grant Number JPMXP09F19UT0087.

Materials

(3-aminopropyl)triethoxysilane Sigma-Aldrich 440140
1 mL syringe Terumo SS-01T
2-propanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
3D laser scanning confocal microscope Lasertec OPTELICS HYBRID Other similar microscopes (e.g., Keyence VK-X1000, Olympus LEXT OLS5000) are also applicable.
50 mL syringe Terumo SS-50LZ
6,8-difluoro-4-methylumbelliferyl phosphate Thermo Fisher Scientific D6567 Prepare a 5 mM stock solution in dimethyl sulfoxide
Acetone Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.8%.
Air blower Hozan Z-263
Aluminum block BIO-BIK AB-24M-02
Aluminum microtube stand BIO-BIK AB-136C
ASAHIKLIN AE-3000 AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
BEMCOT PS-2 wiper Ozu 028208
Biopsy punch with plunger Kai BPP-10F
Cover glass Matsunami Glass No. 1 (24 mm × 32 mm, 0.13~0.17 mm thickness) Size-customized.
Cover glass staining rack Nakayama 803-131-11
CRECIA TechnoWipe clean wiper Nippon Paper Crecia C100-M
Cutting mat GE Healthcare WB100020
CYTOP AGC CTL-816AP
Deaeration mixer Thinky AR-100
Desktop cutter Roland STIKA SV-8
Developer AZ Electronic Materials AZ 300 MIF AZ Electronic Materials was now acquired by Merck.
Other alkaline developers may be also applicable but should require optimization of development conditions (time, temperature, etc.)
Double-coated adhesive Kapton film tape Teraoka Seisakusho 7602 #25
Ethanol Kanto Chemical EL grade EL: for electronic use.
Purity 99.5%.
Fiji Version: ImageJ 1.51n
Flat-cable cutter Tokyo-IDEAL MT-0100
Fomblin oil Solvay Y25, or Y25/6 Free test sample may be available upon inquiry to Solvay. Fomblin Y25/6 is an alternative if Y25 is not readily available.
Hot plate AS ONE TH-900
Injection needle Terumo NN-2270C 22G × 70 mm
Inverted fluorescence microscope Nikon Eclipse Ti-E Epifluorescence specification, CCD or sCMOS camera, motorized stage, autofocus system, and high NA objective lens are required.
KaleidaGraph Synergy Version: 4.5
Mask aligner SUSS MA-6 Other mask aligners are also applicable as long as the vacuum contact mode is avaliable.
MICROMAN pipette GILSON E M250E Capillary piston tip: CP250
Microsoft Excel Microsoft Version: 16.16.15
Mini vacuum chamber AS ONE MVP-100MV
Nuclease-free water NIPPON GENE 316-90101
Parafilm Amcor PM-996
PCR tube NIPPON Genetics FG-021D/SP
Petri dish AS ONE GD90-15 Diameter 90 mm, height 15 mm.
Photoresist AZ Electronic Materials AZ P4903 AZ Electronic Materials was now acquired by Merck. AZ P4620 is an alternative.
Plate reader BioTek POWERSCAN HT
Polyethelene gloves AS ONE 6-896-02 Trade name: Saniment.
PURExpress in vitro protein synthesis kit New England Biolabs E6800S or E6800L For cell-free protein synthesis reaction.
Reactive-ion etching system Samco RIE-10NR Other RIE systems are also applicable but should require optimization of RIE conditions (gas flow rate, chamber pressure, RF power, etching time, etc.)
RNase inhibitor New England Biolabs M0314S
Scotch tape 3M 810-1-18D
Sodium hydroxide solution FUJIFILM Wako Pure Chemical 194-09575 8 M concentration; danger.
Spin coater Oshigane SC-308
SURFLON S-386 surfactant AGC (Test sample) Free test sample may be available upon inquiry to AGC.
SYLGARD 184 silicone elastomer Dow Sylgard184 Chemical composition: polydimethylsiloxane. The default mixing ratio is base : curing agent = 10 : 1 (m/m).
Tweezers Ideal-tek 2WF.SA.1
2A
Ultrasonic cleaner AS ONE ASU-2M
Vacuum chuck Oshigane (Customized) Material: delrin; rectangular sample stage with multiple holes (48 holes, each with 1 mm diameter); the size is customzied to fit the size of the cover glass (24 mm × 32 mm).

References

  1. Chiu, D. T., Lorenz, R. M., Jeffries, G. D. M. Droplets for ultrasmall-volume analysis. Analytical Chemistry. 81 (13), 5111-5118 (2009).
  2. Squires, T. M., Quake, S. R. Microfluidics: fluid physics at the nanoliter scale. Reviews of Modern Physics. 77 (3), 977-1026 (2005).
  3. Guo, M. T., Rotem, A., Heyman, J. A., Weitz, D. A. Droplet microfluidics for high-throughput biological assays. Lab on a Chip. 12 (12), 2146-2155 (2012).
  4. Zhu, P. A., Wang, L. Q. Passive and active droplet generation with microfluidics: a review. Lab on a Chip. 17 (1), 34-75 (2017).
  5. Griffiths, A. D., Tawfik, D. S. Miniaturising the laboratory in emulsion droplets. Trends in Biotechnology. 24 (9), 395-402 (2006).
  6. Tran, T. M., Lan, F., Thompson, C. S., Abate, A. R. From tubes to drops: droplet-based microfluidics for ultrahigh-throughput biology. Journal of Physics D: Applied Physics. 46 (11), 114004 (2013).
  7. Zhang, Y., Jiang, X., Fan, C. Microfluidic tools for DNA analysis. DNA Nanotechnology. , 113-153 (2013).
  8. Dubuc, E., et al. Cell-free microcompartmentalised transcription-translation for the prototyping of synthetic communication networks. Current Opinion in Biotechnology. 58, 72-80 (2019).
  9. Damiati, S., Mhanna, R., Kodzius, R., Ehmoser, E. K. Cell-free approaches in synthetic biology utilizing microfluidics. Genes. 9 (3), (2018).
  10. Lee, K. H., Kim, D. M. Applications of cell-free protein synthesis in synthetic biology: Interfacing bio-machinery with synthetic environments. Biotechnology Journal. 8 (11), 1292-1300 (2013).
  11. Supramaniam, P., Ces, O., Salehi-Reyhani, A. Microfluidics for artificial life: techniques for bottom-up synthetic biology. Micromachines. 10 (5), (2019).
  12. Bowman, E. K., Alper, H. S. Microdroplet-assisted screening of biomolecule production for metabolic engineering applications. Trends in Biotechnology. , (2019).
  13. Zhang, Y., et al. Accurate high-throughput screening based on digital protein synthesis in a massively parallel femtoliter droplet array. Science Advances. 5 (8), 8185 (2019).
  14. Silverman, A. D., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free gene expression: an expanded repertoire of applications. Nature Reviews Genetics. , (2019).
  15. Sakane, Y., Suzuki, Y., Kasagi, N. The development of a high-performance perfluorinated polymer electret and its application to micro power generation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (10), 104011 (2008).
  16. Sakakihara, S., Araki, S., Iino, R., Noji, H. A single-molecule enzymatic assay in a directly accessible femtoliter droplet array. Lab on a Chip. 10 (24), 3355-3362 (2010).
  17. Watanabe, R., et al. Arrayed lipid bilayer chambers allow single-molecule analysis of membrane transporter activity. Nature Communications. 5, 4519 (2014).
  18. Chiu, C., Lisicka-Skrzek, E., Tait, R. N., Berini, P. Fabrication of surface plasmon waveguides and devices in Cytop with integrated microfluidic channels. Journal of Vacuum Science & Technology B. 28 (4), 729-735 (2010).
  19. Krupin, O., Asiri, H., Wang, C., Tait, R. N., Berini, P. Biosensing using straight long-range surface plasmon waveguides. Optics Express. 21 (1), 698-709 (2013).
  20. Hanada, Y., Ogawa, T., Koike, K., Sugioka, K. Making the invisible visible: a microfluidic chip using a low refractive index polymer. Lab on a Chip. 16 (13), 2481-2486 (2016).
  21. Berry, S., Kedzierski, J., Abedian, B. Low voltage electrowetting using thin fluoroploymer films. Journal of Colloid and Interface Science. 303 (2), 517-524 (2006).
  22. Lin, Y. Y., et al. Low voltage electrowetting-on-dielectric platform using multi-layer insulators. Sensors and Actuators B-Chemical. 150 (1), 465-470 (2010).
  23. Kimura, H., Yamamoto, T., Sakai, H., Sakai, Y., Fujii, T. An integrated microfluidic system for long-term perfusion culture and on-line monitoring of intestinal tissue models. Lab on a Chip. 8 (5), 741-746 (2008).
  24. Yang, T. J., Choo, J., Stavrakis, S., de Mello, A. Fluoropolymer-coated PDMS microfluidic devices for application in organic synthesis. Chemistry-a European Journal. 24 (46), 12078-12083 (2018).
  25. de Gennes, P. G. Wetting: statics and dynamics. Reviews of Modern Physics. 57 (3), 827-863 (1985).
  26. Holtze, C., et al. Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions. Lab on a Chip. 8 (10), 1632-1639 (2008).
  27. Wagner, O., et al. Biocompatible fluorinated polyglycerols for droplet microfluidics as an alternative to PEG-based copolymer surfactants. Lab on a Chip. 16 (1), 65-69 (2016).
  28. Mashaghi, S., Abbaspourrad, A., Weitz, D. A., van Oijen, A. M. Droplet microfluidics: a tool for biology, chemistry and nanotechnology. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 82, 118-125 (2016).
  29. Mazutis, L., et al. Droplet-based microfluidic systems for high-throughput single DNA molecule isothermal amplification and analysis. Analytical Chemistry. 81 (12), 4813-4821 (2009).
  30. Galinis, R., et al. DNA nanoparticles for improved protein synthesis in vitro. Angewandte Chemie-International Edition. 55 (9), 3120-3123 (2016).
  31. Zhang, Y., Noji, H. Digital bioassays: theory, applications, and perspectives. Analytical Chemistry. 89 (1), 92-101 (2017).
  32. Mazutis, L., et al. Single-cell analysis and sorting using droplet-based microfluidics. Nature Protocols. 8 (5), 870-891 (2013).
  33. Courtois, F., et al. An integrated device for monitoring time-dependent in vitro expression from single genes in picolitre droplets. ChemBioChem. 9 (3), 439-446 (2008).
  34. Baret, J. C. Surfactants in droplet-based microfluidics. Lab on a Chip. 12 (3), 422-433 (2012).
  35. Agresti, J. J., et al. Ultrahigh-throughput screening in drop-based microfluidics for directed evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (9), 4004-4009 (2010).
  36. Fallah-Araghi, A., Baret, J. C., Ryckelynck, M., Griffiths, A. D. A completely in vitro ultrahigh-throughput droplet-based microfluidic screening system for protein engineering and directed evolution. Lab on a Chip. 12 (5), 882-891 (2012).
  37. Duncombe, T. A., Dittrich, P. S. Droplet barcoding: tracking mobile micro-reactors for high-throughput biology. Current Opinion in Biotechnology. 60, 205-212 (2019).
  38. Qin, D., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Soft lithography for micro- and nanoscale patterning. Nature Protocols. 5 (3), 491-502 (2010).
  39. Mukhopadhyay, R. When PDMS isn’t the best. Analytical Chemistry. 79 (9), 3248-3253 (2007).
  40. Shaner, N. C., et al. A bright monomeric green fluorescent protein derived from Branchiostoma lanceolatum. Nature Methods. 10 (5), 407-409 (2013).
  41. Bradshaw, R. A., et al. Amino acid sequence of Escherichia coli alkaline phosphatase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 78 (6), 3473-3477 (1981).
  42. Shimizu, Y., et al. Cell-free translation reconstituted with purified components. Nature Biotechnology. 19 (8), 751-755 (2001).
  43. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  44. Mantilla, C. B., Prakash, Y. S., Sieck, G. C., Conn, P. M. Volume measurements in confocal microscopy. Techniques in Confocal Microscopy. , 143-162 (2010).
  45. Noji, H. Single-molecule counting of biomolecules with femtoliter dropret chamber array. The 17th International Conference on Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems (TRANSDUCERS & EUROSENSORS XXVII. , 630-632 (2013).
  46. Zhang, Y., et al. Matrix-localization for fast analysis of arrayed microfluidic immunoassays. Analytical Methods. 4 (10), 3466-3470 (2012).
  47. Zhang, Y., et al. Two dimensional barcode-inspired automatic analysis for arrayed microfluidic immunoassays. Biomicrofluidics. 7 (3), 034110 (2013).
  48. Gonzalez, R. C., Woods, R. E. . Digital image processing. , (2018).
  49. Cohen, L., Walt, D. R. Single-molecule arrays for protein and nucleic acid analysis. Annual Review of Analytical Chemistry. 10 (1), 345-363 (2017).
check_url/fr/60945?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhang, Y., Kurosawa, K., Nishiura, D., Tei, M., Tsudome, M. A Femtoliter Droplet Array for Massively Parallel Protein Synthesis from Single DNA Molecules. J. Vis. Exp. (160), e60945, doi:10.3791/60945 (2020).

View Video